Summary

Blast Wave-model met lage intensiteit voor preklinische beoordeling van licht traumatisch hersenletsel met gesloten hoofd bij knaagdieren

Published: November 06, 2020
doi:

Summary

We presenteren hier een protocol van een explosiegolfmodel voor knaagdieren om neurobiologische en pathofysiologische effecten van mild tot matig traumatisch hersenletsel te onderzoeken. We hebben een gasgestuurde, bench-top opstelling opgezet die is uitgerust met druksensoren die een betrouwbare en reproduceerbare generatie van door ontploffing geïnduceerd mild tot matig traumatisch hersenletsel mogelijk maken.

Abstract

Traumatisch hersenletsel (TBI) is een grootschalig probleem voor de volksgezondheid. Milde TBI is de meest voorkomende vorm van neurotrauma en is goed voor een groot aantal medische bezoeken in de Verenigde Staten. Er zijn momenteel geen door de FDA goedgekeurde behandelingen beschikbaar voor TBI. De toegenomen incidentie van militair gerelateerde, door ontploffingen geïnduceerde TBI accentueert de dringende behoefte aan effectieve TBI-behandelingen verder. Daarom zullen nieuwe preklinische TBI-diermodellen die aspecten van human blast-gerelateerde TBI samenvatten, de onderzoeksinspanningen naar de neurobiologische en pathofysiologische processen die ten grondslag liggen aan milde tot matige TBI aanzienlijk bevorderen, evenals de ontwikkeling van nieuwe therapeutische strategieën voor TBI.

Hier presenteren we een betrouwbaar, reproduceerbaar model voor het onderzoek naar de moleculaire, cellulaire en gedragseffecten van milde tot matige blast-geïnduceerde TBI. We beschrijven een stapsgewijs protocol voor gesloten hoofd, blast-geïnduceerde milde TBI bij knaagdieren met behulp van een bench-top opstelling bestaande uit een gasaangedreven schokbuis uitgerust met piëzo-elektrische druksensoren om consistente testomstandigheden te garanderen. De voordelen van de installatie die we hebben vastgesteld, zijn de relatief lage kosten, het installatiegemak, het gebruiksgemak en de hoge doorvoercapaciteit. Verdere voordelen van dit niet-invasieve TBI-model zijn de schaalbaarheid van de blast peak overdruk en het genereren van gecontroleerde reproduceerbare uitkomsten. De reproduceerbaarheid en relevantie van dit TBI-model is geëvalueerd in een aantal downstream-toepassingen, waaronder neurobiologische, neuropathologische, neurofysiologische en gedragsanalyses, ter ondersteuning van het gebruik van dit model voor de karakterisering van processen die ten grondslag liggen aan de etiologie van milde tot matige TBI.

Introduction

Traumatisch hersenletsel (TBI) is goed voor meer dan twee miljoen ziekenhuisbezoeken per jaar in de Verenigde Staten alleen. Milde TBI vaak als gevolg van auto-ongelukken, sportevenementen of vallen vertegenwoordigen ongeveer 80% van alle TBI-gevallen1. Milde TBI wordt beschouwd als de ‘stille ziekte’ omdat patiënten vaak geen openlijke symptomen ervaren in de dagen en maanden na de eerste belediging, maar later in het leven ernstige TBI-gerelateerde complicaties kunnen ontwikkelen2. Bovendien komt blast-geïnduceerde milde TBI veel voor bij leden van de militaire dienst en is het in verband gebracht met chronische CZS-disfunctie3,4,5,6. Vanwege de stijgende incidentie van blastaire milde TBI7,8 is preklinische modellering van neurobiologische en pathofysiologische processen geassocieerd met milde TBI dus een focus geworden in de ontwikkeling van nieuwe therapeutische interventies voor TBI.

Historisch gezien heeft TBI-onderzoek zich voornamelijk gericht op ernstige vormen van neurotrauma, ondanks het relatief lagere aantal ernstige menselijke TBI-gevallen. Preklinische knaagdiermodellen voor ernstige menselijke TBI zijn ontwikkeld, waaronder de controlled cortical impact (CCI)9,10 en fluid percussion injury (FPI)11 modellen, die beide goed ingeburgerd zijn om betrouwbare pathofysiologische effecten te produceren12,13. Deze modellen hebben de basis gelegd voor wat vandaag bekend is over neuro-inflammatie, neurodegeneratie en neuronale reparatie in TBI. Hoewel er aanzienlijke kennis van de pathofysiologie van TBI is ontwikkeld, zijn er momenteel geen effectieve, door de FDA goedgekeurde behandelingen beschikbaar voor TBI.

Meer recent is de focus van TBI-onderzoek verbreed naar een breder spectrum van TBI-gerelateerde pathologieën met als uiteindelijk doel effectieve therapeutische interventies te ontwikkelen. Niettemin zijn er weinig preklinische modellen voor milde TBI vastgesteld die meetbare effecten hebben aangetoond, en slechts een klein aantal studies heeft het milde TBI-spectrum2,14,15 onderzocht. Aangezien milde TBI verantwoordelijk is voor de grote meerderheid van alle TBI-gevallen, zijn betrouwbare modellen van milde TBI dringend nodig om onderzoek naar de etiologie en neuropathofysiologie van de menselijke conditie te vergemakkelijken, om nieuwe therapeutische strategieën te ontwikkelen.

In samenwerking met biomedische ingenieurs en lucht- en ruimtevaartfysici hebben we een schaalbaar, gesloten-head blast wave-model opgezet voor milde tot matige TBI. Dit preklinische knaagdiermodel is speciaal ontwikkeld om de effecten van krachtdynamiek te onderzoeken, waaronder explosiegolven en versnellings- / vertragingsbewegingen, die geassocieerd zijn met menselijke milde TBI verkregen in militaire gevechten, sportevenementen, auto-ongelukken en vallen. Omdat explosiegolven correleren met de krachtdynamiek die milde TBI bij mensen veroorzaakt, is dit model ontworpen om een consistente Friedlander-golfvorm te produceren met een impuls, die wordt gemeten als ponden per vierkante inch (psi) * milliseconde (ms). Het impulsniveau wordt geschaald om onder de gedefinieerde longhindercurven voor muizen en ratten te vallen om preklinisch onderzoek uit te voeren16,17,18. Bovendien maakt dit model onderzoek mogelijk naar coup- en contrecoup-letsel als gevolg van snelle rotatiekrachten van het hoofd van het dier. Dit soort letsel is inherent aan verschillende soorten klinische TBI-presentaties, waaronder die waargenomen bij zowel militaire als civiele populaties. Daarom past dit veelzijdige model in een behoefte die meerdere klinische presentaties van TBI omvat.

Het hier gepresenteerde preklinische model produceert betrouwbare en reproduceerbare pathofysiologische veranderingen geassocieerd met klinisch milde TBI zoals aangetoond door een aantal eerdere studies17,19,20,21,22,23. Studies met dit model toonden aan dat ratten die werden onderworpen aan een ontploffingsgolf met lage intensiteit neuro-inflammatie, axonaal letsel, microvasculaire schade, biochemische veranderingen gerelateerd aan neuronale schade en tekorten in plasticiteit op korte termijn en synaptische prikkelbaarheid vertoonden19. Dit milde TBI-model induceerde echter geen macroscopische neuropathologische veranderingen, waaronder weefselbeschadiging, bloeding, hematoom en kneuzing19 die vaak zijn waargenomen in studies met matige tot ernstige invasieve TBI-modellen10,24. Eerder onderzoek19,21,22,23 heeft aangetoond dat dit preklinische model kan worden gebruikt om neurobiologische en pathofysiologische processen te karakteriseren die ten grondslag liggen aan de etiologie van milde en matige TBI17,19,20,21,22,23. Dit model maakt het ook mogelijk om nieuwe therapeutische verbindingen en strategieën te testen, evenals de identificatie van nieuwe, geschikte doelen voor de ontwikkeling van effectieve TBI-interventies19,21,22,23.

Dit model is ontwikkeld om effecten te onderzoeken die worden veroorzaakt door explosiegolven en snelle rotatiekrachten op moleculaire, cellulaire en gedragsmatige uitkomsten bij knaagdieren. Analoog aan het hier gepresenteerde explosiegolfmodel is een aantal preklinische modellen ontwikkeld die proberen milde tot matige TBI samen te vatten met behulp van gasgestuurde overdrukgolven2,14,17,25,26,27,28. Enkele van de beperkingen van andere modellen zijn: het dier is bevestigd aan een gaasgurney en het hoofd wordt geïmmobiliseerd bij impact; de perifere organen worden naast de hersenen blootgesteld aan de golf, waardoor de verstorende variabelen van polytrauma ontstaan; en de modellen zijn groot en stationair, wat het veranderen en aanpassen van kritische parameters beperkt tot betere modelomstandigheden die doen denken aan menselijke TBI.

De voordelen van deze bench-top, gasgestuurde schokbuisopstelling zijn de relatief lage kosten voor aanschaf- en bedrijfskosten, evenals het gemak van installatie en gebruik. Bovendien maakt de opstelling een hoge doorvoer en het genereren van gecontroleerde reproduceerbare explosiegolven en in vivo resultaten bij zowel muizen als ratten mogelijk. Om te kunnen controleren op consistente testomstandigheden (d.w.z. constante straalgolf en overdruk) is de opstelling uitgerust met druksensoren. De voordelen van dit model voor TBI zijn onder meer de schaalbaarheid van de ernst van het letsel en dat milde TBI wordt geïnduceerd met behulp van een niet-invasieve, gesloten hoofdprocedure. Piekoverdruk en daaropvolgende hersenletsel nemen toe met dikkere polyester membranen op een consistente schaalbare manier17. De mogelijkheid om de ernst van TBI te schalen door middel van membraandikte is een nuttig hulpmiddel om het niveau te bepalen waarop specifieke uitkomstmaten (bijv. Neuro-inflammatie) duidelijk worden. Het bieden van beschermende afscherming voor de perifere organen maakt ook gericht onderzoek naar milde TBI-mechanismen mogelijk door verstorende variabelen van systemisch letsel, zoals long- of thoracale schade, te vermijden of te verminderen. Bovendien maakt deze opstelling het mogelijk om de richting te selecteren, waardoor de ontploffingsgolf het hoofd raakt / binnendringt (d.w.z. frontaal, zijkant, boven of onder) en daarom kunnen verschillende soorten TBI-inducerende beledigingen worden onderzocht. De hier beschreven standaardprocedure voor het induceren van milde tot matige TBI maakt gebruik van zijdelingse blootstelling om de effecten van explosiegolfletsel in combinatie met coup- en contrecoupletsel als gevolg van snelle rotatiekrachten te evalueren. Bovendien kan, om uitsluitend door explosie geïnduceerd letsel te onderzoeken, top-down explosiegolfblootstelling worden gebruikt in dit model.

Protocol

Het protocol volgt de richtlijnen voor dierverzorging van de Universiteit van Cincinnati en de West Virginia University. Alle procedures met betrekking tot dieren werden goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committees (IACUC) en werden uitgevoerd volgens de principes van de Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 1. Installatie van de blast TBI setup Verkrijg alle werkende onderdelen die nodig zijn voor de installatie, waaronder: schokbuis…

Representative Results

De schaalbaarheid van de blast wave setup werd getest met behulp van drie verschillende membraandiktes, 25,4, 50,8 en 76,2 μm. Piekdrukniveaus werden beoordeeld op het hoofdplaatsingsgebied en de uitgang van het schokbuisapparaat met behulp van piëzo-elektrische druksensoren (zie figuur 1 en figuur 2). Piekdrukken nemen toe in overeenstemming met de membraandikte op beide sensorlocaties (figuur 3A,B), wat aantoont…

Discussion

We presenteren hier een preklinisch mild TBI-model dat kosteneffectief is, eenvoudig in te stellen en uit te voeren, en zorgt voor high-throughput, betrouwbare en reproduceerbare experimentele resultaten. Dit model biedt beschermende afscherming aan perifere organen om gericht onderzoek naar milde TBI-mechanismen mogelijk te maken en tegelijkertijd de verstorende variabelen van systemisch letsel te beperken. Van andere blastaire modellen is daarentegen bekend dat ze schade toebrengen aan perifere organen2,39,40.<sup clas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij danken R. Gettens, N. St. Johns, P. Bennet en J. Robson voor hun bijdragen aan de ontwikkeling van het TBI-model. NARSAD Young Investigator Grants van de Brain & Behavior Research Foundation (F.P. en M.J.R.), een Research Grant van het Darrell K. Royal Research Fund for Alzheimer’s Disease (F.P.) en een PhRMA Foundation Award (M.J.R.) ondersteunden dit onderzoek. Dit werk werd ondersteund door predoctorale beurzen van de American Foundation for Pharmaceutical Education (A.F.L en B.P.L.).

Materials

3/8 SAE High Pressure Hydraulic Hose Eaton Aeroquip R2-6-6-36M Available from Grainger
3/8'' Quick Connect Female Plugs Karcher KAR 86410440
3/8'' Quick Connect Male Plugs Karcher KAR 86410440
ANY-maze video tracking software Stoelting Co. ANY-maze software
Clear Mylar membrane ePlastics.com POLYCLR0.003 http://www.eplastics.com/Plastic/Clear_Polyester_Film/POLYCLR0-003; Clear Mylar membrane is sold in various thicknesses. All are sold by vendor listed above.
Compound Slide Table (X2) Grizzly Industrial G5757
Deadman Gas Control Ball Valve Coneraco Inc. 71-502-01 "Apollo", Available from Grainger
Driver and driven section (murine) own design/production n/a For further information please contact the authors
Driver and driven section (rat) own design/production n/a For further information please contact the authors
Ear Muffs 3M 37274 Available from Grainger
Gas Regulator – Hi Flow 3500-600-580 Harris 3003539
Helium Gas AirGas HE 300 Tanks are available in various sizes
Inhalation Anesthesia System VetEquip 901806
Input Module National Instruments NI 9223
Isoflurane Baxter NDC 10019-360-40 Ordered by veterinarian
Laboratory Timer/Stopwatch Fisher Scientific 50-550-352
Labview version 12.0 National Instruments Data Acquistion Software
Magnetic Dial Indicator/Micrometer Grizzly Industrial G9849
MATLAB MathWorks Software for pressure recording analysis
Oxygen Regulator Medline HCS8725M
PC for Data Processing Dell
Polyvinylchloride Tubing – 25.4 mm FORMUFIT P001FGP-WH-40×3
Pressure sensors PCB Piezotronics 102A05
Receiver USB Chassis National Instruments DAQ-9171
Sensor Signal Conditioner PCB Piezotronics 482C series
Stainless NSF-Rated Mounting Table Gridmann GR06-WT2448
T Handle Allen Wrench – 3/16'' S&K 73310

References

  1. Bazarian, J. J., et al. Mild traumatic brain injury in the United States, 1998–2000. Brain Injury. 19 (2), 85-91 (2005).
  2. Meabon, J. S., et al. Repetitive blast exposure in mice and combat veterans causes persistent cerebellar dysfunction. Science Translational Medicine. 8 (321), (2016).
  3. Mac Donald, C. L., et al. Detection of blast-related traumatic brain injury in U.S. military personnel. New England Journal of Medicine. 364 (22), 2091-2100 (2011).
  4. Fischer, B. L., et al. Neural activation during response inhibition differentiates blast from mechanical causes of mild to moderate traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 31 (2), 169-179 (2014).
  5. Peskind, E. R., et al. Cerebrocerebellar hypometabolism associated with repetitive blast exposure mild traumatic brain injury in 12 Iraq war Veterans with persistent post-concussive symptoms. Neuroimage. 54, 76-82 (2011).
  6. Jorge, R. E., et al. White matter abnormalities in veterans with mild traumatic brain injury. American Journal of Psychiatry. 169 (12), 1284-1291 (2012).
  7. Hoge, C. W., et al. Mild traumatic brain injury in U.S. Soldiers returning from Iraq. New England Journal of Medicine. 358 (5), 453-463 (2008).
  8. Eskridge, S. L., et al. Injuries from combat explosions in Iraq: injury type, location, and severity. Injury. 43 (10), 1678-1682 (2012).
  9. Lighthall, J. W. Controlled cortical impact: a new experimental brain injury model. Journal of Neurotrauma. 5 (1), 1-15 (1988).
  10. Dixon, C. E., Clifton, G. L., Lighthall, J. W., Yaghmai, A. A., Hayes, R. L. A controlled cortical impact model of traumatic brain injury in the rat. Journal of Neuroscience Methods. 39 (3), 253-262 (1991).
  11. McIntosh, T. K., et al. Traumatic brain injury in the rat: characterization of a lateral fluid-percussion model. Neuroscience. 28 (1), 233-244 (1989).
  12. Thompson, H. J., et al. Lateral fluid percussion brain injury: a 15-year review and evaluation. Journal of Neurotrauma. 22 (1), 42-75 (2005).
  13. Osier, N., Dixon, C. E. Mini Review of Controlled Cortical Impact: A Well-Suited Device for Concussion Research. Brain Sciences. 7 (7), (2017).
  14. Goldstein, L. E., et al. Chronic traumatic encephalopathy in blast-exposed military veterans and a blast neurotrauma mouse model. Science Translational Medicine. 4 (134), (2012).
  15. Rodriguez-Grande, B., et al. Gliovascular changes precede white matter damage and long-term disorders in juvenile mild closed head injury. Glia. 66 (8), 1663-1677 (2018).
  16. Bowen, I. G., Fletcher, E. R., Richmond, D. R., Hirsch, F. G., White, C. S. Biophysical mechanisms and scaling procedures applicable in assessing responses of the thorax energized by air-blast overpressures or by nonpenetrating missiles. Annals of the New York Academy of Sciences. 152 (1), 122-146 (1968).
  17. Turner, R. C., et al. Modeling clinically relevant blast parameters based on scaling principles produces functional & histological deficits in rats. Experimental Neurology. , 520-529 (2013).
  18. Lucke-Wold, B. P., et al. Elucidating the role of compression waves and impact duration for generating mild traumatic brain injury in rats. Brain Injury. 31 (1), 98-105 (2017).
  19. Hernandez, A., et al. Exposure to mild blast forces induces neuropathological effects, neurophysiological deficits and biochemical changes. Molecular Brain. 11 (1), 64 (2018).
  20. Bittar, A., et al. Neurotoxic tau oligomers after single versus repetitive mild traumatic brain injury. Brain Communications. 1 (1), (2019).
  21. Logsdon, A. F., et al. Salubrinal reduces oxidative stress, neuroinflammation and impulsive-like behavior in a rodent model of traumatic brain injury. Brain Research. 1643, 140-151 (2016).
  22. Lucke-Wold, B. P., et al. Bryostatin-1 Restores Blood Brain Barrier Integrity following Blast-Induced Traumatic Brain Injury. Molecular Neurobiology. 52 (3), 1119-1134 (2015).
  23. Logsdon, A. F., et al. Altering endoplasmic reticulum stress in a model of blast-induced traumatic brain injury controls cellular fate and ameliorates neuropsychiatric symptoms. Frontiers in Cellular Neuroscience. 8, 421 (2014).
  24. Dixon, C. E., et al. A fluid percussion model of experimental brain injury in the rat. Journal of Neurosurgery. 67 (1), 110-119 (1987).
  25. Long, J. B., et al. Blast overpressure in rats: recreating a battlefield injury in the laboratory. Journal of Neurotrauma. 26 (6), 827-840 (2009).
  26. Budde, M. D., et al. Primary blast traumatic brain injury in the rat: relating diffusion tensor imaging and behavior. Frontiers in Neurology. 4, 154 (2013).
  27. Genovese, R. F., et al. Effects of mild TBI from repeated blast overpressure on the expression and extinction of conditioned fear in rats. Neuroscience. 254, 120-129 (2013).
  28. Kuriakose, M., Rama Rao, K. V., Younger, D., Chandra, N. Temporal and Spatial Effects of Blast Overpressure on Blood-Brain Barrier Permeability in Traumatic Brain Injury. Scientific Reports. 8 (1), 8681 (2018).
  29. Cernak, I., et al. The pathobiology of blast injuries and blast-induced neurotrauma as identified using a new experimental model of injury in mice. Neurobiology of Disease. 41 (2), 538-551 (2011).
  30. Prima, V., Serebruany, V. L., Svetlov, A., Hayes, R. L., Svetlov, S. I. Impact of moderate blast exposures on thrombin biomarkers assessed by calibrated automated thrombography in rats. Journal of Neurotrauma. 30 (22), 1881-1887 (2013).
  31. Mishra, V., et al. Primary blast causes mild, moderate, severe and lethal TBI with increasing blast overpressures: Experimental rat injury model. Scientific Reports. 6, 26992 (2016).
  32. Tompkins, P., et al. Brain injury: neuro-inflammation, cognitive deficit, and magnetic resonance imaging in a model of blast induced traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 30 (22), 1888-1897 (2013).
  33. Kuriakose, M., et al. Tailoring the Blast Exposure Conditions in the Shock Tube for Generating Pure, Primary Shock Waves: The End Plate Facilitates Elimination of Secondary Loading of the Specimen. Public Library of Science One. 11 (9), 0161597 (2016).
  34. Panzer, M. B., et al. A Multiscale Approach to Blast Neurotrauma Modeling: Part I – Development of Novel Test Devices for in vivo and in vitro Blast Injury Models. Frontiers in Neurology. 3, 46 (2012).
  35. Logsdon, A. F., et al. A mouse Model of Focal Vascular Injury Induces Astrocyte Reactivity, Tau Oligomers, and Aberrant Behavior. Archives of Neuroscience. 4 (2), (2017).
  36. Lee, M. C., Klassen, A. C., Heaney, L. M., Resch, J. A. Respiratory rate and pattern disturbances in acute brain stem infarction. Stroke. 7 (4), 382-385 (1976).
  37. Ikeda, K., et al. The respiratory control mechanisms in the brainstem and spinal cord: integrative views of the neuroanatomy and neurophysiology. Journal of Physiological Sciences. 67 (1), 45-62 (2017).
  38. Alilain, W. J., Horn, K. P., Hu, H., Dick, T. E., Silver, J. Functional regeneration of respiratory pathways after spinal cord injury. Nature. 475 (7355), 196-200 (2011).
  39. Logsdon, A. F., et al. Blast exposure elicits blood-brain barrier disruption and repair mediated by tight junction integrity and nitric oxide dependent processes. Scientific Reports. 8 (1), 11344 (2018).
  40. Logsdon, A. F., et al. Nitric oxide synthase mediates cerebellar dysfunction in mice exposed to repetitive blast-induced mild traumatic brain injury. Scientific Reports. 10 (1), 9420 (2020).
  41. Huber, B. R., et al. Blast exposure causes dynamic microglial/macrophage responses and microdomains of brain microvessel dysfunction. Neuroscience. 319, 206-220 (2016).
  42. Gama Sosa, M. A., et al. Low-level blast exposure disrupts gliovascular and neurovascular connections and induces a chronic vascular pathology in rat brain. Acta Neuropathologica Communications. 7 (1), 6 (2019).
  43. Abutarboush, R., et al. Exposure to Blast Overpressure Impairs Cerebral Microvascular Responses and Alters Vascular and Astrocytic Structure. Journal of Neurotrauma. 36 (22), 3138-3157 (2019).
  44. Xiong, Y., Mahmood, A., Chopp, M. Animal models of traumatic brain injury. Nature Reviews: Neuroscience. 14 (2), 128-142 (2013).
  45. Petraglia, A. L., et al. Concussion in the absence of head impact: a case in a collegiate hammer thrower. Current Sports Medicine Reports. 14 (1), 11-15 (2015).
  46. Viano, D. C., Casson, I. R., Pellman, E. J. Concussion in professional football: biomechanics of the struck player–part 14. Neurosurgery. 61 (2), 313-327 (2007).

Play Video

Cite This Article
Logsdon, A. F., Lucke-Wold, B. P., Turner, R. C., Collins, S. M., Reeder, E. L., Huber, J. D., Rosen, C. L., Robson, M. J., Plattner, F. Low-intensity Blast Wave Model for Preclinical Assessment of Closed-head Mild Traumatic Brain Injury in Rodents. J. Vis. Exp. (165), e61244, doi:10.3791/61244 (2020).

View Video