Dubbel in utero elektroporatie maakt het richten van celpopulaties die ruimtelijk en tijdelijk gescheiden. Deze techniek is nuttig om interacties tussen die celpopulaties te visualiseren met behulp van fluorescerende eiwitten in normale omstandigheden, maar ook na functionele experimenten om genen van belang te verstoren.
In utero elektroporatie is een in vivo DNA-overdracht techniek op grote schaal gebruikt om de moleculaire en cellulaire mechanismen die ten grondslag liggen aan zoogdier corticogenese te bestuderen. Deze procedure maakt gebruik van de hersenventrikels om de introductie van DNA van belang mogelijk te maken en maakt gebruik van een paar elektroden om de ingang van het genetisch materiaal in de cellen langs de ventrikel, de neurale stamcellen, te leiden. Deze methode stelt onderzoekers in staat om de gewenste cellen te labelen en/of de expressie van genen van belang in die cellen te manipuleren. Het heeft meerdere toepassingen, waaronder tests gericht op neuronale migratie, lineage tracing, en axonale pathfinding. Een belangrijk kenmerk van deze methode is de temporele en regionale controle, waardoor het omzeilen van mogelijke problemen in verband met embryonale dodelijkheid of het ontbreken van specifieke CRE-bestuurdersmuizen mogelijk is. Een ander relevant aspect van deze techniek is dat het helpt om de economische en temporele beperkingen die het genereren van nieuwe muislijnen te betrekken aanzienlijk verminderen, die bijzonder belangrijk worden in de studie van interacties tussen celtypen die afkomstig zijn uit verre gebieden van de hersenen op verschillende ontwikkelingsleeftijden. Hier beschrijven we een dubbele elektroporatiestrategie die het mogelijk maakt om celpopulaties te targeten die ruimtelijk en tijdelijk gescheiden zijn. Met deze aanpak kunnen we verschillende subtypes van cellen op verschillende locaties labelen met geselecteerde fluorescerende eiwitten om ze te visualiseren, en/of we kunnen genen van belang manipuleren die door deze verschillende cellen op de juiste tijdstippen worden uitgedrukt. Deze strategie verbetert het potentieel van in utero elektroporatie en biedt een krachtig hulpmiddel om het gedrag van tijdelijk en ruimtelijk gescheiden celpopulaties te bestuderen die migreren om nauwe contacten te leggen, evenals lange-afstandsinteracties door middel van axonale projecties, waardoor de temporele en economische kosten worden verminderd.
De hersenschors is een zeer complexe en ingewikkeld georganiseerde structuur. Om een dergelijke mate van organisatie te bereiken, corticale projectie neuronen gaan door middel van complexe ontwikkelingsprocessen die hun temporele generatie vereisen, migratie naar hun eindbestemming in de corticale plaat, en de oprichting van korte- en lange afstand verbindingen1,2. Lange tijd was de klassieke manier om corticogenese te bestuderen gebaseerd op het gebruik van knock-out- of knock-in murinemodellen van genen van belang. Deze strategie, en met name het gebruik van voorwaardelijke knock-outmuizen, is echter tijdrovend en duur en levert soms extra problemen op met betrekking tot het bestaan van genetische redundantie of het ontbreken van specifieke CRE-drivers, onder andere kwesties. Een van de benaderingen die ontstond om te proberen deze problemen aan te pakken en die tegenwoordig op grote schaal wordt gebruikt om corticale ontwikkeling te bestuderen is in utero elektroporatie3,4. In utero elektroporatie is een techniek die wordt gebruikt voor somatische transgenese, waardoor in vivo targeting van neurale stamcellen en hun nakomelingen. Deze methode kan worden gebruikt om cellen te labelen door de expressie van fluorescerende eiwitten5,6, voor genmanipulatie in vivo (d.w.z. winst of verlies van functietesten)7,8,9, voor het isoleren van elektrogevormde cortices in vitro en culturing cellen8,10. Bovendien, in utero elektroporatie maakt tijdelijke en regionale controle van het beoogde gebied. Deze techniek heeft tal van toepassingen en is op grote schaal gebruikt voor het bestuderen van neuronale migratie, stamceldeling, neuronale connectiviteit, en andere onderwerpen8,9,11,12.
Het huidige manuscript beschrijft het gebruik van een in utero elektroporatie variant, dubbel genoemd in utero elektroporatie, om de interacties van cellen in de hersenschors met verschillende temporele en ruimtelijke oorsprong te analyseren. Deze studies zijn uiterst complex om te voltooien bij het gebruik van murine modellen, omdat ze het gecombineerde gebruik van verschillende transgene lijnen vereisen. Enkele van de toepassingen van het protocol beschreven in dit document omvatten de studie van nauwe interacties tussen naburige cellen, evenals interacties tussen verre cellen door middel van lange afstand projecties. De methode vereist het uitvoeren van twee onafhankelijke in utero elektroporatie operaties, tijdelijk gescheiden en ruimtelijk, op dezelfde embryo’s om verschillende cel populaties van belang te richten. Het voordeel van deze aanpak is de mogelijkheid van het manipuleren van de genfunctie in een of beide soorten neuronen met behulp van wilde type dieren. Bovendien kunnen deze functionele experimenten worden gecombineerd met de expressie van cytoplasmatische of membraangelabelde fluorescerende eiwitten om de fijne morfologie van gerichte cellen, inclusief dendrieten en axonen, te visualiseren en mogelijke verschillen in cellulaire interacties te analyseren in vergelijking met een controle (d.w.z. cellen die alleen zijn gelabeld met het fluorescerende eiwit).
Het hier afgebakende protocol is gericht op de studie van cellulaire interacties binnen de neocortex, maar deze strategie kan ook worden gebruikt om interacties met extracortical gebieden te onderzoeken die kunnen worden gericht met behulp van utero-elektroporatie, zoals het subpallium of de thalamus13,14, of celcelinteracties in andere structuren, zoals het cerebellum15. Targeting van verschillende gebieden is gebaseerd op de oriëntatie van de elektroden en op de ventrikel waar het DNA wordt geïnjecteerd (laterale, derde of vierde). Met de hier beschreven strategie kunnen we een aanzienlijk aantal cellen labelen, wat handig is om algemene veranderingen in connectiviteit/innervatie in functionele experimenten te evalueren. Niettemin, om fijne veranderingen in connectiviteit te bestuderen, kan men gewijzigde versies van in utero elektroporatie gebruiken om sparser het etiketteren te krijgen en enige cellen16te identificeren. Samengevat, dubbel in utero elektroporatie is een veelzijdige methode die het mogelijk maakt gericht tijdelijk en ruimtelijk gescheiden celpopulaties en het bestuderen van hun interacties in detail, hetzij in controleomstandigheden of in combinatie met functionele experimenten, aanzienlijk verminderen van tijdelijke en economische kosten.
De studie van celcelinteracties in vivo in regio’s met een hoge cellulaire dichtheid zoals de hersenschors is een complexe taak. Traditionele benaderingen, waaronder het gebruik van antilichamen om neurites te etiketteren, zijn niet geschikt vanwege het ontbreken van specifieke markers voor verschillende celpopulaties. Het gebruik van transgene murinemodellen, waarbij een bepaald celtype een fluorescerend eiwit uitdrukt, is nuttig om de neuronale processen te visualiseren, maar dit hangt af van de beschikbaarheid van der…
The authors have nothing to disclose.
De auteurs bedanken Cristina Andrés Carbonell en leden van de Animal Care-faciliteit van de Universidad de Valencia voor technische bijstand. We willen ook Isabel Fariñas en Sacramento R. Ferrón bedanken voor reagentia en het delen van hun apparatuur met ons. I.M.W wordt gefinancierd door een Garantía Juvenil contract uit de Conselleria de Educación de Valencia (GJIDI/2018/A/221), D.dA.D wordt gefinancierd door de Ministerio de Ciencia, Innovación y Universidades (MICINN) (FPI-PRE2018-086150). C.Gil-Sanz heeft een Ramón y Cajal Grant (RYC-2015-19058) van het Spaanse Ministerio de Ciencia, Innovación y Universidades (MICINN). Dit werk werd gefinancierd RYC-2015-19058 en SAF2017-82880-R (MICINN).
Ampicillin sodium salt | Sigma-Aldrich | A9518-25G | |
Aspirator tube | Sigma-Aldrich | A5177-5EA | |
Baby-mixter hemostat (perfusion) | Fine Science Tools (FST) | 13013-14 | |
Borosilicate glass capillary | WPI | 1B100-6 | |
Buprenorphine (BUPREX 0,3 mg/ml) | Rb Pharmaceuticals Limited | 921425 | |
CAG-BFP plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
CAG-EGFP plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
CAG-mCherry plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
CAG-mtdTomato-2A-nGFP plasmid | Kindly provided by U.Müller Lab | ||
Confocal microscope | Olympus | FV10i | |
Cotton Swabs | BFHCVDF | ||
Cyanoacrylate glue | B. Braun Surgical | 1050044 | |
Dissecting scope | Zeiss | stemi 305 | |
Dumont Forceps #5 Fine Forceps | Fine Science Tools (FST) | 11254-20 | |
ECM830 Square Wave Electroporator | BTX | 45-0052 | |
Electric Razor | Oster | 76998 | |
Endotoxin-free TE buffer | QIAGEN | 1018499 | |
Ethanol wipes | BFHCVDF | ||
Extra Fine Graefe Forceps | Fine Science Tools (FST) | 11150-10 | |
Eye ointment | Alcon | 682542.6 | |
Fast Green dye | Sigma-Aldrich | F7252-5G | |
Fine Scissors | Fine Science Tools (FST) | 14069-09 | |
Fluorescence LEDs | CoolLED | pE-300-W | |
Genopure Plasmid Maxi Kit | Roche | 3143422001 | |
Halsted-Mosquito Hemostats (suture) | Fine Science Tools (FST) | 91308-12 | |
Heating Pad | UFESA | AL5514 | |
Inverted epifluorescence microscope | Nikon | Eclipse TE2000-S | |
Iodine wipes | Lorsoul | ||
Isofluorane vaporizer | Flow-Meter | A15B5001 | |
Isoflurane | Karizoo | 586259 | |
Ketamine (Anastemine) | Fatro Ibérica SL | 583889-2 | |
Kimtech precision wipes | Kimberly-Clark | 7252 | |
LB (Lennox) Agar GEN | Labkem | AGLB-00P-500 | |
LB (Lennox) broth GEN | Labkem | LBBR-00P-500 | |
Low-melting point agarose | Fisher Scientific | BP165-25 | |
Medetomidine (Sedator) | Dechra | 573749.2 | |
Microscope coverslips | Menel-Gläser | 15747592 | |
Microscope Slides | Labbox | SLIB-F10-050 | |
Mounting medium | Electron Microscopy Sciences | 17984-25 | |
Mutiwell plates (24) | SPL Life Sciences | 32024 | |
Mutiwell plates (48) | SPL Life Sciences | 32048 | |
NaCl (for saline solution) | Fisher Scientific | 10112640 | |
Needle 25 G (BD Microlance 3) | Becton, Dickinson and Company | 300600 | |
Orbital incubator S150 | Stuart Scientific | 5133 | |
P Selecta Incubator | J. P. Selecta, s.a. | 0485472 | |
Paraformaldehyde | PanReac AppliedChem | A3813 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma -Aldrich | P4333 | |
Peristaltic perfusion pump | Cole-Parmer | EW-07522-30 | |
Platinum Tweezertrode, 5 mm Diameter | Btx | 45-0489 | |
Reflex Skin Closure System – 7mm Clips, box of 100 | AgnThos | 203-1000 | |
Reflex Skin Closure System – Clip Applyer, 7mm | AgnThos | 204-1000 | |
Ring Forceps | Fine Science Tools (FST) | 11103-09 | |
Sodium azide | PanReac AppliedChem | 122712-1608 | |
Surgical absorbent pad (steryle) | HK Surgical | PD-M | |
Suture (Surgicryl PGA 6-0) | SMI Suture Materials | BYD11071512 | |
Syringe 1ml (BD plastipak) | Becton, Dickinson and Company | 303172 | |
Tissue Culture Dish 100 x 20 mm | Falcon | 353003 | |
Vertical Micropipette Puller | Sutter Instrument Co | P-30 | |
Vertical microscope | Nikon | Eclipse Ni | |
Vibratome | Leica | VT1200S |