Summary

高分子電解質複合体ミセルの組み立てと特徴付け

Published: March 02, 2020
doi:

Summary

我々は、設計、組み立て、および高分子電解質複合ミセル、高分子電解質および親水性荷電ブロックコポリマーによって形成されるコアシェルナノ粒子の設計、組み立て、および特徴付けのための代表的なデータを提供する。

Abstract

高分子電解質複合ミセル(PCM)、水溶液中の荷電ポリマーの自己集合によって形成されるコアシェルナノ粒子は、高分子相互作用の物理学を探索するための強力なプラットフォームを提供し、また、有望なソリューションを提供します。治療オリゴヌクレオチドを生体内に送達するという差迫した問題。PCMの予測構造特性関係の開発は、ナノ粒子自己集合中に強力な運動トラップが存在するため、困難であることが証明されています。本稿では、PCM構築のためのポリマーを選択するための基準について説明し、繰り返し可能な、低多分散性ナノ粒子の組み立てを可能にする塩アニールに基づくプロトコルを提供します。また、光散乱、小角X線散乱、電子顕微鏡によるPCM特性解析についても議論する。

Introduction

逆に荷電性の高分子電解質が水溶液中に混合されると、それらの対イオンの放出によるエントロピーゲインは、高分子が豊富な凝縮相と高分子枯渇上清1、2、3、4、5に溶液の脱混合を引き起こし、高分子電解質錯体として知られている現象である。中性親水性ブロックが一方または両方の高分子電解質に結合している場合、ナノスケールの相分離が起こる(1A)。得られた自己集合コアシェルナノ粒子は、様々にポリ電解質複合体ミセル(PCM)と呼ばれ、ポリイオン複合体ミセル、ブロックイオノマー複合体、または界面活性剤ミセル化にたとえよるコアミセル、システムのすべての構成要素が親水性6、7であるにもかかわらず。PCMのタンパク質や核酸などの親水性分子をカプセル化する能力、ならびにブロックコポリマーキャリアアーキテクチャによって提供される広範なツナビリティは、それらの治療分子を生体8、9、10、11、12、13で送達するための魅力的な候補となる。

細胞標的に治療用核酸を送達することは特に重要な課題であり、PCMにはいくつかの利点があります。治療用核酸(遺伝子DNA、mRNA、およびsiRNAなどのオリゴヌクレオチド)は、ヒトの健康を改善する大きな可能性を有するが、その電位14、15、16を実現するためには多数の生物学的および物理的障壁を克服しなければならない。裸の核酸は血清および細胞ヌクレアーゼによって分解され、急速に循環から取り除かれ、その強い負電荷は助けを借りずに細胞膜に浸透することを困難にする。これらの障壁を克服するための現在のアプローチは、疎水相互作用15、17、18を介して組み立てられた種々の脂質ナノ粒子へのヌクレアーゼおよび/またはカプセル化による損傷を防止するための高価な化学修飾を含む。これらの方法は局所的な注射および肝臓の標的化に有効であることが証明されているが、全身使用は毒性、免疫原性、および限られた生体分布16の重大な限界を提示する。対照的に、PCMは核酸の負の電荷を使用して相分離コア内でそれらを凝縮し、中性コロナは分解に対する立体障壁を提供し、リガンドを組み込んで標的化または内在化を強化するプラットフォーム11,19を提供する。インビトロおよび動物研究では、PCMは様々な核酸ペイロード20、21、22、23、24を効果的に送達できることが示されていますが、構成ポリマーの特性からサイズ、形状、安定性などのPCM特性を予測する能力の弱点は、より広い採用を妨げている。

我々のグループや他の分野の他の人々による最近の研究は、構造特性を開発することによってこの問題に対処し始めており、いくつかのケースでは、核酸と様々なカチオン中性ポリマー7、25、26、27から形成されたPCMのための構造特性と機能の関係を構築しています。これらの研究から生まれた2つの一貫したテーマは、PCMアセンブリのための十分に制御された再現可能なプロトコルを開発することの重要性と、得られるナノ粒子を特徴付けるために複数の技術を使用することの利点です。高電解質、特に核酸のような高い電荷密度を有するものは、互いに非常に強く相互作用し、混合時にキネティックに閉じ込められて容易に見え、その結果、手順の小さな変動に対して高感度で、バッチからバッチへの高い多分散性と再現性の悪さを示すPCM製剤が生じる。PCMは、部品の原子レベルの構成に応じて幅広い形状とサイズを採用することも示されており、特にダイナミック光散乱(DLS)などの一般的な技術では粒子形状に関する仮定が必要なため、個々の特性評価技術でこの多様性を捉えるのが非常に困難です。

本稿では、オリゴヌクレオチドとカチオン中性のジブロックコポリマーに焦点を当てて、PCMの材料設計と選択について議論する。次に、PCM アセンブリ中の運動トラップを回避するために、高い塩濃度を使用し、低速透析を行う塩アニールプロトコルについて説明します。高電解質は、静電的なアトラクションがスクリーニングされる高塩条件で混合され、その後、塩濃度をゆっくりと低下させ、熱アニーリングの遅い冷却プロセスに似た、高分子電解質が最も精力的に有利な構成に落ち着くことを可能にする。このプロトコルを使用して、オリゴヌクレオチドPCMs7、26の非常に低い多分散性と高い再現性を定期的に達成することができます。最後に、外部形態から内部構造まで、幅の広いスケールでPCMを特徴付ける4つの個別の測定技術(DLS、マルチアングル光散乱(MALS)、小角X線散乱(SAXS)、透過電子顕微鏡(TEM)の4つの異なる測定技術を説明します。私たちは、これらのプロトコルにより、より多くの研究者がこれらの興味深いナノ粒子の能力を効果的に探求することを可能にすることを期待しています。

ポリマーの選択と調製
PCM特性は、構成ポリマーの物理的および化学的特性に強く影響を受け、設計プロセスにおける重要なステップとしてポリマーを選択します。核酸PCMの最もよく特徴付けられるブロックコポリマーは、ポリ(リジン)-ポリ(エチレングリコール)(pLys-PEG)のような線形二重ブロックであるが、PCMは高いスループット28で生成することができる多電解質と様々な親水性中性荷電ポリマーの間で形成することができる。荷電群の選択はミセル26のイオンペアリングおよび形状の安定性に強く影響し、PCMサイズは、充電ブロック5、7、26(図2)の長さに伴って増加することが示されており、PCM特性は所望のアプリケーションの要件に合わせて調整することが可能である。線形ディブロックの場合、荷電ブロックは少なくとも10の電荷を持ち、所望のpHで強く充電されるべきであることがわかりました。より長い荷電ブロックは、siRNAなどのオリゴヌクレオチドを用いたPCM形成を促進し得るが、これは短いブロック21との複合体化が困難である。我々は、最大200のブロック長でPCM形成を観察することに成功しており、文献はより長いポリマーを記述している。ニュートラルブロック24の選択では柔軟性が高いが、経験上、ナノ粒子形成ではなく凝集に至る非常に短いニュートラルブロック、および最小中性の長さが帯電したブロック長で増加することが示されている。pLys-PEGの場合、〜50未満のpLysの長さには少なくとも3,000~5,000のPEGMWが必要であり、チャージブロックがさらに増加するにつれて長い長さが必要です。ニュートラルブロック長の増加により、中性ポリマーの立体混雑によるPCMサイズ、特にシェルの厚みが増加します。

この原稿は、凍結乾燥した高純度のpLys-PEGおよび既知の量のオリゴヌクレオチドからPCMを調製するためのプロトコルを提示するが、他のシステムにも容易に適応可能であるべきである。ポリアルギニンやポリグルタミン酸をはじめ、ポリアクリル酸やポリ(ビニルベンジルトリメチルアンモニウム)などの合成ポリ電解質を挙げ、いくつかの荷電ポリペプチドを用いて試験を行いました。また、多電荷の量論比を持つPCMの準備についても説明していますが、これは容易に変更できます。私たちは、充電濃度単位(c.c.)で作業するのが最も簡単であり、完全に充電されていないポリマーにも自然に対応しています。いずれかのポリマーが十分に特徴付けされていない場合は、ポリマーの長さ/質量を正確に決定し、透析による電荷中和に必要な量を超えて余分な塩が存在しないことを確認する必要があります。任意の保持水の存在は、濃度が計算されたときにも考慮する必要があります。核酸濃度は、260 nmでの吸光度によって簡便に定量することができ、c.cを計算する際には末端リン酸塩の有無を考慮する必要があります。

ポリアニオンとしてオリゴヌクレオチドを使用する場合、ハイブリダイゼーション状態および化学構造は、自己集合性に対する傾向および得られたPCM5、7、26の特性を決定するのに役立つ。これらを最適化すると、配信にPCMを使用する場合の生物学的有効性の要件の範囲内で、所望の構造を形成する可能性が高くなります。ハイブリダイゼーションの分析に役立つツールには、核酸の MATLAB 関数、NUPACK29、および IDT オリゴ アナライザーがあります。1)に結合する強さを理解するために候補配列を分析することを推奨します。2)同じシーケンスの別のコピー(自己ダイマー);そして3)系に存在する他のオリゴヌクレオチドに対する。特定の配列のDNAおよびRNA融解温度は、近傍法30,31を用いて計算することもできる。核酸の熱アニーリング(ステップ2.3)は、個々のヌクレオチド中の残留二次構造を変性させ、平衡折りたたみを促進します。

PCM の特性評価と分析
静的・動的光散乱、電子や中性子の小さな角度散乱、電子顕微鏡など、ナノ粒子を特徴付けるための幅広い技術が利用可能です。本稿では、小角X線散乱法と2つの電子顕微鏡技術の2つの光散乱技術に関するプロトコルを提供する。

DLSは、サンプルのブラウン運動から一角度で散乱強度の時間的変動の自己相関を測定します。このデータをフィッティングすることで、球体ミセルの流体力学半径と多分散性を提供できます(図3)。マルチアングル光散乱(MALS)は、多くの角度で静的散乱強度を測定します。この角度依存性はナノ粒子の形状を表しますが、可視光の場合は約50nmを超える長さスケールに制限され、より小さなナノ粒子に対する有効性が制限されます。どちらの手法も屈折率の不一致に基づいており、主にナノ粒子の外側の寸法を記述しています。

小角X線散乱(SAXS)は、散乱プローブとしてX線を使用し、その短波長は、〜0.1〜100nmの範囲にわたって測定を可能にします。観察された散乱強度対角度(従来は運動量移動q)にフィッティングすることで、PCMの形態(サイズと形状)および内部構造に関する情報が提供されます。絶対強度キャリブレーションが可能で、散乱強度をゼロ角度に外挿できる場合、PCM質量と凝集数も32と推定でき、SAXSは非常に汎用性の高い貴重な方法です。小角中性子散乱(SANS)は、長さのスケールの同様の範囲にわたって敏感であるが、専門施設でのみ利用可能であり、この記事33、34、35で明示的に議論されません。

近年、ベンチトップSAXS機器の登場が見られますが、これらの低コントラストサンプルのデータを高速に収集できるため、シンクロトロン源はPCMの特性評価に適していることがわかります。ユーザーの視点から高度なフォトンソース(米国アルゴンヌ国立研究所)でビームライン12-ID-BでPCM SAXSデータを取得するための簡単なプロトコルを提供します。このプロトコルは、ほとんどのシンクロトロン源に適用可能であるべきですが、実験を提案する前に現地スタッフと相談することを強くお勧めします。また、Irena36、イゴールプロのために書かれたマクロの自由なセットを使用して、データの削減と分析プロトコルを提供します。Irena には、SAXS データをモデル化するための多彩なフォーム ファクタが含まれており、PCM の複雑な散乱プロファイルを記述できるマルチコンポーネント モデルを構築できます (代表的な結果を参照してください (図 4参照)。Irenaには、オンラインで利用可能な包括的なドキュメントとチュートリアルもあります。以下の手順を試す前に、これらのチュートリアル、特に「2つの主要な散乱母集団を持つSAXSデータのモデリング」に精通することをお勧めします。

放射線の損傷はX線散乱の問題ですが、それを最小限に抑えるためにいくつかの対策を講じることもできます。特に、密閉キャピラリーではなく、データ取得中に流れるシリンジポンプとPCMサンプルを備えたフローセル設定を使用することをお勧めします。これにより、背景の減算も大幅に簡略化されます。また、サンプルの単一の体積が見るフラックスを制限し、暴露データの比較を可能にするために、1つの長いサンプルではなく、流れるサンプルの複数の暴露を取ることを提案します。

一般的に解釈にフィッティングを必要とする散乱技術とは対照的に、透過電子顕微鏡(TEM)は、試料を電子ビームを通過させ、シンチレーションスクリーン上に画像を投影することによって、ナノ粒子の実際の空間視覚的な画像を提供する(図5)。この記事では、2 つの TEM 手法のプロトコルを紹介します。Cryo TEMは、ミセルサンプルを薄い層の水晶体に凍結し、最小の異物で構造コンフォメーションを維持し、半径内のミセル≤〜10〜100nmに最適です。マイナス染色剤TEMは、グリッドの表面で乾燥した後、試料を取り囲むために重金属塩(例えばウラン)を使用する。密な汚れは、サンプルよりも多くの電子を散乱させ、コントラストを加え、サンプルの負の画像を生成します。Cryo TEMは、高品質の画像に推奨されます。しかし、それはより高価で、時間がかかり、十分なコントラストを提供しない可能性があります。これが懸念される場合は、陰性染色サンプルを使用する必要があります。それぞれの例を図 5に示します。

これらの技術のそれぞれは、異なる強みと制限を持つナノ粒子のわずかに異なる側面を報告します。光散乱は容易に利用でき、多くの場合、最も高速なアプローチですが、サイズと形状の解像度にかなりの制限があります。SAXS は、かなり高いスループットで、長さのスケールの広い範囲にわたって情報を提供できますが、データを取得するための特殊な装置と、それを解釈するためのモデリングが必要です。TEM イメージは解釈が簡単ですが、コントラストが制限され、本質的にスループットが低くなります。我々の経験では、複数の技術を用いて特性化を行うと、PCM特性について得られる情報が大幅に増加し、各々から得られたデータセットの解釈が簡素化されるということが分かってきた。例えば、SAXSとTEMは主にPCMの高密度コアを調べる一方、光散乱はナノ粒子の全体的な寸法を報告する。従って、それらを組み合わせることによって、コアおよびコロナサイズの両方の測定が可能になる。実空間画像を取得する TEM の機能は、根拠の真実データを提供して、あいまいな SAXS データをモデリングするための適切なフォーム ファクターを選択できるようにします。この資料では、4 つの手法すべてに対するプロトコルについて説明し、これらのプロトコルを使用して不明なサンプルを特徴付けるプロセスの例については、「説明」セクションで説明します。

Protocol

1. 材料の調製 凍結乾燥ジブロックポリマーを計量し、10 mg/mLの最終濃度のストック溶液に必要なほぼ体積まで水を加えます。2分間の最高速度で渦。 超音波処理 5 分. 非常に長いディブロックは、追加の超音波処理を必要とすることがあります。ストックソリューションは、完全に透明で均質に見えるはずです。 必要に応じて NaOH または HCl を使用して pH を 7.4 に調整し…

Representative Results

上述の特性評価方法を説明するために、オリゴヌクレオチドから組み立てられたPCMの代表的な結果を示し、様々な長さと化学のブロックコポリマーをブロックする(図1)。図 2は、PCM コア サイズ (SAXS および TEM、図 4、図 5から決定される) が、帯電ブロックの長さによってどのように変化したかを示して?…

Discussion

上述のように、ここで提示されたプロトコルは、ポリアニオン成分としてオリゴヌクレオチドに焦点を当て、カチオン中性ブロック共重合体としてpLys-PEGに焦点を当てて書かれていますが、ポリ(アクリル酸)、ポリグルタミン酸、PEGポリ(ビニルベンジルトリメチルアンモニウム)などの様々なポリマーでテストしており、一般的にポリ電解質ペアに適用可能であると考えています。最適化が必?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

シカゴ大学のソフトマター特性評価施設とアドバンスド電子顕微鏡施設のフィル・グリフィンとテラ・ラヴォワにそれぞれ感謝します。また、アルゴンヌ国立研究所の先端光子ソースのシャオビン・ズオとソエンケ・ザイフェルトに感謝し、NIST階層材料設計センター(CHiMaD)を支援します。ジェフ・ティンとマイケル・リュークハイデのこの作品への貢献に感謝します。

Materials

70 mm circle filter paper Whatman 1001-070 Filter paper for wicking during grid prep
Carbon Film TEM grid Electron Microscopy Sciences CF200-Cu TEM grid
DAWN Wyatt Technology DAWN MALS instrument
DNA oligonucleotide Integrated DNA Nanotechnologies Inc Custom oligonucleotide
Lacey Carbon TEM grid Electron Microscopy Sciences LC200-Cu TEM grid
Methoxy-poly(ethylene glycol)-block-poly(l-lysine hydrochloride) PEG5k – PLKC50 Alamanda Polymers Inc mPEG5K-b-PLKC50 Example block copolymer
Milli-Q Millipore Sigma Ultrapure water
NanoDrop Thermo Scientific For measuring nucleic acid concentration
negative-action tweezers Dumont N7 Tweezers for grid preparation
Parafilm "M" Bemis Company Inc PM996 Laboratory film
Quantifoil Holey Carbon TEM grid Electron Microscopy Sciences Q210CR1.3 TEM grid
Research Goniometer and Laser Light Scattering System Brookhaven Instruments BI-200SM DLS/MALS instrument
Slide-A-Lyzer G2 2K 0.5 mL Thermo Scientific Pierce Protein Biology 87723 Dialysis cartridge
small volume cuvette Brookhaven Instruments BI-SVC Cuvette for DLS/MALS
Solarus 950 Advanced Plasma System Gatan Solarus 950 Plasma system for TEM grids
Talos TEM FEI Talos TEM used for cryo samples
Tecnai Spirit TEM FEI Spirit TEM used for dry samples
Uranyl Formate SPI-Chem 16984-59-1 For negative staining samples for TEM
Vitrobot FEI Vitrobot Vitrification robot for cryo grid preparation

References

  1. Spruijt, E., Westphal, A. H., Borst, J. W., Cohen Stuart, M. A., van der Gucht, J. Binodal compositions of polyelectrolyte complexes. Macromolecules. 43 (15), 6476-6484 (2010).
  2. van der Gucht, J., Spruijt, E., Lemmers, M., Cohen Stuart, M. A. Polyelectrolyte complexes: bulk phases and colloidal systems. Journal of Colloid and Interface Science. 361 (2), 407-422 (2011).
  3. Priftis, D., Laugel, N., Tirrell, M. Thermodynamic characterization of polypeptide complex coacervation. Langmuir. 28 (45), 15947-15957 (2012).
  4. Fu, J., Schlenoff, J. B. Driving Forces for Oppositely Charged Polyion Association in Aqueous Solutions: Enthalpic, Entropic, but Not Electrostatic. Journal of the American Chemical Society. 138 (3), 980-990 (2016).
  5. Vieregg, J. R., et al. Oligonucleotide-Peptide Complexes: Phase Control by Hybridization. Journal of the American Chemical Society. 140 (5), 1632-1638 (2018).
  6. Voets, I. K., de Keizer, A., Cohen Stuart, M. A. Complex coacervate core micelles. Advances in Colloid and Interface Science. 147-148, 300-318 (2009).
  7. Lueckheide, M., Vieregg, J. R., Bologna, A. J., Leon, L., Tirrell, M. V. Structure-Property Relationships of Oligonucleotide Polyelectrolyte Complex Micelles. Nano Letters. 18 (11), 7111-7117 (2018).
  8. De Kruif, C. G., Weinbreck, F., de Vries, R. Complex coacervation of proteins and anionic polysaccharides. Current Opinion in Colloid & Interface Science. 9 (5), 340-349 (2004).
  9. Vieregg, J. R., Tang, T. Y. D. Polynucleotides in cellular mimics: Coacervates and lipid vesicles. Current Opinion in Colloid & Interface Science. 26, 50-57 (2016).
  10. Marciel, A. B., Chung, E. J., Brettmann, B. K., Leon, L. Bulk and nanoscale polypeptide based polyelectrolyte complexes. Advances in Colloid and Interface Science. 239, 187-198 (2017).
  11. Cabral, H., Miyata, K., Osada, K., Kataoka, K. Block Copolymer Micelles in Nanomedicine Applications. Chemical Reviews. 118 (14), 6844-6892 (2018).
  12. Tan, Z., et al. Block Polymer Micelles Enable CRISPR/Cas9 Ribonucleoprotein Delivery: Physicochemical Properties Affect Packaging Mechanisms and Gene Editing Efficiency. Macromolecules. 52 (21), 8197-8206 (2019).
  13. Horn, J. M., Kapelner, R. A., Obermeyer, A. C. Macro- and Microphase Separated Protein-Polyelectrolyte Complexes: Design Parameters and Current Progress. Polymers. 11 (4), 578 (2019).
  14. Juliano, R. L. The delivery of therapeutic oligonucleotides. Nucleic Acids Research. 44 (14), 6518-6548 (2016).
  15. Kanasty, R., Dorkin, J. R., Vegas, A., Anderson, D. Delivery materials for siRNA therapeutics. Nature Materials. 12 (11), 967-977 (2013).
  16. Lorenzer, C., Dirin, M., Winkler, A. M., Baumann, V., Winkler, J. Going beyond the liver: progress and challenges of targeted delivery of siRNA therapeutics. Journal of Controlled Release. 203, 1-15 (2015).
  17. Allen, T. M., Cullis, P. R. Liposomal drug delivery systems: from concept to clinical applications. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (1), 36-48 (2013).
  18. Li, W., Szoka, F. C. Lipid-based nanoparticles for nucleic acid delivery. Pharmaceutical Research. 24 (3), 438-449 (2007).
  19. Miyata, K., Nishiyama, N., Kataoka, K. Rational design of smart supramolecular assemblies for gene delivery: chemical challenges in the creation of artificial viruses. Chemical Society Reviews. 41 (7), 2562-2574 (2012).
  20. Oishi, M., Nagasaki, Y., Itaka, K., Nishiyama, N., Kataoka, K. Lactosylated poly(ethylene glycol)-siRNA conjugate through acid-labile ss-thiopropionate linkage to construct pH-sensitive polyion complex micelles achieving enhanced gene silencing in hepatoma cells. Journal of the American Chemical Society. 127 (6), 1624-1625 (2005).
  21. Christie, R. J., et al. Targeted polymeric micelles for siRNA treatment of experimental cancer by intravenous injection. ACS Nano. 6 (6), 5174-5189 (2012).
  22. Kuo, C. H., et al. Inhibition of atherosclerosis-promoting microRNAs via targeted polyelectrolyte complex micelles. Journal of Materials Chemistry B. 2 (46), 8142-8153 (2014).
  23. Ge, Z., et al. Targeted gene delivery by polyplex micelles with crowded PEG palisade and cRGD moiety for systemic treatment of pancreatic tumors. Biomaterials. 35 (10), 3416-3426 (2014).
  24. Van Bruggen, C., Hexum, J. K., Tan, Z., Dalai, R. J., Reineke, T. M. Nonviral Gene Delivery with Cationic Glycopolymers. Accounts of Chemical Research. 52 (5), 1347-1358 (2019).
  25. Hayashi, K., et al. Influence of RNA Strand Rigidity on Polyion Complex Formation with Block Catiomers. Macromolecular Rapid Communications. 37 (6), 486-493 (2016).
  26. Marras, A. E., Vieregg, J. R., Ting, J. M., Rubien, J. D., Tirrell, M. V. Polyelectrolyte Complexation of Oligonucleotides by Charged Hydrophobic-Neutral Hydrophilic Block Copolymers. Polymers. 11 (1), 83 (2019).
  27. Phillips, H. R., et al. Glycopolycation-DNA Polyplex Formulation N/P Ratio Affects Stability, Hemocompatibility, and in Vivo Biodistribution. Biomacromolecules. 20 (4), 1530-1544 (2019).
  28. Ting, J. M., Wu, H., Herzog-Arbeitman, A., Srivastava, S., Tirrell, M. V. Synthesis and Assembly of Designer Styrenic Diblock Polyelectrolytes. ACS Macro Letters. 7 (6), 726-733 (2018).
  29. Zadeh, J. N., et al. NUPACK: Analysis and design of nucleic acid systems. Journal of Computational Chemistry. 32 (1), 170-173 (2011).
  30. Santa Lucia, J. A unified view of polymer, dumbbell, and oligonucleotide DNA nearest-neighbor thermodynamics. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (4), 1460-1465 (1998).
  31. Xia, T., et al. Thermodynamic parameters for an expanded nearest-neighbor model for formation of RNA duplexes with Watson-Crick base pairs. Biochemistry. 37 (42), 14719-14735 (1998).
  32. Orthaber, D., Bergmann, A., Glatter, O. SAXS experiments on absolute scale with Kratky systems using water as a secondary standard. Journal of Applied Crystallography. 33 (2), 218-225 (2000).
  33. Srivastava, S., et al. Gel phase formation in dilute triblock copolyelectrolyte complexes. Nature Communications. 8, 14131 (2017).
  34. Lindhoud, S., et al. Salt-induced disintegration of lysozyme-containing polyelectrolyte complex micelles. Langmuir. 25 (19), 11425-11430 (2009).
  35. Lindhoud, S., de Vries, R., Schweins, R., Stuart, M. A. C., Norde, W. Salt-induced release of lipase from polyelectrolyte complex micelles. Soft Matter. 5 (1), 242-250 (2009).
  36. Ilavsky, J., Jemian, P. R. Irena: tool suite for modeling and analysis of small-angle scattering. Journal of Applied Crystallography. 42 (2), 347-353 (2009).
  37. Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T. . Molecular Cloning: a Laboratory Manual. , (1989).
  38. Jakeš, J. Regularized positive exponential sum (REPES) program-A way of inverting laplace transform data obtained by dynamic light scattering. Collection of Czechoslovak Chemical Communications. 60 (11), 1781-1797 (1995).
  39. Schillen, K., Brown, W., Johnsen, R. M. Micellar Sphere-to-Rod Transition in an Aqueous Triblock Copolymer System – a Dynamic Light-Scattering Study of Translational and Rotational Diffusion. Macromolecules. 27 (17), 4825-4832 (1994).
  40. Provencher, S. W. Contin – a General-Purpose Constrained Regularization Program for Inverting Noisy Linear Algebraic and Integral-Equations. Computer Physics Communications. 27 (3), 229-242 (1982).
  41. Provencher, S. W. A Constrained Regularization Method for Inverting Data Represented by Linear Algebraic or Integral-Equations. Computer Physics Communications. 27 (3), 213-227 (1982).
  42. Sarachan, K. L., Curtis, J. E., Krueger, S. Small-angle scattering contrast calculator for protein and nucleic acid complexes in solution. Journal of Applied Crystallography. 46 (6), 1889-1893 (2013).
  43. Beaucage, G. Approximations leading to a unified exponential power-law approach to small-angle scattering. Journal of Applied Crystallography. 28 (6), 717-728 (1995).
  44. Marras, A. E., Vieregg, J. R., Ting, J. M., Rubien, J. D., Tirrell, M. V. . Materials Data Facility. , (2018).
  45. Modena, M. M., Rühle, B., Burg, T. P., Wuttke, S. Nanoparticle Characterization: What to Measure. Advanced Materials. , (2019).
  46. Mourdikoudis, S., Pallares, R. M., Thanh, N. T. K. Characterization techniques for nanoparticles: comparison and complementarity upon studying nanoparticle properties. Nanoscale. 10 (27), 12871-12934 (2018).

Play Video

Cite This Article
Marras, A. E., Vieregg, J. R., Tirrell, M. V. Assembly and Characterization of Polyelectrolyte Complex Micelles. J. Vis. Exp. (157), e60894, doi:10.3791/60894 (2020).

View Video