Summary

Análise de defeitos cardíacos congênitos em embriões de camundongos usando métodos histológicos qualitativos e quantitativos

Published: March 10, 2020
doi:

Summary

Neste protocolo, descrevemos procedimentos para analisar qualitativamente e quantitativamente fenótipos de desenvolvimento em camundongos associados a defeitos cardíacos congênitos.

Abstract

Os defeitos cardíacos congênitos (DCh) são o tipo mais comum de defeito de nascimento em humanos, afetando até 1% de todos os nascidos vivos. No entanto, as causas subjacentes à DCh ainda são pouco compreendidas. O camundongo em desenvolvimento constitui um modelo valioso para o estudo da ChD, porque os programas de desenvolvimento cardíaco entre camundongos e humanos são altamente conservados. O protocolo descreve em detalhes como produzir embriões de camundongos do estágio gestacional desejado, métodos para isolar e preservar o coração para processamento a jusante, métodos quantitativos para identificar tipos comuns de CHD por histologia (por exemplo, septal ventricular defeitos, defeitos septos atrial, patente ductus arteriosus) e métodos quantitativos de histomormormetria para medir fenótipos comuns de compactação muscular. Esses métodos articulam todas as etapas envolvidas na preparação, coleta e análise da amostra, permitindo aos cientistas medir corretamente e reprodutivelmente a CHD.

Introduction

Os CHDs são o tipo mais comum de defeito de nascimento em humanos e são a principal causa de mortes relacionadas a defeitos congênitos1,2,3,4,5,6. Embora cerca de 90% das crianças recém-nascidas sobrevivam à Dra, ela é frequentemente associada a significativa morbidade e intervenções médicas ao longo dos anos, impondo um fardo pesado na vida dos pacientes e no sistema de saúde7,8,9,10. Fora fatores puramente genéticos, as causas da DCh são mal compreendidas4. As causas não identificadas representam ~56-66% de todos os casos de CHD de acordo com a American Heart Association e outras fontes2,3,4,11. Fatores bem conhecidos incluem mutações genéticas, CNVs, variantes de novo nucleotídeo único e aneuploidia. Suspeita-se que fatores ambientais e dietéticos também sejam fontes importantes que contribuem para a DCH, como sugerem estudos epidemiológicos que ligam o estilo de vida materno2,12, privação econômica e raça13, e por pesquisas sobre fatores dietéticos como o ácido fólico11,14 e o ácido retinóico lipídico bioativo15,16. Investigar os mecanismos e causas da Doença e outros defeitos cardiovasculares é importante para desenvolver estratégias preventivas e novas opções terapêuticas1,4,17,18,19.

O camundongo em desenvolvimento é um modelo fundamental para estudar CHD em mamíferos. No entanto, alguns dos métodos e análises empregados, como dissecções que preservam a morfologia cardíaca, análise de estágios de desenvolvimento e identificação de defeitos associados à ChD, podem ser assustadores para os cientistas que são novos na análise de corações murina. O objetivo dos métodos descritos neste protocolo é oferecer diretrizes qualitativas e quantitativas para esses processos. Assim, neste protocolo explicamos como realizar acasalamentos cronometrados para produzir embriões do estágio gestacional desejado, dissecar fêmeas grávidas para recuperação cardíaca intacta (incluindo tecidos associados, como o trato de saída), fixação cardíaca e preparação para secção criostato, métodos básicos de histologia, análises quantitativas de defeitos cardíacos comuns e análise qualitativa da compactação muscular cardíaca, um fenótipo precursor comum para alguns tipos de CHD.

Protocol

Todos os animais utilizados nos experimentos mencionados neste artigo foram tratados utilizando as diretrizes de cuidados com animais do Comitê de Cuidado e Uso de Animais Institucionais da Universidade Estadual de Michigan (IACUC). 1. Acasalamento cronometrado de camundongos C57BL6/J para produção de embriões Uma vez que os camundongos tenham atingido a idade de reprodução (6-8 semanas), coloque-os juntos em formato de reprodução de harém (ou seja, duas fêmeas por um macho…

Representative Results

O índice de compactação muscular foi comparado entre os corações em desenvolvimento em dois ambientes diferentes, um controle e um grupo experimental. Esses protocolos foram utilizados para analisar quantitativamente a compactação do tecido muscular, o que permitiu a análise estatística. A compactação muscular mostrou-se significativamente reduzida nos corações experimentais em relação aos embriões que se desenvolveram em condições não experimentais. <p class="jove_…

Discussion

Este protocolo explora as técnicas envolvidas na análise do desenvolvimento cardíaco em corações embrionários. Algumas limitações deste método são a destreza física necessária para as técnicas preparatórias, que podem exigir prática, e habilidade com imagens de microscópio. Se as fatias obtidas no criostato forem bagunçadas, a coloração de hematoxilina e eosina não será clara, ou se as imagens tiradas no microscópio tiverem pouca iluminação, então o método usado com imagej não funcionará. Uma …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O Aguirre Lab é apoiado pelo National Heart, Lung, and Blood Institute dos Institutos Nacionais de Saúde o número do prêmio K01HL135464 e pela American Heart Association o prêmio número 19IPLOI34660342.

Materials

15 mL Conical Tube(s) Fisher Scientific # 1495970C
C57BL/6J Mice Jackson Labs C57BL/6J – stock 000664
Coplin Staining Jars (x6) VWR Scientific # 25457-006
Coverslips 24X50MM #1.5 VWR Scientific # 48393-241
Cryostat – Leica CM3050S Leica N/A
Dissecting Dish(s) Fisher Scientific # 50930381
Dumont #5 – Fine Forceps (x2) Fine Science Tools # 11254-20
Eosin Y Solution Millipore Sigma # HT110116-500ML
Ethyl Alcohol (Pure, 200 proof) Fisher Scientific # BP2818-500
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Millipore Sigma # E9884-100G
Eukitt Millipore Sigma # 03989-100ML
Fine Scissors Fine Science Tools # 14060-10
Fluorescent Stereo Microscope Leica M165 FC Leica N/A
Glycine Millipore Sigma # 410225-250G
Graefe Forceps Fine Science Tools # 11052-10
Graphpad Prism 8 Software Graphpad
ImageJ Software ImageJ
Kimwipes Fisher Scientific # 06666A
Mayer's hematoxylin solution Millipore Sigma # MHS16-500ML
Micropipette tip(s) – p200 Fisher Scientific # 02707448
Microsoft Excel Software Microsoft
OCT Compound VWR Scientific # 102094-106
Olympus CkX53 Microscope Olympus
Paint Brushes (at least 2)
Paraformaldehyde VWR Scientific # 0215014601 Make into 4% solution (dissolved in PBS)
Pasteur pipette(s) Fisher Scientific # 13-711-7M
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher Scientific # 15140122
Phosphate Buffered Saline (PBS) ThermoFisher Scientific # 70011044 Dilute from 10x to 1x before using
Scale Mettler Toledo # MS1602TS
Scale Mettler Toledo # MS105
Scalpel Handle #3 VWR Scientific # 10161-918
Scalpel Blades VWR Scientific # 21909-612
Square Mold VWR Scientific # 100500-224 For OCT molds
Sucrose Millipore Sigma # S9378-500G
Superfrost Plus Slides Fisher Scientific # 1255015
Surgical Scissors Fine Science Tools # 14002-14
Tissue-Tek Accu-Edge Disposable Microtome Blades VWR Scientific # 25608-964
Travel Scale Acculab VIC 5101
Xylene Millipore Sigma 214736-1L

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Cite This Article
Ball, K., Kinne, R., Aguirre, A. Analysis of Congenital Heart Defects in Mouse Embryos Using Qualitative and Quantitative Histological Methods. J. Vis. Exp. (157), e60926, doi:10.3791/60926 (2020).

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