Summary

הזרקת דם ישירה כפולה לתוך מגנה צ'יסטרנה כודל של דימום Subarachnoid

Published: August 30, 2020
doi:

Summary

תיארנו בפרוטוקול זה מודל עכבר מתוקננת של דימום תת-עכבישי (SAH) על ידי הזרקה כפולה של דם מלא אוטולוגי לתוך הבור מגנה. רמת הסטנדרטיזציה הגבוהה של הליך ההזרקה הכפולה מייצגת מודל בינוני עד אקוטי של SAH עם בטיחות יחסית לגבי תמותה.

Abstract

בין שבץ, דימום subarachnoid (SAH) ברצף לקרע של מפרצת עורקי מוחי מייצג 5-9% אבל אחראי על כ 30% של התמותה הכוללת הקשורה לשבץ עם מחלה חשובה במונחים של תוצאה נוירולוגית. Vasospasm מוחי מושהה (CVS) עלול להתרחש לעתים קרובות בשיתוף עם איסכמיה מוחית מושהית. מודלים שונים של בעלי חיים של SAH נמצאים כעת בשימוש כולל ניקוב אנדווסקולרי והזרקה ישירה של דם לתוך מגנה בור המים או אפילו בור מים prechiasmatic, כל אחד מפגין יתרונות וחסרונות ברורים. במאמר זה, מודל עכבר מתוקננת של SAH על ידי הזרקה ישירה כפולה של כרכים נחושים של דם שלם אוטולוגי לתוך magna בור המים מוצג. בקצרה, עכברים נשקלו ולאחר מכן מנופים על ידי שאיפת isoflurane. לאחר מכן, החיה הונחה בתמומת שכיבה על שמיכה מחוממת תוך שמירה על טמפרטורה פי הטבעת של 37°C וממוקמת במסגרת סטריאוטיפית עם עיקול צוואר הרחם של כ-30°. ברגע שהיה במקום, קצה של מיקרופיפט זכוכית מוארך מלא בדם עורקי הומולוגי נלקח מעורק ראשי של עכבר אחר באותו גיל ומין (C57Bl/6J) היה ממוקם בזווית ישרה במגע עם קרום atlanto-occipital באמצעות מיקרומניפולטור. ואז 60 μL של דם הוזרק מגנה בור המים ואחריו הטיה כלפי מטה 30 מעלות של החיה במשך 2 דקות. האינפוזיה השנייה של 30 μL של דם לתוך הבור מגנה בוצע 24 שעות לאחר הראשון. המעקב הפרטני של כל בעל חיים מתבצע מדי יום (הערכה קפדנית של משקל ושלום). הליך זה מאפשר התפלגות צפויה וניתנת לשחזור של דם, ככל הנראה מלווה בגובה לחץ תוך גולגולתי שניתן לחקות על ידי זריקה מקבילה של נוזל עמוד השדרה המוחי המלאכותי (CSF), ומייצג מודל אקוטי עד מתון של SAH הגורם לתמותה נמוכה.

Introduction

דימום Subarachnoid (SAH) מהווה עד 5% מכלל מקרי שבץ ומהווה פתולוגיה נפוצה יחסית עם שכיחות של 7.2 כדי 9 חולים לכל 100,000 בשנה, עם שיעור תמותה של 20%-60%בהתאם למחקר 1,2,3. בשלב אקוטי, התמותה מיוחסת לחומרת דימום, דימום מחדש, vasospasm מוחי (CVS) ו / או סיבוכים רפואיים4. בניצולים, פגיעה מוחית מוקדמת (EBI) קשורה עם הארכה parenchymal של דימום ועלייה פתאומית בלחץ תוך גולגולתי, אשר עלול לגרום איסכמיהמוחית ראשונית 5 ומוות מיידי על 10%-15%מהמקרים 6. לאחר השלב הראשוני “אקוטי” של SAH, הפרוגנוזה תלויה בהתרחשות של איסכמיה מוחית “משנית” או מעוכבת (DCI), שזוהתה בכמעט 40% מהחולים על ידי טומוגרפיה ממוחשבת מוחית, ועד 80% מהחולים לאחר הדמיית תהודה מגנטית (MRI)7,8. בנוסף CVS המתרחשים בין 4 ל 21 ימים לאחר קרע מפרצת ברוב של חולי SAH, DCI9 עשוי לנבוע נגעים מוחיים מפוזרים רב-מפזרים משני להיווצרות microthrombosis, הפחתת נוזל מוחי, דלקת עצבית, ודיכאון התפשטות קליפתית (CSD)10,11,12,13. זה משפיע על 30% של ניצולי SAH ומשפיע על תפקודים קוגניטיביים כולל זיכרון חזותי, זיכרון מילולי, זמן תגובה, ותפקודי מנהל, visuospatialושפה 14 פגיעה בחייהיומיום 15. טיפולים סטנדרטיים נוכחיים כדי למנוע CVS ו / או את התוצאות הקוגניטיביות המסכן בחולים SAH מבוססים על החסימה של Ca2+ איתות ו- vasoconstriction באמצעות מעכבי ערוץ Ca2+ כמו Nimodipine. עם זאת, ניסויים קליניים עדכניים יותר המתמקדים בהתחלואה חשפו ניתקה בין התוצאה הנוירולוגית של המטופל ומניעה של CVS16, מה שמצביע על מנגנונים פתופיזיולוגיים מורכבים יותר המעורבים בהשלכות ארוכות הטווח של SAH. לכן, יש צורך רפואי בהבנה רבה יותר של מספר האירועים הפתולוגיים הנלווים SAH ופיתוח מודלים בעלי חיים תקפים ומתורבתים כדי לבדוק התערבויות טיפוליות מקוריות.

הקרע של מפרצת תוך גולגולתית אחראי בעיקר SAH בבני אדם קשה לחקות במודלים בעלי חיים פרה-גולגולתיים. כיום, הקרע במפרצת ומצב SAH יכול להיבדק באופן זמני על ידי ניקוב של העורק המוחי האמצעי (מודל ניקוב אנדווסקולרי) אחראי CVS וssensitivomotor תפקוד לקוי בעכברים17,18. בשל חוסר שליטה אפשרית על תחילת הדימום ודיפוזיה של דם במודל זה, שיטות אחרות פותחו מכרסמים כדי ליצור מודלים SAH ללא קרע אנדווסקולרי. ליתר דיוק, הם מורכבים מהניהל הישיר של דם עורקי לתוך החלל subarachnoid באמצעות זריקה אחת או כפולה ב magna בור19 או זריקה אחת לתוך בור המים prechiasmatic20. היתרון העיקרי של מודלים אלה העכבר ללא קרע אנדווסקולרי היא האפשרות לשלוט באופן רפרוצדור בהליך כירורגי ואת האיכות והכמות של דגימת הדם המוזרק. יתרון נוסף של מודל זה על פני המודל על ידי ניקוב אנדווסקולרי בפרט הוא שימור רווחתו הכללית של בעל החיים. למעשה, ניתוח זה הוא פחות פולשני וטכנית פחות מאתגר מזה הנדרש כדי ליצור קרע בקיר בעורק התו הרכב. במודל האחרון הזה, בעל החיים צריך להיות צנרר ומאוורר מכנית, בעוד מונופילמנט מוכנס בעורק הראשי החיצוני, ומתקדם לתוך העורק הראשי הפנימי. זה כנראה מוביל לאיכימיה ארעית עקב חסימה של כלי השיט על ידי נתיב התיל. כתוצאה מכך, התולדות ההתלומה ההתלומה (מצב moribund, כאב חשוב ומוות) הקשורים לניתוח חשוב פחות במודל הזרקה כפולה לעומת מודל ניקוב אנדווסקולרי. בנוסף להיותו SAH עקבי יותר, שיטת ההזרקה הישירה הכפולה תואמת את רווחת בעלי החיים במחקר ובדיקה (זמן מופחת תחת הרדמה, כאב מהפרעה ברקמות בניתוח ומצוקה) ומוביל למספר מינימלי של בעלי חיים המשמשים למחקר פרוטוקול והכשרת כוח אדם.

יתר על כן, זה מאפשר יישום של אותו פרוטוקול לעכברים טרנסגניים, המוביל הבנה פתולוגית אופטימיזציה של SAH ואת האפשרות של בדיקה השוואתית של תרכובות טיפוליות פוטנציאליות. כאן, אנו מציגים מודל עכבר מתוקננת של דימום subarachnoid (SAH) על ידי הזרקה יומית כפולה ברצף של דם עורקים אוטולוגי לתוך magna בור המים בעכברים C57Bl/6J זכר בן 6-8 שבועות. היתרון העיקרי של מודל זה הוא השליטה של נפח הדימום לעומת מודל ניקוב אנדווסקולרי, וחיזוק האירוע דימום ללא עלייה דרסטית שללחץ תוך גולגולתי 21. לאחרונה, הזרקת דם ישירה כפולה לתוך magna בור המים תוארה היטב על בעיות ניסיוניות ופיזיופתולוגיות בעכברים. אכן, הראינו לאחרונה CVS של עורקים מוחיים גדולים (basilar (BA), אמצע (MCA) ו קדמי (ACA) עורקים מוחיים), תצהיר פיברוסקולרי ואפופטוזיס תא מהיום 3 (D3) כדי 10 (D10), פגמים במחזור הדם של נוזל מוחי שדרתי paravascular בליווי sensitivomotor שונה ותפקודים קוגניטיביים בעכברים, 10 ימים לאחר SAH במודל זה22. לכן, הוא הופך מודל זה שולט, מאומת ומאופיין עבור אירועים לטווח קצר וארוך לאחר SAH. זה צריך להיות מתאים באופן אידיאלי לזיהוי פוטנציאלי של מטרות חדשות ולימו מחקרים על אסטרטגיות טיפוליות חזקות ויעילות נגד סיבוכים הקשורים SAH.

Protocol

כל ההליכים בוצעו תחת פיקוחו של ה. קסטל בהתאם לוועדת האתיקה הצרפתית ולהנחיות הנחיית הפרלמנט האירופי 2010/63/EU והמועצה להגנה על בעלי חיים המשמשים למטרות מדעיות. פרויקט זה אושר על ידי CENOMEXA המקומית וועדת האתיקה הלאומית למחקר וניסויים בבעלי חיים. זכר C57Bl/6J Rj עכברים (Janvier), בגילאי 8-12 שבועות, היו שוכנו…

Representative Results

ציר זמן ניסיוני, הליך, מעקב ותמותהאיור 1א ואיור 1B מסכמים את פרוטוקול מודל SAH על-ידי הזרקת דם כפולה. בקצרה, ביום הראשון של אינדוקציה SAH (D-1), 60 μL של דם נסוג עכבר הומולוגי או 60 μL של נוזל מוחי שדרתי מלאכותי (aCSF) הוזרקו לתוך magna בור מים ב SAH או תנאים מזויפים,…

Discussion

למרות עוצמת המחקר בתחום SAH ופיתוח אסטרטגיות טיפוליות כגון אנדווסקול ואפשרויות טיפול תרופתי גדל במהלך עשרים השנים האחרונות, התמותה נשאר גבוה בשבוע הראשון של אשפוז בבית החולים מגיע כ 50% במהלך 6 החודשיםהבאים 24,25. מודל פרה-קליפתי הנוכחי על ידי הזרקה כפ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לפלטפורמת PRIMACEN (אוניברסיטת נורמנדי רואן, צרפת) על ציוד ההדמיה ומר ארנו אראבו, גברת ג’ולי מקוטל וגברת מרטין דובואה, על דיור וטיפול בבעלי חיים. אנו מודים לגברת סלסט ניקולה על שהשאילה את קולה לקלטת הווידאו של הפרוטוקול. עבודה זו נתמכה על ידי תוכנית ההתבגרות של סינארי נורמנדי, Fondation AVC תחת ה-AEGIS של FRM, אוניברסיטת נורמנדי רואן ו-Inserm. אזור נורמנדי והאיחוד האירופי (פרויקט 3R). אירופה מתערבת בנורמנדי עם הקרן האירופית לפיתוח אזורי (ERDF).

Materials

absorbable hemostat Ethicon Surgicel
absorbable suturing thread Ethicon Vicryl 5.0
auto-regulated electric blanket Harvard Apparatus 50-7087-F
bluetack for capillary fixation UHU Patafix
electronic balance Denver Instrument MXX-2001
glass capillaries Harvard Apparatus GC150F-15 inner diameter 0.86 mm
outer diameter 1.5 mm
isoflurane vaporizer Phymep V100
micropipette puller Sutter Instrument Company P-97
needle 26 G BD microbalance 300300
non absorbable suturing thread Peters surgical Filapeau 4.0
stereotaxic frame David Kopf instruments Model 902
surgical equipment Kent scientific clamp, microscissors, thin scissors
syringe 20 mL TERUMO Thermofisher 11866071

References

  1. Rincon, F., Rossenwasser, R. H., Dumont, A. The epidemiology of admissions of nontraumatic subarachnoid hemorrhage in the United States. Neurosurgery. 73 (2), 212-222 (2013).
  2. Sandvei, M. S., et al. Incidence and mortality of aneurysmal subarachnoid hemorrhage in two Norwegian cohorts, 1984-2007. Neurology. 77 (20), 1833-1839 (2011).
  3. van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. Subarachnoid haemorrhage. Lancet. 369 (9558), 306-318 (2007).
  4. Solenski, N. J., et al. Medical complications of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a report of the multicenter, cooperative aneurysm study. Participants of the Multicenter Cooperative Aneurysm Study. Critical Care Medicine. 23 (6), 1007-1017 (1995).
  5. Cahill, J., Calvert, J. W., Zhang, J. H. Mechanisms of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 26 (11), 1341-1353 (2006).
  6. Huang, J., van Gelder, J. M. The probability of sudden death from rupture of intracranial aneurysms: a meta-analysis. Neurosurgery. 51 (5), 1101-1107 (2002).
  7. Rabinstein, A. A. Secondary brain injury after aneurysmal subarachnoid haemorrhage: more than vasospasm. Lancet Neurology. 10 (7), 593-595 (2011).
  8. Kivisaari, R. P., et al. MR Imaging After Aneurysmal Subarachnoid Hemorrhage and Surgery: A Long-term Follow-up Study. American Journal of Neuroradiology. 22 (6), 1143-1148 (2001).
  9. Mayberg, M. R., et al. Guidelines for the management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. A statement for healthcare professionals from a special writing group of the Stroke Council, American Heart Association. Stroke. 25 (11), 2315-2328 (1994).
  10. Dankbaar, J. W., et al. Relationship between vasospasm, cerebral perfusion, and delayed cerebral ischemia after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neuroradiology. 51 (12), 813-819 (2009).
  11. Sehba, F. A., Hou, J., Pluta, R. M., Zhang, J. H. The importance of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Progress in Neurobiology. 97 (1), 14-37 (2012).
  12. Miller, B. A., Turan, N., et al. Inflammation, vasospasm, and brain injury after subarachnoid hemorrhage. BioMed Res Int. 2014, 384342 (2014).
  13. Dreier, J. P., et al. Delayed ischaemic neurological deficits after subarachnoid haemorrhage are associated with clusters of spreading depolarizations. Brain. 129, 3224-3237 (2006).
  14. Mayer, S., et al. Global and domain-specific cognitive impairment and outcome after subarachnoid hemorrhage. Neurology. 59 (11), 1750-1758 (2002).
  15. Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Stroke. 41 (8), 519-536 (2010).
  16. Macdonald, R. L., et al. Randomized trial of clazosentan in patients with aneurysmal subarachnoid hemorrhage undergoing endovascular coiling. Stroke. 43 (6), 1463-1469 (2012).
  17. Parra, A., et al. Mouse model of subarachnoid hemorrhage associated cerebral vasospasm: methodological analysis. Neurological Research. 24 (5), 510-516 (2002).
  18. Schuller, K., Buhler, D., Plesnila, N. A murine model of subarachnoid hemorrhage. Journal of Visualized Experiments. (81), e50845 (2013).
  19. Lin, C. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 123 (1), 89-97 (2003).
  20. Sabri, M., et al. Anterior circulation mouse model of subarachnoid hemorrhage. Brain Research. 1295, 179-185 (2009).
  21. Leclerc, J. L., et al. A Comparison of Pathophysiology in Humans and Rodent Models of Subarachnoid Hemorrhage. Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 71 (2018).
  22. El Amki, M., et al. Long-Lasting Cerebral Vasospasm, Microthrombosis, Apoptosis and Paravascular Alterations Associated with Neurological Deficits in a Mouse Model of Subarachnoid Hemorrhage. Molecular Neurobiology. 55 (4), 2763-2779 (2018).
  23. Clavier, T., et al. Association between vasoactive peptide urotensin II in plasma and cerebral vasospasm after aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a potential therapeutic target. Journal of Neurosurgery. , 1-11 (2018).
  24. Kundra, S., Mahendru, V., Gupta, V., Choudhary, A. K. Principles of neuroanesthesia in aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Journal of Anaesthesiology Clinical Pharmacology. 30 (3), 328-337 (2014).
  25. Schertz, M., et al. Incidence and Mortality of Spontaneous Subarachnoid Hemorrhage in Martinique. PLOS ONE. 11 (5), 0155945 (2016).
  26. Lin, C. -. L., et al. A murine model of subarachnoid hemorrhage-induced cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 123 (1), 89-97 (2003).
  27. Prunell, G. F., Mathiesen, T., Diemer, N. H., Svendgaard, N. -. A. Experimental subarachnoid hemorrhage: subarachnoid blood volume, mortality rate, neuronal death, cerebral blood flow, and perfusion pressure in three different rat models. Neurosurgery. 52 (1), 165-176 (2003).
  28. Turowski, B., et al. New angiographic measurement tool for analysis of small cerebral vessels: application to a subarachnoid haemorrhage model in the rat. Neuroradiology. 49 (2), 129-137 (2007).
  29. Boyko, M., et al. The neuro-behavioral profile in rats after subarachnoid hemorrhage. Brain Research. 1491, 109-116 (2013).
  30. Muñoz-Sánchez, M. &. #. 1. 9. 3. ;., et al. Urotensinergic system genes in experimental subarachnoid hemorrhage. Medicina Intensiva (English Edition). 41 (8), 468-474 (2017).
  31. Delgado, T., Brismar, J., Svendgaard, N. A. Subarachnoid haemorrhage in the rat: angiography and fluorescence microscopy of the major cerebral arteries. Stroke. 16 (4), 595-602 (1985).
  32. Solomon, R. A., Antunes, J. L., Chen, R., Bland, L., Chien, S. Decrease in cerebral blood flow in rats after experimental subarachnoid hemorrhage: a new animal model. Stroke. 16 (1), 58-64 (1985).
  33. Ram, Z., Sahar, A., Hadani, M. Vasospasm due to massive subarachnoid haemorrhage-a rat model. Acta Neurochirurgica. 110 (3-4), 181-184 (1991).
  34. Glenn, T. C., et al. Subarachnoid hemorrhage induces dynamic changes in regional cerebral metabolism in rats. Journal of Neurotrauma. 19 (4), 449-466 (2002).
  35. Gules, I., Satoh, M., Clower, B. R., Nanda, A., Zhang, J. H. Comparison of three rat models of cerebral vasospasm. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 283 (6), 2551-2559 (2002).
  36. Sabri, M., et al. Mechanisms of microthrombi formation after experimental subarachnoid hemorrhage. Neuroscience. 224, 26-37 (2012).
  37. Jeon, H., Ai, J., Sabri, M., Tariq, A., Macdonald, R. Learning deficits after experimental subarachnoid hemorrhage in rats. Neuroscience. 169 (4), 1805-1814 (2010).
  38. Silasi, G., Colbourne, F. Long-term assessment of motor and cognitive behaviours in the intraluminal perforation model of subarachnoid hemorrhage in rats. Behavioural Brain Researchearch. 198 (2), 380-387 (2009).
  39. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke. 26 (6), 1086-1092 (1995).
  40. Bederson, J. B., et al. Acute vasoconstriction after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 42 (2), 352-362 (1998).
  41. Park, I. -. S., et al. Subarachnoid hemorrhage model in the rat: modification of the endovascular filament model. Journal of Neuroscience Methods. 172 (2), 195-200 (2008).
  42. Vanden Bergh, W., et al. Magnetic resonance imaging in experimental subarachnoid haemorrhage. Acta Neurochirurgica. 147 (9), 977-983 (2005).
  43. Peng, J., et al. LRP1 activation attenuates white matter injury by modulating microglial polarization through Shc1/PI3K/Akt pathway after subarachnoid hemorrhage in rats. Redox Biology. 21, 101121 (2019).
  44. Okada, T., et al. Selective Toll-Like Receptor 4 Antagonists Prevent Acute Blood-Brain Barrier Disruption After Subarachnoid Hemorrhage in Mice. Molecular Neurobiology. 56 (2), 976-985 (2019).
  45. Tiebosch, I. A., et al. Progression of brain lesions in relation to hyperperfusion from subacute to chronic stages after experimental subarachnoid hemorrhage: a multiparametric MRI study. Cerebrovascular Diseases. 36 (3), 167-172 (2013).
  46. Weidauer, S., Vatter, H., Dettmann, E., Seifert, V., Zanella, F. E. Assessment of vasospasm in experimental subarachnoid hemorrhage in rats by selective biplane digital subtraction angiography. Neuroradiology. 48 (3), 176-181 (2006).
  47. Lee, J. Y., Huang, D. L., Keep, R., Sagher, O. Characterization of an improved double hemorrhage rat model for the study of delayed cerebral vasospasm. Journal of Neuroscience Methods. 168 (2), 358-366 (2008).
  48. Cai, J., et al. A novel intravital method to evaluate cerebral vasospasm in rat models of subarachnoid hemorrhage: a study with synchrotron radiation angiography. PloS one. 7 (3), 33366 (2012).
  49. Piepgras, A., Thome, C., Schmiedek, P. Characterization of an anterior circulation rat subarachnoid hemorrhage model. Stroke. 26 (12), 2347-2352 (1995).
  50. Rosenberg, G. A., Mun-Bryce, S., Wesley, M., Kornfeld, M. Collagenase-induced intracerebral hemorrhage in rats. Stroke. 21 (5), 801-807 (1990).
  51. Raslan, F., et al. A modified double injection model of cisterna magna for the study of delayed cerebral vasospasm following subarachnoid hemorrhage in rats. Experimental & Translational Stroke Medicine. 4 (1), 23 (2012).
  52. Cai, J., et al. A novel intravital method to evaluate cerebral vasospasm in rat models of subarachnoid hemorrhage: a study with synchrotron radiation angiography. PLoS One. 7 (3), 33366 (2012).
  53. Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 65 (2), 331-343 (2009).
  54. Guresir, E., et al. The effect of common carotid artery occlusion on delayed brain tissue damage in the rat double subarachnoid hemorrhage model. Acta Neurochir (Wien). 154 (1), 11-19 (2012).
  55. Vatter, H., et al. Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model. Neurosurgery. 58 (6), 1190-1197 (2006).
  56. Leonardo, C. C., Robbins, S., Doré, S. Translating basic science research to clinical application: models and strategies for intracerebral hemorrhage. Frontiers in Neurology. 3, 85 (2012).
  57. Feiler, S., Friedrich, B., Schöller, K., Thal, S. C., Plesnila, N. Standardized induction of subarachnoid hemorrhage in mice by intracranial pressure monitoring. Journal of Neuroscience Methods. 190 (2), 164-170 (2010).
  58. Westermaier, T., Jauss, A., Eriskat, J., Kunze, E., Roosen, K. Acute vasoconstriction: decrease and recovery of cerebral blood flow after various intensities of experimental subarachnoid hemorrhage in rats. Journal of Neurosurgery. 110 (5), 996-1002 (2009).
  59. van Lieshout, J. H., et al. An introduction to the pathophysiology of aneurysmal subarachnoid hemorrhage. Neurosurgical Review. 41 (4), 917-930 (2018).
  60. Conzen, C., et al. The Acute Phase of Experimental Subarachnoid Hemorrhage: Intracranial Pressure Dynamics and Their Effect on Cerebral Blood Flow and Autoregulation. Translational Stroke Research. 10 (5), 566-582 (2019).
  61. Connolly, E. S., et al. Guidelines for the management of aneurysmal subarachnoid hemorrhage: a guideline for healthcare professionals from the American Heart Association/american Stroke Association. Stroke. 43 (6), 1711-1737 (2012).

Play Video

Cite This Article
Pedard, M., El Amki, M., Lefevre-Scelles, A., Compère, V., Castel, H. Double Direct Injection of Blood into the Cisterna Magna as a Model of Subarachnoid Hemorrhage. J. Vis. Exp. (162), e61322, doi:10.3791/61322 (2020).

View Video