Summary

Зондирование поверхностной электрохимической активности наноматериалов с помощью гибридного атомно-силового микроскопа-сканирующего электрохимического микроскопа (AFM-SECM)

Published: February 10, 2021
doi:

Summary

Атомно-силовая микроскопия (АСМ) в сочетании со сканирующей электрохимической микроскопией (ТСЭМ), а именно АСМ-ТСЭМ, может использоваться для одновременного получения топографической и электрохимической информации высокого разрешения на поверхностях материалов на наноуровне. Такая информация имеет решающее значение для понимания гетерогенных свойств (например, реакционной способности, дефектов и мест реакций) на локальных поверхностях наноматериалов, электродов и биоматериалов.

Abstract

Сканирующая электрохимическая микроскопия (SECM) используется для измерения локального электрохимического поведения интерфейсов жидкость/твердое вещество, жидкость/газ и жидкость/жидкость. Атомно-силовая микроскопия (АСМ) является универсальным инструментом для характеристики микро- и наноструктуры с точки зрения топографии и механических свойств. Однако обычные SECM или AFM предоставляют ограниченную информацию с боковым разрешением об электрических или электрохимических свойствах на наноуровне. Например, активность поверхности наноматериала на уровнях кристаллической грани трудно определить обычными электрохимическими методами. В настоящем документе сообщается о применении комбинации AFM и SECM, а именно AFM-SECM, для исследования наноразмерной поверхностной электрохимической активности при получении топографических данных высокого разрешения. Такие измерения имеют решающее значение для понимания взаимосвязи между наноструктурой и реакционной активностью, которая имеет отношение к широкому спектру применений в материаловедении, науке о жизни и химических процессах. Универсальность комбинированного AFM-SECM демонстрируется картографированием топографических и электрохимических свойств граненых наночастиц (НП) и нанопузырьков (НБ) соответственно. По сравнению с ранее сообщенной ВИЗУАЛИЗАЦИЕЙ наноструктур SECM, этот AFM-SECM позволяет количественно оценить локальную поверхностную активность или реакционную способность с более высоким разрешением картирования поверхности.

Introduction

Характеристика электрохимического (ЕС) поведения может обеспечить критическое понимание кинетики и механизмов межфазных реакций в различных областях, таких как биология1,2,энергия3,4,синтез материала5,6,7и химический процесс8,9. Традиционные измерения ЕС, включая электрохимическую импидансную спектроскопию10,методы электрохимического шума11,гальваностатические прерывистое титрование12и циклическую вольтамметрию13, обычно выполняются в макроскопическом масштабе и обеспечивают среднеповазную реакцию. Таким образом, трудно извлечь информацию о том, как электрохимическая активность распределяется по поверхности, но свойства поверхности в локальном масштабе в наномасштабе особенно важны там, где широко используются наноматериалы. Поэтому новые методы, способные одновременно захватывать как наноразмерную многомерную информацию, так и электрохимию, очень желательны.

Сканирующая электрохимическая микроскопия (SECM) является широко используемым методом измерения локализованной электрохимической активности материалов на микро- и наноуровне14. Как правило, SECM использует ультра-микроэлектрод в качестве зонда для обнаружения электроактивных химических веществ, поскольку он сканирует поверхность образца для пространственного разрешения локальных электрохимических свойств15. Измеряемый ток на зонде производится путем восстановления (или окисления) породы медиатора, и этот ток является индикатором электрохимической реакционной способности на поверхности образца. SECM значительно эволюционировал после своего первого создания в 1989году 16,17, но он по-прежнему оспаривается двумя основными ограничениями. Поскольку сигналы EC обычно чувствительны к характеристикам взаимодействия наконечник-подложка, одним из ограничений SECM является то, что поддержание зонда на постоянной высоте предотвращает прямую корреляцию электрохимической активности с ландшафтом поверхности из-за свертки топографии с собранной информацией EC18. Во-вторых, коммерческой системе SECM трудно получить разрешение изображения субмикрометра (мкм), поскольку пространственное разрешение частично определяется размерами зонда, которые составляют микрометровую шкалу19. Поэтому наноэлектроды, электроды с диаметром в нанометровом диапазоне, все чаще используются в SECM для достижения разрешения ниже субмикрометровой шкалы20,21,22,23.

Для обеспечения постоянного контроля расстояния между наконечником и подложкой и получения более высокого пространственного электрохимического разрешения было использовано несколько гибридных методов SECM, таких как позиционирование ионной проводимости24,позиционирование силы сдвига25,переменный ток SECM26и позиционирование атомно-силовой микроскопии (AFM). Среди этих инструментов SECM, интегрируя позиционирование AFM (AFM-SECM), стал очень перспективным подходом. Поскольку AFM может обеспечить фиксированные расстояния между наконечником и подложкой, интегрированный метод AFM-SECM позволяет одновременно получать наноразмерную структурную и электрохимическую информацию о поверхности путем картирования или подметания образцов с помощью острых наконечников AFM. С момента первой успешной эксплуатации AFM-SECM Макферсоном и Анвином в 1996году 27,были достигнуты значительные улучшения в конструкции и изготовлении зонда, а также его применении в различных областях исследований, таких как электрохимия в химических и биологических процессах. Например, AFM-SECM был реализован для визуализации поверхностей композитных материалов, таких как наночастицы благородных металлов28,функционализированные или размерно стабильные электроды29,30и электронные устройства31. AFM-SECM может отображать электрохимически активные участки по изображению тока наконечника.

Одновременные топографические и электрохимические измерения также могут быть достигнуты другими методами, такими какпроводящая AFM32,33, 34,35,электрохимическая AFM (EC-AFM)36,37, 38,39,сканирующая иопроводящая микроскопия, сканирующая электрохимическая микроскопия (SICM-SECM)24,40и сканирующая электрохимическая клеточная микроскопия (SECCM)41,42 Сравнение этих методов обсуждалось в обзорной работе1. Цель настоящей работы состояла в том, чтобы использовать SECM-AFM для демонстрации электрохимического картирования и измерения на граненых кристаллических наноматериалах оксида меди и нанопузырьках в воде. Граненые наноматериалы широко синтезируются для катализаторов оксида металла в приложениях чистой энергии, поскольку грани с отличительными кристаллографическими особенностями имеют отличительные поверхностные атомные структуры и далее доминируют в своих каталитических свойствах. Кроме того, мы также измерили и сравнили электрохимическое поведение на границе раздела жидкость/газ для поверхностных нанопузырьков (НБ) на золотых подложках. НБ представляют собой пузырьки диаметром <1 мкм (также известные как ультратонкие пузырьки)43,и они вызывают множество интригующих свойств44,45,включая длительное время пребывания в растворах46,47 и высокую эффективность массообмофера газа46,48. Кроме того, коллапс НБ создает ударные волны и образование гидроксильных радикалов (•OH)49,50,51,52. Мы измерили электрохимическую реакционную способность кислородных НБ в растворе, чтобы лучше понять фундаментальные химические свойства НБ.

Protocol

1. Пробоподготовка Получение граненых наночастиц Cu2O и осаждение на кремниевую подложку Растворить 0,175 г CuCl2∙2H2O (99,9%) в 100 мл деионизированной (DI) воды для получения водного раствора 10 мМ CuCl2. Добавьте 10,0 мл 2,0 М NaOH и 10 мл 0,6 М аскорбиновой кис?…

Representative Results

Топография и текущая визуализация ONB с помощью AFM-SECM Предыдущие исследования, которые характеризовали НБ с ПОМОЩЬЮ AFM, сообщали только о топографических изображениях, чтобы выявить размер и распределение НБ, обездвиженных на твердой подложке56,</sup…

Discussion

В этом протоколе описан комбинированный метод AFM-SECM, который обеспечивает мультимодальную визуализацию с высоким разрешением. Этот метод позволяет сопоставить топографию одновременно с током SECM, собранным или нанесенным на карту на отдельных наночастицах или нанопузырьке. Экспериме?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа финансируется Национальным научным фондом (номер награды: 1756444) через биологические и экологические интерфейсы наноматериалов, Национальный институт продовольствия и сельского хозяйства Министерства сельского хозяйства США, проект AFRI [2018-07549] и Соглашение о помощи No 83945101-0, присужденное Агентством по охране окружающей среды США Технологическому институту Нью-Джерси. Он не был официально рассмотрен АООС. Мнения, выраженные в настоящем документе, являются исключительно мнениями авторов и не обязательно отражают мнения Агентства. EPA не поддерживает какие-либо продукты или коммерческие услуги, упомянутые в этой публикации. Авторы также благодарят Программу исследований и инноваций бакалавриата (URI) Фаза-1 и Фаза-2 в Технологическом институте Нью-Джерси.

Materials

Equipment
Atomic force microsopy Bruker, CA Dimenison Icon
Bipotentiostat CH Instruments, Inc. CHI 700E
Materials
Silicon wafer TED PELLA, Inc. 16013
Fresh gold plates Bruker, CA model 119-017-307
PF-SECM-AFM probes Bruker, CA 990-050138
PF-SECM strain-release module Bruker, CA 840-012-724
PF-SECM Probe Holder Bruker, CA 900-050121
PF-SECM Chuck Bruker, CA PF-SECM Chuck
PF-SECM O-ring Bruker, CA 598-000-106
PF-SECM cover glass, SECM Cell Bruker, CA 900-050137
EC Cell Assy Bruker, CA 932-017-300
ESD Field Service Bruker, CA 490-000-066
PF-SECM Boot Bruker, CA 900-050136
Spring connector block Bruker, CA 900-050524
PFSECM Tweezers Bruker, CA
Cable, SECM Tip module Bruker, CA 468-050171
Ag wire Bruker, CA 249-000-056
Pt wire Bruker, CA 248-000-004
Hard sharp wire Bruker, CA TT-ECM10
Tubular ceramic membrane Refracton WFA0.1
Chemicals
Copper(II) chloride dihydrate ACROS Organics AC315281000
Sodium Hydroxide Fisher Chemical S318-100
Ascorbic Acid Fisher Chemical A61-25
Epoxy Loctite Instant Mix
Potassium Chloride Fisher Chemical P217-500
Hexaammineruthenium(III) chloride ACROS Organics AC363342500

References

  1. Shi, X., Qing, W., Marhaba, T., Zhang, W. Atomic Force Microscopy-Scanning Electrochemical Microscopy (AFM-SECM) for Nanoscale Topographical and Electrochemical Characterization: Principles, Applications and Perspectives. Electrochimica Acta. , 135472 (2019).
  2. Aazam, E. S., Ghoneim, M. M., El-Attar, M. A. Synthesis, characterization, electrochemical behavior, and biological activity of bisazomethine dye derived from 2, 3-diaminomaleonitrile and 2-hydroxy-1-naphthaldehyde and its zinc complex. Journal of Coordination Chemistry. 64 (14), 2506-2520 (2011).
  3. Shukla, A., Sampath, S., Vijayamohanan, K. Electrochemical supercapacitors: Energy storage beyond batteries. Current science. 79 (12), 1656-1661 (2000).
  4. Kötz, R., Carlen, M. Principles and applications of electrochemical capacitors. Electrochimica Acta. 45 (15-16), 2483-2498 (2000).
  5. Botte, G. G. Electrochemical manufacturing in the chemical industry. The Electrochemical Society Interface. 23 (3), 49-55 (2014).
  6. Kongsricharoern, N., Polprasert, C. Electrochemical precipitation of chromium (Cr6+) from an electroplating wastewater. Water Science and Technology. 31 (9), 109-117 (1995).
  7. Datta, M., Landolt, D. Fundamental aspects and applications of electrochemical microfabrication. Electrochimica Acta. 45 (15-16), 2535-2558 (2000).
  8. Wang, S., George, K., Nesic, S. High pressure CO2 corrosion electrochemistry and the effect of acetic acid. Corrosion/2004. 4375, (2004).
  9. Song, G. L. . Corrosion of Magnesium alloys. , 3-65 (2011).
  10. Bellezze, T., Giuliani, G., Viceré, A., Roventi, G. Study of stainless steels corrosion in a strong acid mixture. Part 2: anodic selective dissolution, weight loss and electrochemical impedance spectroscopy tests. Corrosion Science. 130, 12-21 (2018).
  11. Ehsani, A., et al. Evaluation of Thymus vulgaris plant extract as an eco-friendly corrosion inhibitor for stainless steel 304 in acidic solution by means of electrochemical impedance spectroscopy, electrochemical noise analysis and density functional theory. Journal of Colloid and Interface Science. 490, 444-451 (2017).
  12. Cui, Z. H., Guo, X. X., Li, H. Equilibrium voltage and overpotential variation of nonaqueous Li-O2 batteries using the galvanostatic intermittent titration technique. Energy & Environmental Science. 8 (1), 182-187 (2015).
  13. Elgrishi, N., et al. A Practical Beginner’s Guide to Cyclic Voltammetry. Journal of Chemical Education. 95 (2), 197-206 (2018).
  14. Amemiya, S., Bard, A. J., Fan, F. R. F., Mirkin, M. V., Unwin, P. R. Scanning Electrochemical Microscopy. Annual Review of Analytical Chemistry. 1 (1), 95-131 (2008).
  15. Mirkin, M. V., Nogala, W., Velmurugan, J., Wang, Y. Scanning electrochemical microscopy in the 21st century. Update 1: five years after. Physical Chemistry Chemical Physics. 13 (48), 21196-21212 (2011).
  16. Bard, A. J., Fan, F. R. F., Kwak, J., Lev, O. Scanning electrochemical microscopy. Introduction and principles. Analytical Chemistry. 61 (2), 132-138 (1989).
  17. Engstrom, R. C., Pharr, C. M. Scanning electrochemical microscopy. Analytical Chemistry. 61 (19), 1099-1104 (1989).
  18. Nellist, M. R., et al. Atomic force microscopy with nanoelectrode tips for high resolution electrochemical, nanoadhesion and nanoelectrical imaging. Nanotechnology. 28 (9), 095711 (2017).
  19. Patel, A. N., Kranz, C. (Multi) functional atomic force microscopy imaging. Annual Review of Analytical Chemistry. 11, 329-350 (2018).
  20. Ufheil, J., Heß, C., Borgwarth, K., Heinze, J. Nanostructuring and nanoanalysis by scanning electrochemical microscopy (SECM). Physical Chemistry Chemical Physics. 7 (17), 3185-3190 (2005).
  21. Bergner, S., Wegener, J., Matysik, F. M. Simultaneous imaging and chemical attack of a single living cell within a confluent cell monolayer by means of scanning electrochemical microscopy. Analytical Chemistry. 83 (1), 169-174 (2011).
  22. Hu, K., et al. Platinized carbon nanoelectrodes as potentiometric and amperometric SECM probes. Journal of Solid State Electrochemistry. 17 (12), 2971-2977 (2013).
  23. Kranz, C. Recent advancements in nanoelectrodes and nanopipettes used in combined scanning electrochemical microscopy techniques. Analyst. 139 (2), 336-352 (2014).
  24. Morris, C. A., Chen, C. C., Baker, L. A. Transport of redox probes through single pores measured by scanning electrochemical-scanning ion conductance microscopy (SECM-SICM). Analyst. 137 (13), 2933-2938 (2012).
  25. Ludwig, M., Kranz, C., Schuhmann, W., Gaub, H. E. Topography feedback mechanism for the scanning electrochemical microscope based on hydrodynamic forces between tip and sample. Review of Scientific Instruments. 66 (4), 2857-2860 (1995).
  26. Eckhard, K., Schuhmann, W. Alternating current techniques in scanning electrochemical microscopy (AC-SECM). Analyst. 133 (11), 1486-1497 (2008).
  27. Macpherson, J. V., Unwin, P. R., Hillier, A. C., Bard, A. J. In-situ imaging of ionic crystal dissolution using an integrated electrochemical/AFM probe. Journal of the American Chemical Society. 118 (27), 6445-6452 (1996).
  28. Huang, K., Anne, A., Bahri, M. A., Demaille, C. Probing Individual Redox PEGylated Gold Nanoparticles by Electrochemical-Atomic Force Microscopy. ACS Nano. 7 (5), 4151-4163 (2013).
  29. Chennit, K., et al. Electrochemical Imaging of Dense Molecular Nanoarrays. Analytical Chemistry. 89 (20), 11061-11069 (2017).
  30. Jiang, J., et al. Nanoelectrical and Nanoelectrochemical Imaging of Pt/p-Si and Pt/p+-Si Electrodes. ChemSusChem. 10 (22), 4657-4663 (2017).
  31. Knittel, P., Mizaikoff, B., Kranz, C. Simultaneous nanomechanical and electrochemical mapping: combining peak force tapping atomic force microscopy with scanning electrochemical microscopy. Analytical Chemistry. 88 (12), 6174-6178 (2016).
  32. Quist, A. P., et al. Atomic force microscopy imaging and electrical recording of lipid bilayers supported over microfabricated silicon chip nanopores: Lab-on-a-chip system for lipid membranes and ion channels. Langmuir. 23 (3), 1375-1380 (2007).
  33. Cohen, H., et al. Electrical characterization of self-assembled single- and double-stranded DNA monolayers using conductive AFM. Faraday Discussions. 131, 367-376 (2006).
  34. Chung, J. W., et al. Single-crystalline organic nanowires with large mobility and strong fluorescence emission: a conductive-AFM and space-charge-limited-current study. Journal of Materials Chemistry. 19 (33), 5920-5925 (2009).
  35. Guo, D. Z., Hou, S. M., Zhang, G. M., Xue, Z. Q. Conductance fluctuation and degeneracy in nanocontact between a conductive AFM tip and a granular surface under small-load conditions. Applied Surface Science. 252 (14), 5149-5157 (2006).
  36. Rocca, E., Bertrand, G., Rapin, C., Labrune, J. C. Inhibition of copper aqueous corrosion by non-toxic linear sodium heptanoate: mechanism and ECAFM study. Journal of Electroanalytical Chemistry. 503 (1), 133-140 (2001).
  37. Toma, F. M., et al. Mechanistic insights into chemical and photochemical transformations of bismuth vanadate photoanodes. Nature Communications. 7, 12012 (2016).
  38. Kouzeki, T., Tatezono, S., Yanagi, H. Electrochromism of Orientation-Controlled Naphthalocyanine Thin Films. The Journal of Physical Chemistry. 100 (51), 20097-20102 (1996).
  39. Yamaguchi, Y., Shiota, M., Nakayama, Y., Hirai, N., Hara, S. Combined in situ EC-AFM and CV measurement study on lead electrode for lead-acid batteries. Journal of Power Sources. 93 (1), 104-111 (2001).
  40. Comstock, D. J., Elam, J. W., Pellin, M. J., Hersam, M. C. Integrated Ultramicroelectrode-Nanopipet Probe for Concurrent Scanning Electrochemical Microscopy and Scanning Ion Conductance Microscopy. Analytical Chemistry. 82 (4), 1270-1276 (2010).
  41. Ebejer, N., Schnippering, M., Colburn, A. W., Edwards, M. A., Unwin, P. R. Localized High Resolution Electrochemistry and Multifunctional Imaging: Scanning Electrochemical Cell Microscopy. Analytical Chemistry. 82 (22), 9141-9145 (2010).
  42. Ebejer, N., et al. Scanning Electrochemical Cell Microscopy: A Versatile Technique for Nanoscale Electrochemistry and Functional Imaging. Annual Review of Analytical Chemistry. 6 (1), 329-351 (2013).
  43. Alheshibri, M., Qian, J., Jehannin, M., Craig, V. S. A history of nanobubbles. Langmuir. 32 (43), 11086-11100 (2016).
  44. Liu, G., Wu, Z., Craig, V. S. Cleaning of protein-coated surfaces using nanobubbles: an investigation using a quartz crystal microbalance. The Journal of Physical Chemistry C. 112 (43), 16748-16753 (2008).
  45. Ghadimkhani, A., Zhang, W., Marhaba, T. Ceramic membrane defouling (cleaning) by air Nano Bubbles. Chemosphere. 146, 379-384 (2016).
  46. Uchida, T., et al. Transmission electron microscopic observations of nanobubbles and their capture of impurities in wastewater. Nanoscale Research Letters. 6 (1), 1 (2011).
  47. Ushikubo, F. Y., et al. Evidence of the existence and the stability of nano-bubbles in water. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. 361 (1-3), 31-37 (2010).
  48. Bowley, W. W., Hammond, G. L. Controlling factors for oxygen transfer through bubbles. Industrial, Engineering Chemistry Process Design and Development. 17 (1), 2-8 (1978).
  49. Li, P., Takahashi, M., Chiba, K. Enhanced free-radical generation by shrinking microbubbles using a copper catalyst. Chemosphere. 77 (8), 1157-1160 (2009).
  50. Takahashi, M., et al. Effect of shrinking microbubble on gas hydrate formation. The Journal of Physical Chemistry B. 107 (10), 2171-2173 (2003).
  51. Takahashi, M., Chiba, K., Li, P. Free-radical generation from collapsing microbubbles in the absence of a dynamic stimulus. The Journal of Physical Chemistry B. 111 (6), 1343-1347 (2007).
  52. Ahmed, A. K. A., et al. Influences of air, oxygen, nitrogen, and carbon dioxide nanobubbles on seed germination and plant growth. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 66 (20), 5117-5124 (2018).
  53. Zhang, D. F., et al. Delicate control of crystallographic facet-oriented Cu 2 O nanocrystals and the correlated adsorption ability. Journal of Materials Chemistry. 19 (29), 5220-5225 (2009).
  54. Khaled Abdella Ahmed, A., et al. Colloidal Properties of Air, Oxygen, and Nitrogen Nanobubbles in Water: Effects of Ionic Strength, Natural Organic Matters, and Surfactants. Environmental Engineering Science. , (2017).
  55. Huang, Z., et al. PeakForce scanning electrochemical microscopy with nanoelectrode probes. Microscopy Today. 24 (6), 18-25 (2016).
  56. Lou, S. T., et al. Nanobubbles on solid surface imaged by atomic force microscopy. Journal of Vacuum Science, Technology B: Microelectronics and Nanometer Structures Processing, Measurement, and Phenomena. 18 (5), 2573-2575 (2000).
  57. Borkent, B. M., Dammer, S. M., Schönherr, H., Vancso, G. J., Lohse, D. Superstability of surface nanobubbles. Physical Review Letters. 98 (20), 204502 (2007).
  58. Agarwal, A., Ng, W. J., Liu, Y. Principle and applications of microbubble and nanobubble technology for water treatment. Chemosphere. 84 (9), 1175-1180 (2011).
  59. Tasaki, T., Wada, T., Baba, Y., Kukizaki, M. Degradation of surfactants by an integrated nanobubbles/VUV irradiation technique. Industrial & Engineering Chemistry Research. 48 (9), 4237-4244 (2009).
  60. Fujita, D., Itoh, H., Ichimura, S., Kurosawa, T. Global standardization of scanning probe microscopy. Nanotechnology. 18 (8), 084002 (2007).
  61. Häßler-Grohne, W., Hüser, D., Johnsen, K. P., Frase, C. G., Bosse, H. Current limitations of SEM and AFM metrology for the characterization of 3D nanostructures. Measurement Science and Technology. 22 (9), 094003 (2011).
  62. Sakai, K. . Measurement Techniques and Practices of Colloid and Interface Phenomena. , 51-57 (2019).
  63. Gan, T., Wu, B., Zhou, X., Zhang, G. Ultrahigh resolution, serial fabrication of three dimensionally-patterned protein nanostructures by liquid-mediated non-contact scanning probe lithography. RSC Advances. 6 (55), 50331-50335 (2016).
  64. Arteaga, J. F., et al. Comparison of the simple cyclic voltammetry (CV) and DPPH assays for the determination of antioxidant capacity of active principles. Molecules. 17 (5), 5126-5138 (2012).
  65. Moreno-Herrero, F., Colchero, J., Gomez-Herrero, J., Baro, A. Atomic force microscopy contact, tapping, and jumping modes for imaging biological samples in liquids. Physical Review E. 69 (3), 031915 (2004).
  66. Doktycz, M., et al. AFM imaging of bacteria in liquid media immobilized on gelatin coated mica surfaces. Ultramicroscopy. 97 (1-4), 209-216 (2003).

Play Video

Cite This Article
Shi, X., Ma, Q., Marhaba, T., Zhang, W. Probing Surface Electrochemical Activity of Nanomaterials using a Hybrid Atomic Force Microscope-Scanning Electrochemical Microscope (AFM-SECM). J. Vis. Exp. (168), e61111, doi:10.3791/61111 (2021).

View Video