Summary

蛍光生涯イメージングを用いたエージングC.エレガンスにおけるアミロイド構造の特徴

Published: March 27, 2020
doi:

Summary

蛍光寿命イメージングは、生きている、老化、およびストレスを受けたC.エレガンス病モデルにおけるタンパク質の凝集傾向を監視し、定量化し、区別する。

Abstract

アミロイド線維は、ハンチントン、パーキンソン病、またはアルツハイマー病などの神経変性疾患の数に関連付けられている。これらのアミロイド線維は、内因性の転移性タンパク質ならびにプロテオスタシスネットワーク(PN)の成分を隔離し、細胞内のタンパク質のミスフォールディングを悪化させることができる。動物内のアミロイドタンパク質の凝集過程を評価するために利用可能なツールの数は限られています。我々は、非侵襲的な方法で、老化の進行と摂動時に、ニューロンなどの特定の細胞におけるアミロイド線維化のモニタリングおよび定量化を可能にする蛍光寿命顕微鏡(FLIM)のプロトコルを提示するPN.FLIMは、フルオロフォアの発現レベルとは無関係であり、さらなる染色や漂白を行うことなく凝集プロセスの分析を可能にします。蛍光体はアミロイド構造の近傍にあるときに消光し、蛍光寿命の減少をもたらす。この焼入れはアミロイドタンパク質の凝集と直接相関する。FLIMは、異なるアミロイドタンパク質、環境刺激、または生体内の遺伝的背景のフィブリリゼーションプロセスを非侵襲的な方法で比較するために適用できる汎用性の高い技術です。

Introduction

タンパク質凝集は、老化と病気の両方で起こります。大きいアミロイドまたは非晶質の含物の形成および沈着につながる経路は従いにくく、それらのキネティックは同様に解明に挑戦する。タンパク質は、遺伝性疾患の場合のように、コード配列内の本質的な突然変異のために誤って折り畳まれる可能性があります。タンパク質は、老化の間に起こるように、それらを可溶性に保ち、適切に折り畳まれたプロテオスタシスネットワーク(PN)が損なわれるので、誤って折り畳まれる。PNは、分子シャペロンと分解機械を含み、タンパク質の生物発生、折りたたみ、人身売買、および分解を担当しています

C.エレガンスは、その短い寿命、等元性の性質、および遺伝子操作の容易さのために老化と病気を研究するためのモデルとして登場しました。脆弱な組織でヒト疾患を引き起こすタンパク質を発現するいくつかのC.エレガン株トランスジェニック株が作成されました。重要なことに、凝集しやすいタンパク質を含む株の多くは、アミロイド障害の特徴を再現し、大きな含入物の形成を行う。C.エレガンスの透明なボディのおかげで、これらの凝集体は生体内で、非侵襲的かつ非破壊的に2で視覚化することができる。フルオロフォアとの融合で目的のタンパク質(POI)を生成することで、その位置、人身売買、相互作用ネットワーク、および一般的な運命を調査することができます。

我々は、蛍光生涯イメージング顕微鏡(FLIM)を介して、生きているおよび老化したC.エレガンsにおける疾患を引き起こすタンパク質の凝集を監視するプロトコルを提示する。FLIMは、発光スペクトルではなく、蛍光素の寿命に基づく強力な技術です。寿命(τ,τ)は、励起状態から地盤状態に戻るためにフォトンが必要とする平均時間として定義されます。特定の分子の寿命は、時間相関単一光子カウント(TCSPC)の時間領域技術で計算されます。TCSPC-FLIMでは、蛍光減衰機能は、短い高周波レーザーパルスで蛍光関数を励起し、発光子がパルスに関して検出器に到着する時間を測定することによって得られます。サンプルをスキャンする場合、各ピクセルに 3 次元データ配列が作成され、X、Y空間座標におけるフォトンの分布と時間減衰曲線に関する情報が配列に含まれます。したがって、特定のサンプルは、タンパク質の構造、結合、および環境33、44に関する情報を明らかにする寿命のマップになります。各蛍光タンパク質は、その生理化学的特性に依存する、通常は数ナノ秒(ns)の固有かつ正確に定義された寿命を有する。重要なことに、蛍光体の寿命は、その濃度、蛍光強度、およびイメージング方法論とは無関係である。しかし、生物学的システム内では、pH、温度、イオン濃度、酸素飽和度、および相互作用パートナーなどの環境要因の影響を受ける可能性があります。有効期間は、内部構造の変化や方向にも敏感です。蛍光体をPOIに融合させることで、その寿命が変化し、融合タンパク質の挙動に関する情報が得られます。フルオロフォアがアミロイド構造の抗並列βシートのような密結合環境に包囲または封入されると、非放射的にエネルギーを失い、クエンチ5と呼ばれるプロセスである。フルオロフォアの焼入れは、その明らかな寿命の短縮をもたらす。可溶性の場合、タンパク質の寿命は元の、より高い値に近いままになります。対照的に、タンパク質が凝集し始めると、その寿命は必然的に低い値66、7にシフトします。したがって、生きているC.エレガンスにおいて異なる年齢で任意のアミロイド形成タンパク質の凝集傾向を監視することが可能になる。

ここでは、異なるポリグルタミン(CAG、Q)ストレッチ(Q40、Q44、およびQ85)を含む融合タンパク質の凝集を分析するプロトコルについて説明します。我々は、シアン蛍光タンパク質(CFP)、黄色蛍光タンパク質(YFP)および単量体赤色蛍光タンパク質(mRFP)などの異なる蛍光性に対してこの技術を均等に適用する方法を示しています。そして、ニューロン、筋肉、および腸を含むC.エレガンスのすべての組織で。さらに、プロテオスタシスの文脈では、FLIMは、分子シャペロンの枯渇時の変化を観察するのに非常に有用なツールです。RNA干渉を介して重要な分子シャペロンの1つであるヒートショックタンパク質1(hsp-1)をノックダウンすると、タンパク質の早期ミスフォールディングが発生します。老化、疾患、またはシャペロン欠損の結果としての凝集負荷の増加は、次いで、蛍光寿命の減少として測定される。

Protocol

1. C.エレガンスの同期 C.エレガンスをアルカリ次亜塩素酸溶液処理を介して、または20°C8で4時間の単純な産8卵を介して同期する。 標準的な手順9に従ってOP50大腸菌を播種した線虫成長培地(NGM)プレート上で20°Cで線虫を成長させ、維持する。目的の発達段階または日まで線虫を老化する。注:このプロトコルでは、若い?…

Representative Results

このプロトコルは、自然な老化時とストレスを受けたときの両方で、生きているC.エレガンスにおける凝集種の形成を正確に監視する方法を示しています。ポリグルタミンタンパク質を発現するトランスジェニック線虫の4種類の株を40Q、44Q、または85Q反復で選択しました。これらのタンパク質は、異なる組織で合成され、異なるフルオロフォアに融合した。…

Discussion

ここで提示されるプロトコルは、C.エレガンスモデルシステムの凝集された種を同定するための顕微鏡ベースの技術を記述する。FLIMは、蛍光寿命の減衰の測定を通じて、凝集した可溶性種の両方が蛍光に融合した存在を正確に特徴付けることができます。融合タンパク質が記録された平均寿命を凝集し始めると、より高い値から低い値16にシフトします。凝集の傾向?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

研究インフラプログラムのNIH局(P40 OD010440)によって資金提供されているCGCによって提供される筋肉-Q40-mRFP株。ニューロンQ40-CFPは森本研究室の一種の贈り物でした。我々は、DFG(KI-1988/5-1からJKへ、ニューロキュア・ド・エクセレンス・クラスターによるニューロキュア博士課程のフェローシップからMLP)、EMBO(MLPへの短期フェローシップ)、生物学者企業(CGおよびMLPへの旅行助成金)を承認する。また、ベルリンのマックス・デルブリュック分子医学センターにある先端光顕微鏡イメージング施設が、YFP構造を画像化するためのセットアップを提供していることを認めています。

Materials

Agar-Agar Kobe I Carl Roth GmbH + Co. KG 5210.2 NGM component
Ahringer Library hsp-1 siRNA Source BioScience UK Limited F26D10.3
Ampicillin Carl Roth GmbH + Co. KG K029.3 Antibiotic
B&H DCS-120 SPC-150 Becker & Hickl GmbH FLIM Aquisition software
B&H SPC830-SPC Image Becker & Hickl GmbH FLIM Aquisition software
BD Bacto Peptone BD-Bionsciences 211677 NGM component
C. elegans iQ44-YFP CAENORHABDITIS GENETICS CENTER (CGC) OG412
C. elegans iQ85-YFP Kind gift from Morimoto Lab
C. elegans mQ40-RFP Kind gift from Morimoto Lab
C. elegans nQ40-CFP Kind gift from Morimoto Lab
Deckgläser-18x18mm Carl Roth GmbH + Co. KG 0657.2 Cover slips
Isopropyl-β-D-thiogalactopyranosid (IPTG) Carl Roth GmbH + Co. KG 2316.4
Leica M165 FC Leica Camera AG Mounting Stereomicroscope
Leica TCS SP5 Leica Camera AG Confocal Microscope
Levamisole Hydrochloride AppliChem GmbH A4341 Anesthetic
OP50 Escherichia coli CAENORHABDITIS GENETICS CENTER (CGC) OP50
PicoQuant PicoHarp300 PicoQuant GmbH FLIM Aquisition software
Sodium Azide Carl Roth GmbH + Co. KG K305.1 Anesthetic
Sodium Chloride Carl Roth GmbH + Co. KG 3957.2 NGM component
Standard-Objektträger Carl Roth GmbH + Co. KG 0656.1 Glass slides
Universal Agarose Bio & Sell GmbH BS20.46.500
Zeiss AxioObserver.Z1 Carl Zeiss AG Confocal Microscope
Zeiss LSM510-Meta NLO Carl Zeiss AG Confocal Microscope

References

  1. Klaips, C. L., Jayaraj, G. G., Hartl, F. U. Pathways of cellular proteostasis in aging and disease. Journal of Cell Biology. 217 (1), 51-63 (2018).
  2. Kikis, E. A. The struggle by Caenorhabditis elegans to maintain proteostasis during aging and disease. Biology Direct. 11, 58 (2016).
  3. Becker, W. Fluorescence lifetime imaging – techniques and applications. Journal of Microscopy. 247 (2), 119-136 (2012).
  4. Lakowicz, J. R. . Principles of Fluorescence Spectroscopy. , (2006).
  5. Berezin, M. Y., Achilefu, S. Fluorescence lifetime measurements and biological imaging. Chemical Reviews. 110 (5), 2641-2684 (2010).
  6. Kaminski Schierle, G. S., et al. A FRET sensor for non-invasive imaging of amyloid formation in vivo. ChemPhysChem. 12 (3), 673-680 (2011).
  7. Sandhof, C. A., et al. Reducing INS-IGF1 signaling protects against non-cell autonomous vesicle rupture caused by SNCA spreading. Autophagy. , 1-22 (2019).
  8. Porta-de-la-Riva, M., Fontrodona, L., Villanueva, A., Cerón, J. Basic Caenorhabditis elegans methods: Synchronization and observation. Journal of Visualized Experiments. 64, e4019 (2012).
  9. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook the online review of C. elegans biology. 1999, 1-11 (2006).
  10. Kamath, R. S., Martinez-Campos, M., Zipperlen, P., Fraser, A. G., Ahringer, J. Effectiveness of specific RNA-mediated interference through ingested double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Genome Biology. 2 (1), 1-10 (2001).
  11. Becker, W., et al. Fluorescence Lifetime Imaging by Time-Correlated Single-Photon Counting. Microscopy Research and Technique. 63 (1), 58-66 (2004).
  12. Warren, S. C., et al. Rapid global fitting of large fluorescence lifetime imaging microscopy datasets. PloS one. 8 (8), e70687 (2013).
  13. Moronetti Mazzeo, L. E., Dersh, D., Boccitto, M., Kalb, R. G., Lamitina, T. Stress and aging induce distinct polyQ protein aggregation states. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (26), 10587-10592 (2012).
  14. Ben-Zvi, A., Miller, E. A., Morimoto, R. I. Collapse of proteostasis represents an early molecular event in Caenorhabditis elegans aging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (35), 14914-14919 (2009).
  15. Wallrabe, H., Periasamy, A. Imaging protein molecules using FRET and FLIM microscopy. Current Opinion in Biotechnology. 16 (1), 19-27 (2005).
  16. Chan, F. T. S., Pinotsi, D., Kaminski Schierle, G. S., Kaminski, C. F. Structure-Specific Intrinsic Fluorescence of Protein Amyloids Used to Study their Kinetics of Aggregation. Bio-nanoimaging: Protein Misfolding and Aggregation. , 147-155 (2013).
  17. Laine, R. F., et al. Fast Fluorescence Lifetime Imaging Reveals the Aggregation Processes of α-Synuclein and Polyglutamine in Aging Caenorhabditis elegans. ACS Chemical Biology. 14 (7), 1628-1636 (2019).
  18. Kelbauskas, L., Dietel, W. Internalization of Aggregated Photosensitizers by Tumor Cells: Subcellular Time-resolved Fluorescence Spectroscopy on Derivatives of Pyropheophorbide-a Ethers and Chlorin e6 under Femtosecond One- and Two-photon Excitation. Photochemistry and Photobiology. 76 (6), 686-694 (2002).
  19. Becker, W., Su, B., Holub, O., Weisshart, K. FLIM and FCS detection in laser-scanning microscopes: Increased efficiency by GaAsP hybrid detectors. Microscopy Research and Technique. 74 (9), 804-811 (2011).
  20. Suhling, K., French, M. W., Phillips, D. Time-resolved fluorescence microscopy. Photochemical and Photobiological Sciences. 4 (1), 13-22 (2005).

Play Video

Cite This Article
Pigazzini, M. L., Gallrein, C., Iburg, M., Kaminski Schierle, G., Kirstein, J. Characterization of Amyloid Structures in Aging C. Elegans Using Fluorescence Lifetime Imaging. J. Vis. Exp. (157), e61004, doi:10.3791/61004 (2020).

View Video