В этой публикации описывается протокол изоляции ядер от зрелых адипоцитов, очищение путем флуоресценции активированной сортировки и транскриптомики одноклеточного уровня.
Коричневый и бежевый жир являются специализированными жировыми тканями, которые рассеивают энергию для термогенеза UCP1 (Uncoupling Protein-1) -зависимых и независимых путей. До недавнего времени термогенные адипоциты считались однородной популяцией. Тем не менее, недавние исследования показали, что Существует несколько подтипов или субпопуляций, которые отличаются по происхождению развития, использованию субстрата и транскриптом. Несмотря на достижения в одноклеточной геномике, беспристрастное разложение жировых тканей в клеточные подтипы было сложным из-за хрупкого характера заполненных липидами адипоцитов. Представленный протокол был разработан для обхода этих препятствий путем эффективной изоляции одиночных ядер от жировой ткани для применения ниже по течению, включая секвенирование РНК. Сотовая неоднородность может быть проанализирована с помощью секвенирования РНК и биоинформатического анализа.
Исследования показали, что коричневая жировая ткань (BAT) обладает замечательной способностью рассеивать энергию. Два типа термогенных адипоцитов с различными особенностями развития существуют как у грызунов, так и у человека: бежевые адипоциты и классические коричневые адипоциты. В то время как классические коричневые адипоциты расположены в основном в межкапялярных депо BAT, бежевые адипоциты спорадически возникают в белой жировой ткани (WAT) в ответ на определенные физиологические сигналы, такие как хроническое воздействие холода, процесс, именуемый “коричневый” или “beiging”. Благодаря использованию передовых изображений, теперь ясно, что взрослые люди имеют существенные склады UCP1и BAT, особенно в супраклавикулярной области1,2,3,4. Количество взрослого человека BAT обратно коррелирует с ожирением и может быть увеличена внешними сигналами, такими как хроническое воздействие холода5,,6 или 3-адренергических рецепторов агонист7. Затраты энергии при посредничестве BAT могут предложить жизнеспособный подход к борьбе с ожирением.
До недавнего времени термогенные адипоциты считались однородной популяцией. Тем не менее, исследования показали существование нескольких подтипов или субпопуляций, которые отличаются по развитию происхождения, использования субстрата, и транскриптом8,,9,10. Например, тип бежевого адипоцита, который преимущественно использует глюкозу для термогенеза, g-бежевого адипоцита, был недавно описан10. Неполное понимание типов клеток в коричневой и бежевой жировой ткани и отсутствие конкретных маркеров представляют собой критический барьер для изучения их биологических функций.
Традиционные методы изоляции субпопуляций клеток основаны на экспрессии лишь нескольких известных генов маркеров. Последние достижения в области одноклеточной геномики позволяют использовать глобальные данные экспрессии генов отдельных клеток для объективной оценки количества субпопуляций в ткани. Конечная цель этого протокола заключается в определении всех подтипов жировой ткани под различными термогенными стимулами при одноклеточном разрешении. В отличие от других тканей и типов клеток, определение клеточных подтипов жировой ткани является сложной задачей из-за хрупкости заполненных липидами адипоцитов. В настоящем документе вводится надежный протокол для изоляции одиночных ядер от жировой ткани для применения ниже по течению до секвенирования snRNA. Важно отметить, что недавняя литература сравнения хорошо подобранных однонуклейных РНК секвенирования (snRNA-seq) и одноклеточного секвенирования РНК (scRNA-seq) наборы данных показали, что snRNA-seq сравним с scRNA-seq в обнаружении типа клеток, и превосходит в клеточном покрытии для сложной ткани, как мозг11. Этот протокол сочетает в себе метод центрифугации градиента плотности, оптимизированный для жировых тканей Rosen et al.12 с ядерным шагом «очистки» с высокоскоростным сортировщиком MoFlo XDP. Как видно из репрезентативных результатов, анализ 7500 одиночных ядер из мыши межкаплуановой коричневой жировой ткани определили несколько типов клеток в, казалось бы, однородных коричневых адипоцитов. В целом, этот простой и надежный протокол может быть применен для изучения тканевой организации адипоцитов и жировых клеток-резидентов, идентификации подтип-специфических генов маркеров и фенотипирования жирово-селективных нокаутов/трансгенных мышей.
Представлен простой и надежный метод изоляции одиночных ядер и изучения неоднородности жировой ткани. По сравнению с секвенированием РНК всей ткани, этот рабочий процесс предлагает объективное представление о клеточной неоднородности и маркерах, специфичных для популяций. Это являе?…
The authors have nothing to disclose.
Мы хотели бы поблагодарить Дэвида Рейнольдса из ядра геномики Альберта Эйнштейна и Цзинханга Чжана из ядра потока Cytometry за техническую поддержку. Мы признаем поддержку со стороны Национальных институтов здравоохранения (NIH) (DK110426) и экспериментальных и технико-экономических грантов от Эйнштейна-Гора Синай Диабет исследовательский центр (DK020541), и Нью-йоркский центр исследований ожирения (DK026687) (все к К.С.). Мы также хотели бы поблагодарить Онкологический центр Альберта Эйнштейна (CA013330) за поддержку.
autoMACS Rinsing Solution | Miltenyi Biotec | 130-091-222 | PBS with EDTA; sterile-filtered |
BSA | Sigma | A1595 | |
CaCl2 | Sigma | 21115 | |
Cell filter 100 μm | Corning | 431752 | |
Cell filter 40μm | Corning | 431750 | |
CellTrics (30 μm) | Sysmex | 04-004-2326 | |
Collagenase D | Roche | 11088866001 | |
Countess II FL Automated Cell Counter | Invitrogen | AMQAF1000 | |
DAPI | Sigma | D9542 | |
Dispase II | Roche | 4942078001 | |
HEPES | Sigma | H4034 | |
KCl | Fisher | P217-3 | |
MACS SmartStrainers (30 µm) | Miltenyi Biotec | 130-098-458 | Stackable filters |
MgCl2 | Sigma | M1028 | |
MoFloXDP Cell Sorter | Beckman Coulter | ML99030 | |
NP-40 | Sigma | 74385 | |
Protector RNase Inhibitor | Roche | 3335402001 | |
Sucrose | Fisher | S5-3 |