Cette méthode permet de quantifier gravimétriquement les substances humiques (p. ex. les acides humique et fulvique) sans cendres, dans les matières sèches et liquides provenant de charbons mous (c.-à-d. lignite oxydé et non oxydé et charbon sous-bitumineux), de minerais d’humate et de schistes, de tourbes, de composts et d’engrais commerciaux et d’amendements du sol.
Le but de cette méthode est de fournir une concentration exacte et précise d’acides humiques (HA) et/ou fulviques (AF) dans les charbons tendres, les minerais humiques et les schistes, les tourbes, les composts et les produits commerciaux contenant des substances humiques. La méthode est basée sur l’extraction alcaline de matériaux d’essai, en utilisant 0,1 N NaOH comme extracteur, et la séparation des substances humiques solubles alcalines (HS) des produits non solubles par centrifugation. Le pH de l’extrait alcalin centrifugé est ensuite ajusté à pH 1 avec conc. HCl, ce qui entraîne une précipitation de l’HA. Les HA précipités sont séparés de la fraction fulvique (FF) (la fraction de SH qui reste en solution) par centrifugation. L’AH est ensuite cuit au four ou lyophilisé et la teneur en cendres de l’HA séché est déterminée. Le poids de l’HA pur (c’est-à-dire sans cendres) est ensuite divisé par le poids de l’échantillon et la fraction résultante multipliée par 100 pour déterminer le % d’HA dans l’échantillon. Pour déterminer la teneur en FA, le FF est chargé sur une résine hydrophobe DAX-8, qui adsorbe la fraction FA également appelée acide fulvique hydrophobe (HFA). La fraction d’acide non fulvique restante, également appelée fraction fulvique hydrophile (HyFF), est ensuite éliminée en lavant la résine avec du H2O désionisé jusqu’à ce que tout le matériau non absorbé soit complètement éliminé. Le FA est ensuite désorbé avec 0,1 N NaOH. Le Na-fulvate résultant est ensuite protoné en le faisant passer sur une résine forte échange H+. L’AF résultant est cuit au four ou lyophilisé, la teneur en cendres déterminée et la concentration dans l’échantillon calculée comme décrit ci-dessus pour l’AH.
Les substances humiques (SH) sont des résidus dynamiques qui résultent de la décomposition microbienne et de la transformation des tissus végétaux morts1,2,3 augmentés de sous-produits microbiens et de biomasse3,4,5 par un processus appelé humification6. Les SH sont présents dans les sols, les eaux naturelles, les sédiments lacustres, les tourbes, les charbons tendres et les schistes humiques et représentent environ 25 % du carbone organique total sur la terre7. Ces substances sont des mélanges complexes de milliers de molécules uniques qui sont fractionnées en trois fractions principales en fonction de leurs différentes solubilités dans des solutions aqueuses fortement basiques et acides. Ces fractions sont des acides humiques (AH), qui comprennent la fraction soluble dans les alcalis mais insoluble dans les acides; acides fulviques (AF), la fraction soluble dans les alcalis et les acides; et la fraction humine, qui est insoluble à toutes les valeurs de pH6,8. La fraction fulvique (FF) est subdivisée en fractions hydrophobes FA (HFA) et hydrophiles (HyFA). Ces fractions sont définies comme la partie du FF qui se lie à une résine hydrophobe DAX-8 (HFA) et la partie qui ne se lie pas à la résine (HyFA).
Les SH sont de plus en plus utilisés dans l’agriculture, où ils sont largement utilisés comme biostimulants des cultures, dans l’élevage, en particulier comme additif pour l’alimentation du bétail, dans l’exploitation minière dans les boues de forage et dans l’assainissement de l’environnement comme navettes d’électrons. La recherche sur l’utilisation du SH dans les applications médicales humaines est également en augmentation.
Il existe de nombreuses méthodes de quantification de l’AH et de l’AF. Cependant, la plupart de ces méthodes ne sont ni exactes ni précises. Par exemple, les deux méthodes les plus largement utilisées pour la détermination de l’AH aux États-Unis sont la méthode colorimétrique9 et la méthode du California Department of Food and Agriculture (CDFA), qui ont toutes deux surestimé la quantité d’AH dans une gamme de minerais et d’extraits de sources de l’ouest des États-Unis et du Canada10. La méthode colorimétrique ou spectrophotométrique est imprécise car elle repose sur l’absorbance d’extraits alcalins qui comprennent, en plus de l’AH, de l’AF et d’autres chromophores qui absorbent tous à la longueur d’onde utilisée et la norme n’est pas représentative des matériaux testés10. La méthode CDFA n’est pas précise parce qu’elle ne fournit pas de concentrations d’AH sans cendres. Étant donné que différents minerais contiennent différentes quantités de cendres, dont une partie est transportée avec l’extraction et que le processus d’extraction lui-même ajoute des cendres, cette méthode ne fournit pas une valeur précise pour les concentrations d’AH10. En réponse au besoin d’une méthode exacte et précise, une procédure gravimétrique normalisée basée sur celle détaillée par11 a été publiée en 2014 pour traiter de la quantification de l’AH et de l’AF sur une base exempte de cendres12. Cette méthode a ensuite été adaptée, avec des modifications mineures, par l’Organisation internationale de normalisation (ISO) en 2018 sous la rubrique Engrais et conditionneurs de sol sous le titre « Détermination des concentrations d’acides fulviques humiques et hydrophobes dans les engrais »13.
Cet article décrit le protocole d’extraction et de quantification des acides fulviques humiques et hydrophobes et donne des détails sur l’exactitude et la précision des données produites à partir de la méthode.
Les premières étapes de l’extraction et de l’isolement de l’AH dans cette méthode sont relativement simples. Parce que l’isolement du HFA implique la chromatographie sur colonne, l’obtention de résultats reproductibles s’accompagne d’un strict respect des détails de chaque étape et pratique. En particulier, une préparation correcte des résines est d’une importance primordiale. Il est extrêmement important que la résine polyméthacrylate de méthyle DAX-8 soit préparée et emballée correctement. L’emballage correct de la résine affecte à la fois le rendement et la qualité du HFA. S’il existe une canalisation, alors ni le prétraitement (c’est-à-dire l’acidification) ni l’adsorption de hFA ne seront complets, et la séparation conduira à des résultats inexacts. Si des canaux ou des espaces dans la résine sont observés avant le chargement de l’échantillon, la colonne doit être retirée et agitée pour redistribuer les billes de résine, en les laissant se déposer sans canaux, puis réemballée en pompant du DI H2O propre à travers la résine. De plus, comme mentionné dans le protocole, le maintien d’un volume de liquide au-dessus de la résine lors du chargement du FF sur la résine permettra au FF de se mélanger avant d’entrer dans la résine et entraînera une adsorption plus efficace. Pour la résine forte échangeuse de cations H+ (Table des matériaux), la régénération complète ne peut pas être précipitée. L’échange Na+/H+ prend du temps et il est donc préférable de le faire dans un traitement en vrac afin que la résine puisse être mélangée tout en étant réacidifiée. Mélanger la résine lors du rinçage avec DI H2O aide à éliminer l’excès de HCl. Lors de la montée de la résine acidifiée pour éliminer l’excès d’acide, le mélange de la résine aide à éliminer le HCl. Il est extrêmement important d’éliminer l’acide au point où une conductivité électrique de ≤ 0,7 μS/cm est atteinte. Si ce n’est pas le cas, le HCl sera transféré avec le HFA.
Enfin, lors de la désorption du HFA de la résine DAX-8, une fois que l’absorbance de l’influent est égale à l’absorbance de l’effluent, il est recommandé de laisser la colonne reposer pendant quelques heures pour voir si un HFA supplémentaire sera libéré. Si c’est le cas, cela sera vu comme un jaunissement du liquide au-dessus de la résine. Si cela se produit, l’HFA supplémentaire peut être éliminé par désorption continue jusqu’à ce que les absorbances d’influent/effluent soient à nouveau égales.
L’un des inconvénients de l’isolation HFA est que l’ensemble du processus prend du temps. La désorption complète du HFA de la résine DAX-8 et l’élimination complète de la résine échangeuse H+ entraînent tous deux un volume important de HFA qui doit être réduit par évaporation rotative. C’est certainement un goulot d’étranglement dans l’analyse. Dans le but de réduire ce temps, il a été suggéré de désorber le HFA de la résine DAX-8 en utilisant de l’acétone plutôt que 0,1 M de NaOH14. Les auteurs ont affirmé qu’en utilisant 50% d’acétone comme désorbant à la place du NaOH, un résultat HFA similaire a été obtenu et le DAX-8 a été correctement régénéré et donc l’étape d’échange H + a pu être éliminée. Cette modification a entraîné une réduction considérable du temps d’analyse en raison de la diminution du volume produit et de l’évaporation rotative plus rapide de l’acétone par rapport à l’eau. Cette modification justifie une étude plus approfondie.
Cette méthode se limite à l’analyse de la matière organique qui a subi le processus d’humification et, pour le cas de la tourbe et des charbons tendres, aux autres processus de tourbation et à la tourtification et à la coalification, respectivement. L’humification est le processus par lequel le matériel mort, principalement végétal, est décomposé par une séquence de microbes qui consomment et modifient des substrats de plus en plus récalcitrants. Les processus abiotiques participent également aux réactions de décomposition et de resynthèse. L’humification aboutit finalement à la production de matériaux relativement récalcitrants comprenant des mélanges hétérogènes de milliers de molécules qui forment une gamme de poids moléculaire et de teneurs en carbone, en oxygène et en hydrogène qui forment HS. Les SH sont encore modifiés par touratification et coalification. Par conséquent, cette méthode n’est pas appropriée pour les matières végétales qui ont été modifiées par des procédés chimiques. Par exemple, le lignosulfonate est largement utilisé comme adultérant HFA. Le lignosulfonate est un sous-produit du processus de mise en pâte du sulfite. Par conséquent, ce matériau n’a pas été produit par le processus d’humification. En outre, de nombreuses substances se lient à la résine DAX-8. Par exemple, la résine DAX-8 a été utilisée pour adsorber les pesticides de la solution15. De toute évidence, les pesticides ne sont pas du SH. Ainsi, la liaison d’un matériau à la résine DAX-8 ne justifie pas l’affirmation selon laquelle il s’agit d’un HFA. Les conditions préalables sont à la fois la production par humification et la liaison à la résine DAX-8.
Au fur et à mesure que l’on en apprend davantage sur la contribution des différents composants du SH dans différentes applications, il peut devenir avantageux de fractionner davantage le SH et de modifier ainsi la méthode en conséquence. Telle qu’elle existe, la méthode ne quantifie pas l’HYFA. Cependant, cette fraction peut également avoir une activité, par exemple dans la biostimulation végétale, où l’ensemble du FF est généralement appliqué dans des traitements agricoles plutôt que dans du HFA purifié.
The authors have nothing to disclose.
Les auteurs tiennent à remercier la Humic Products Trade Association (HPTA) pour son soutien au financement des travaux qui ont abouti à la normalisation des méthodes décrites dans le présent document, ainsi que Lawrence Mayhew et les Drs Dan Olk et Paul Bloom pour le soutien technique pendant les travaux de normalisation.
Amberlite IR 120 H+-exchange resin | Sigma-Aldrich | 10322 | H+ form |
Analytical Balance | Ohaus | PA214 | w/ glass draft shield |
Centrifuge | Beckman Coulter | Allegra X-14 | minimum 4300 rpm |
Centrifuge tubes | Beckman Coulter | To fit rotor selected | |
Ceramic Combustion Crucibles | Sigma | Z247103 | |
Chromatography column for DAX-8 | Diba | Omnifit 006EZ-50-25-FF | |
Chromatography column for IR 120 | Chemglass | CG-1187-21 2 in. by 24 in. | |
Dessicator | Capitol Scientic | Kimax 21200-250 | Vacuum type |
Drying Oven | Fisher Scientific | Isotemp | Precision±3˚C |
Electrical conductivity meter | HM Digital | EC-3 | |
Erlenmeyer Flasks | Amazon | 1L, 2L | |
HCl concentrated | Sigma-Aldrich | 320331 | |
Magnetic Stir Plate | Barnstead-Thermolyne | Dataplate 721 | |
Magnetic Stir bars | These can be obtained at many outlets | ||
Muffle Furnace | Fisher scientific | Thermolyne Type 47900 | |
NaOH | Sigma-Aldrich | 795429 | |
Nitrogen gas | Praxair | UNI1066 | 99.99% purity |
Peristaltic pump | Cole Parmer | Masterflex 7518-00 | |
Perstaltic tubing | Cole Parmer | Masterflex Pharmed 06508-17 | |
pH meter | Oakton Instruments | WD-35618–03 | |
Rotary Evaporator | Buchi | R-210/R-215 | |
Spectrophotometer | Healthcare SCiences | Ultrospec II | Dual beam 200 to 900 nm with wavelength accuracy of ±1 nm and reproducibility of ±0.5 nm. |