Um protocolo para estudar eventos orientados pela FcγRIIIa por anticorpos terapêuticos em células assassinas naturais humanas é descrito aqui. Esta plataforma de estimulação artificial permite o interrogatório de funções de efeitos a jusante, como degranulação, produção de quimiocina/citocina, e caminhos de sinalização mediados pelas porções fcγriiia e fc de anticorpos envolvidos na vinculação.
Um mecanismo de ação para a eficácia clínica por anticorpos terapêuticos é a promoção de funções imunológicas, como a secreção de citocinas e citotoxicidade, impulsionada pela FcγRIIIa (CD16) expressa em células assassinas naturais (NK). Essas observações levaram a pesquisas com foco em métodos para aumentar eventos mediados por receptores de Fc, que incluem a remoção de uma moiety fucose encontrada na porção fc do anticorpo. Outros estudos têm elucidado as mudanças mecanicistas na sinalização, processos celulares e características citotóxicas que aumentam a atividade do ADCC com anticorpos afucossilados. Além disso, outros estudos mostraram os benefícios potenciais desses anticorpos em combinação com inibidores de pequenas moléculas. Esses experimentos demonstraram os mecanismos moleculares e celulares subjacentes aos benefícios do uso de anticorpos afucosilados em configurações combinadas. Muitas dessas observações foram baseadas em um ensaio de ativação in vitro artificial no qual a FcγRIIIa em células NK humanas foi ativada por anticorpos terapêuticos. Este ensaio forneceu a flexibilidade para estudar funções celulares NK efeito a jusante, como produção de citocinas e degranulação. Além disso, este ensaio tem sido usado para interrogar vias de sinalização e identificar moléculas que podem ser moduladas ou usadas como biomarcadores. Finalmente, outras moléculas terapêuticas (ou seja, inibidores de pequenas moléculas) foram adicionadas ao sistema para fornecer insights sobre a combinação dessas terapêuticas com anticorpos terapêuticos, o que é essencial no espaço clínico atual. Este manuscrito tem como objetivo fornecer uma base técnica para a realização deste ensaio artificial de ativação celular NK humana. O protocolo demonstra passos-chave para a ativação celular, bem como potenciais aplicações a jusante que vão desde leituras funcionais até observações mais mecanicistas.
Nas últimas décadas, houve um enorme foco no desenvolvimento de terapias de câncer direcionadas usando anticorpos. Anticorpos terapêuticos, como trastuzumabe e rituximabe, operam através de múltiplos mecanismos, incluindo a prevenção da dimerização de moléculas de sinalização e mobilização do sistema imunológico1,2. Este último é realizado através da citotoxicidade celular dependente de anticorpos (ADCC), na qual linfócitos chamados células assassinas naturais (NK) são levados a uma célula alvo pelo anticorpo1,2. Ao colocar as células próximas umas das outras, a célula NK é ativada e pode lise uma célula tumor/alvo através da secreção de moléculas de efeitos3.
No nível molecular, a porção fab do anticorpo liga seu antígeno cognato expresso nas células tumorais, enquanto sua porção fc engaja a FcγRIIIa expressa em células NK para unir as duas células1,2. Após o engajamento das vias FcγRIIIa, as vias de sinalização (ou seja, mapk e pi3K) impulsionam o rearranjo citoesquelético, a produção de citocinas e a citotoxicidade4,5,6,7,8,9. Assim, o ADCC é um evento orientado pela FcγRIIIa mediado por células e anticorpos NK.
Como o ADCC era considerado um mecanismo de ação para esses anticorpos terapêuticos, os pesquisadores procuraram métodos para aumentar o ADCC modificando o anticorpo. Uma modificação foi a remoção de fucose na cadeia de oligossacarídeo anexada ao asparagine 297, o que aumenta a afinidade vinculante da porção fc do anticorpo para o FcγRIIIa10,11,12. Em estudos em animais, camundongos que receberam anticorpos afucossilados apresentaram crescimento tumoral mais lento em comparação com camundongos tratados com sua contraparte fucosylated13. Mais importante, o obinutuzumabe (por exemplo, Gazyva, um anticorpo afucosilado aprovado) mostrou melhor eficácia em relação ao rituximabe (por exemplo, Rituxan, sua contraparte fucosylated) em pacientes diagnosticados com leucemia linfocítica crônica ou linfoma folicular14,15.
Até recentemente, os mecanismos subjacentes ao aumento do ADCC através de anticorpos afucosylated eram desconhecidos. Combinado com o fato de que existem inúmeros programas de pesquisa desenvolvendo anticorpos terapêuticos para utilizar mecanismos orientados pela FcγRIIIa para atingir células cancerígenas, é imperativo desenvolver ensaios in vitro que examinem os aspectos moleculares e celulares promovidos por esses anticorpos. Isso proporciona uma compreensão fundamental dos mecanismos de ação, bem como do potencial de descoberta de biomarcadores. Como tal, um ensaio de ativação artificial foi desenvolvido para estudar funções mediadas por FcγRIIIa dependentes de anticorpos, além de sinalização e características celulares8. Através desses estudos, os mecanismos subjacentes ao aumento da eficácia dos anticorpos afucossilados têm sido elucidados nos quais a maior afinidade de ligação aumenta a sinalização para promover propriedades celulares e características citotóxicas8.
A tendência atual nos ensaios clínicos é o uso de uma combinação de moléculas terapêuticas16. Uma das vias mais comumente mutadas é a via PI3K, que tem provocado um tremendo esforço no desenvolvimento de pequenos inibidores de moléculas que visam componentes dessa via17,18,19,20. No entanto, como essas moléculas agem em combinação com anticorpos terapêuticos é relativamente desconhecida, especialmente em combinações onde o inibidor pode afetar moléculas que requerem a via PI3K para funcionar, como as impulsionadas por anticorpos terapêuticos.
Para isso, o ensaio in vitro empregado para os estudos de anticorpos afucosilados também tem sido usado para estudar a combinação de inibidores de PI3K e anticorpos terapêuticos. Estes estudos definiram as características moleculares da inibição de PI3K em eventos movidos a anticorpos terapêuticos baseados em PI3K e descreveram como anticorpos afucosilados podem compensar essa perda de sinalização9. Esses achados são relevantes, pois dão orientação potencial para a concepção de ensaios clínicos. Além disso, esta série de experimentos também levou às primeiras observações descritas para regulação cinética do caminho de sinalização PI3K para modular a transcrição e produção de quimiocina/citocina, que podem servir como potenciais biomarcadores9.
O ensaio de ativação in vitro artificial usado para definir a sinalização e as características celulares descritas acima foi projetado para estudar eventos orientados pela FcγRIIIa em células NK mediadas por anticorpos na ausência de células-alvo. Sem células-alvo no sistema, todos os eventos de sinalização e funções observadas podem ser atribuídos diretamente às células NK. No ensaio apresentado, o anticorpo é adicionado às células NK purificadas, momento em que a porção fc liga a FcriIIa. Isso é seguido pelo crosslinking do anticorpo usando um anticorpo anti-humano da cadeia de luz κ para estimular artificialmente as células. Crosslinking do anticorpo imita a ligação do antígeno alvo para gerar uma plataforma de sinalização que provoca eventos a jusante. Dependendo do comprimento da estimulação, os pesquisadores podem avaliar sinalização, processos celulares, características citotóxicas e funções deefeitos 8,9. Da mesma forma, este ensaio também proporciona flexibilidade no estudo desses eventos quando os anticorpos são combinados com outras moléculas9.
Juntos, este é um ensaio in vitro ideal para estudar anticorpos terapêuticos que provocam respostas celulares NK através de sua FcγRIIIa como parte do mecanismo de ação. Este protocolo descreve o desempenho deste ensaio de ativação in vitro e fornece insights sobre as várias leituras que podem ser realizadas.
Este protocolo descreve métodos para estudar eventos orientados pela FcγRIIIa em células NK mediadas por anticorpos. Essas técnicas permitem a avaliação de potenciais mecanismos de ação de anticorpos terapêuticos, que se sugere ser ADCC1,2. Especificamente, esses métodos fornecem flexibilidade no estudo de vias de sinalização molecular subjacentes e processos celulares responsáveis pelo ADCC. Eles também permitem a observação de outras funções de efeitos, como a produção de quimiocina e citocina. Além disso, esses métodos permitem a identificação de potenciais biomarcadores e moléculas que podem ser visadas para modular o ADCC.
A base para este protocolo é a estimulação artificial das células NK através da FcγRIIIa com anticorpos na ausência de células-alvo. As células-alvo ligadas a anticorpos normalmente servem para promover o crosslinking de receptores Fc para formar uma plataforma que conduz a sinalização e efeitos a jusante. Em vez disso, a crosslinking é realizada usando um anticorpo de cadeia de luz anti-humana neste ensaio, ignorando a necessidade de células-alvo para estimular as células NK. Sem células-alvo, os resultados e observações podem ser atribuídos diretamente às células NK, assumindo que o processo de purificação seja bem sucedido.
É importante ressaltar que o uso de anticorpo anti-humano da cadeia de luz para cruzar o anticorpo não interfere na afinidade vinculante da porção Fc para a FcγRIIIa, uma interação que dita a força da resposta10,11,12,13. De fato, estudos têm demonstrado que os anticorpos afucosilados aumentam o ADCC devido à sua maior afinidade com a FcγRIIIa10,11,12,13. Estudos subsequentes mostraram que esse aumento da afinidade não é afetado pelo substituto de anticorpos secundários da cadeia de luz anti-humana e pode ser usado para estudar a base para o aumento do ADCC8. Para garantir que a célula NK seja estimulada através da ligação cruzada do anticorpo, dois controles negativos devem ser incluídos: 1) anticorpo terapêutico apenas sem o anticorpo secundário da cadeia de luz anti-humana, e 2) apenas o anticorpo de cadeia de luz anti-humana secundário. Em ambos os casos, nenhuma sinalização ou função de efeitos deve ser gerada.
Este método também fornece flexibilidade para estudar os efeitos de anticorpos terapêuticos em inibidores de moléculas pequenas. O inibidor pode ser adicionado antes de cruzar com o anticorpo secundário para que o inibidor tenha tempo para engajar seu alvo. No entanto, estudos devem ser realizados para determinar o tempo ideal de pré-tratamento inibidor; assim, o inibidor tem um efeito máximo na estimulação. Dito isso, os pesquisadores também podem optar por estudar os efeitos de um inibidor após a estimulação. Neste caso, o inibidor pode ser adicionado após o crosslinking para estudar como ele influencia sinais e processos que já são gerados. Em conjunto, o método descrito aqui proporciona flexibilidade máxima no estudo de efeitos combinatórios de diferentes inibidores de moléculas pequenas com anticorpos terapêuticos.
Como mencionado acima, uma variedade de leituras podem ser realizadas após a estimulação. A mancha ocidental pode ser realizada para estudar a sinalização usando sistemas de transferência de SDS-PAGE e membrana de vários fornecedores. Da mesma forma, a expressão genética também pode ser avaliada usando vários métodos de extração de RNA, reagentes de transcrição reversa e instrumentos de expressão genética. Por fim, também pode ser realizada a coloração para proteína intracelular ou extracelular, na qual as amostras podem ser analisadas utilizando diferentes címetros de fluxo. Para a coloração de citocina intracelular e CD107a (etapa 3.4, que pode ser avaliada simultaneamente), monensina e/ou brefeldin A devem ser adicionadas para maximizar os sinais. Usamos plataformas diferentes para cada objetivo experimental e ainda observamos resultados semelhantes. Portanto, o método pode ser complementado com vários reagentes, plataformas e instrumentos, dependendo do estudo.
O tempo de cruzamento para estimulação dependerá do objetivo do estudo. Se os estudos de sinalização forem desejados, o tempo típico de estimulação transversal é entre 2 min e 10 min. pAKT, pPRAS40 e picos de acumulação pERK1/2 em 2 min e desaparece após 10 min8,9. Para estudos funcionais (ou seja, aqueles que envolvem a produção de quimiocina/citocina), as células devem ser estimuladas por pelo menos 30 min, dependendo do analito9. A análise da expressão genética também normalmente requer 30 minutos de estimulação9. Deve-se ter cuidado ao usar a expressão genética RANTES como leitura, pois a produção de mRNA RANTES é independente da ativação transcricional, uma vez que já está armazenada em células para tradução imediata e liberação de proteínas após a estimulação25. A desgranulação, em contraste, requer pelo menos 3h de estimulação. Apesar dessas observações gerais, os pesquisadores devem realizar estudos cinéticos para determinar o tempo ideal de estimulação para as moléculas particulares de interesse.
Da mesma forma, os pesquisadores devem titular o anticorpo de interesse para determinar a concentração ideal, pois anticorpos com especificidades diferentes se ligam à FcγRIIIa com afinidades diferentes, mesmo que sejam do mesmo isótipo. Por exemplo, rituximabe e trastuzumab são ambos um isótipo IgG1, mas trastuzumab se liga mais fortemente ao polimorfismo valina de FcγRIIIa do que rituximabe26,27. Essa diferença de afinidade pode levar a diferenças funcionais, como a desgranulação, como observado nos estudos publicados8.
Determinar a concentração ideal também é importante devido à baixa afinidade que a porção fc do anticorpo tem para o FcγRIIIa. Isso pode resultar na lavagem do anticorpo, uma vez que o protocolo inclui etapas de lavagem após a ligação do anticorpo ao receptor Fc. Isso pode, então, levar à falta de sensibilidade nos ensaios sugeridos pelo baixo percentual de células positivas cd107a após a estimulação(Figura 5). No entanto, a determinação da concentração ideal deve fornecer confiança de que os resultados não se devem à falta de sensibilidade. Além disso, as células são claramente ativadas nos ensaios bioquímicos e funcionais que usam células a granel em oposição a leituras de células únicas(Figura 2, Figura 3, Figura 6).
O protocolo também é limitado, pois não imita inteiramente o que ocorre fisiologicamente. O anticorpo K anti-humano secundário usado é imitar o crosslinking gerado pelo antígeno alvo expresso nas células. Aqui, uma quantidade saturada de anticorpos secundários é adicionada para gerar a resposta máxima. No entanto, células-alvo distintas expressarão diferentes níveis de antígeno, o que afetará o crosslinking e a resposta. Atualmente, esta plataforma não é otimizada para imitar os efeitos de diferentes níveis de expressão de antígeno.
Outro fator a considerar na realização desses experimentos é a variabilidade de doador para doador devido a diferentes origens genéticas e histórias imunológicas entre os indivíduos. Portanto, deve-se tomar cuidado ao comparar as respostas das células NK de diferentes doadores nos mesmos ensaios. Da mesma forma, apenas conclusões gerais devem ser feitas quando diferentes doadores são usados.
Ao todo, o método descrito é uma plataforma de estimulação simples e flexível para estudar eventos mediados por anticorpos com base em FcγRIIIa em células NK. Tem sido usado para entender melhor a base para o aumento do ADCC e a eficácia observada com anticorpos afucosilados8. Este método também foi empregado em um estudo que combina anticorpos terapêuticos e inibidores de pequenas moléculas PI3K9. Além disso, foi identificado um mecanismo até então desconhecido para a produção de quimiocina e citocina regulada pelo pS6. Portanto, estudos futuros utilizando esta plataforma de sinalização artificial podem elucidar ainda mais mecanismos de regulação para funções efetivas impulsionadas pela FcγRIIIa. Também pode identificar potencialmente novas moléculas importantes para esses mecanismos, bem como novos papéis para moléculas conhecidas.
The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecem a James Lee e Christopher Ng pelos comentários e edição deste manuscrito.
16% paraformaldehyde | Thermo Fisher Scientific | 50-980-487 | |
Alexa Fluor 488 phalloidin | Thermo Fisher Scientific | A12379 | |
anti-mouse HRP antibody | Cell Signaling Technologies | 7076 | |
AutoMACS instrument | Miltenyi | NK cell isolation method; another isolation instrument may be used | |
B-mercaptoethanol | Thermo Fisher Scientific | 21985023 | |
Bovine Serum Albumin Fraction V, fatty acid free | Millipore Sigma | 10775835001 | |
CD107a APC antibody | Biolegend | 328620 | |
Cytokine 30-Plex Human Panel | Thermo Fisher Scientific | LHC6003M | chemokine/cytokine method; another chemokine/cytokine analysis method may be used |
FBS | Hyclone | SH30071.01 | |
Goat anti-human κ light chain antibody | Millipore Sigma | AP502 | |
Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail | Thermo Fisher Scientific | 78440 | |
HEPES | Thermo Fisher Scientific | 15630080 | |
High Capacity cDNA Reverse Transcription Kit | Thermo Fisher Scientific | 4368814 | cDNA transcription method; used according to manufacturer's protocol |
IFN-ɣ primers | Thermo Fisher Scientific | Hs00989291_m1 | |
Leukosep tube (50 ml conical with porous barrier) | Greiner | 227290 | |
Lymphoprep (density gradient medium) | Stemcell | 7851 | |
MIP-1⍺ primers | Thermo Fisher Scientific | Hs00234142_m1 | |
MIP-1β primers | Thermo Fisher Scientific | Hs99999148_m1 | |
NK cell isolation kit | Miltenyi | 130-092-657 | NK cell isolation kit; another isolation kit may be used |
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Protein Gels | Thermo Fisher Scientific | another protein separation system may be used | |
pAKT (S473) antibody | Cell Signaling Technologies | 4060 | |
pERK1/2 antibody | Cell Signaling Technologies | 4370 | |
pPRAS40 antibody | Cell Signaling Technologies | 13175 | |
PVDF membrane | Thermo Fisher Scientific | nitrocellulose may be used | |
RANTES primers | Thermo Fisher Scientific | Hs00982282_m1 | |
RIPA buffer | Millipore Sigma | R0278 | |
RPMI w/glutamax | Thermo Fisher Scientific | 61870 | |
Sodium pyruvate | Thermo Fisher Scientific | 11360070 | |
TNF-⍺ primers | Thermo Fisher Scientific | Hs00174128_m1 | |
Triton X-100 | Thermo Fisher Scientific | 85111 | |
TRIzol | Thermo Fisher Scientific | 15596018 | RNA isolation method; used according to manufacturer's protocol |
Xcell Blot II Transfer Module | Thermo Fisher Scientific | another protein separation system may be used | |
Xcell SureLock Protein Gel Electrophoresis Chamber System | Thermo Fisher Scientific | another protein separation system may be used | |
β-actin HRP antibody | Abcam | ab6721 | |
β-actin primers | Thermo Fisher Scientific | Hs00982282_m1 |