Целью этого протокола является непосредственное манипулирование рецепторами вентральной тегментальной области для изучения их вклада в субсекундное высвобождение дофамина.
Высвобождение фазового дофамина (DA) из вентральной тегментальной области (VTA) в прилежащее ядро играет ключевую роль в обработке вознаграждения и обучении с подкреплением. Понимание того, как разнообразные нейронные входы в VTA контролируют фазовое высвобождение DA, может обеспечить лучшую картину схемы, которая контролирует обработку вознаграждения и обучение с подкреплением. Здесь мы описываем метод, который сочетает внутри-VTA канюли инфузии фармакологических агонистов и антагонистов со стимулирующим фазовым высвобождением DA (комбинированная инфузия и стимуляция, или CIS), измеренным с помощью циклической вольтамметрии in vivo с быстрым сканированием (FSCV). Используя CIS-FSCV у анестезируемых крыс, фазовый ответ DA может быть вызван электрическим стимулированием VTA биполярным электродом, оснащенным канюлей, при записи в ядре прилежащего ядра. Фармакологические агонисты или антагонисты могут вводиться непосредственно в место стимуляции для исследования роли специфических рецепторов VTA в стимулировании фазового высвобождения DA. Основным преимуществом CIS-FSCV является то, что функция рецептора VTA может быть изучена in vivo, основываясь на исследованиях in vitro.
Высвобождение фазового дофамина (DA) из вентральной тегментальной области (VTA) в прилежащее ядро (NAc) играет жизненно важную роль в поведении, связанном с вознаграждением. Нейроны VTA DA переключаются с тонического возбуждения (3-8 Гц) на взрывоподобное возбуждение (>14Гц) 1,которое производит фазовое высвобождение DA в NAc. VTA экспрессирует различные соматодендритические рецепторы, которые хорошо расположены для управления переключением с тоника на разрывную стрельбу2,3,4,5. Определение того, какие из этих рецепторов и их соответствующие входы контролируют фазовое высвобождение DA, углубит наше понимание того, как организована схема, связанная с вознаграждением. Целью методики, описанной здесь, комбинированной инфузии и стимуляции с циклической вольтамметрией быстрого сканирования (CIS-FSCV), является быстрая и надежная оценка функциональности рецепторов VTA в управлении фазовым высвобождением DA.
Термин комбинированная инфузия и стимуляция (CIS) относится к фармакологическому манипулированию рецепторами на группе нейронов (здесь VTA) и стимулированию этих нейронов к изучению функции рецептора. У анестезированной крысы мы электрически стимулируем VTA вызывать большой фазовый сигнал DA (1-2 мкМ) в ядре NAc, измеренный с помощью циклической вольтамметрии быстрого сканирования (FSCV). Инфузии фармакологических препаратов (т.е. агонистов/антагонистов рецепторов) в месте стимуляции могут быть использованы для измерения функции рецепторов VTA путем наблюдения за последующим изменением вызванного фазового высвобождения DA. FSCV – это электрохимический подход, который имеет как высокое пространственное (50-100 мкм), так и временное (10 Гц) разрешение и хорошо подходит для измерения связанных с вознаграждением фазовых событий DA6,7. Это разрешение лучше, чем другие нейрохимические измерения in vivo, такие как микродиализ. Таким образом, в совокупности CIS-FSCV хорошо подходит для оценки регуляции рецепторов VTA фазового высвобождения дофамина.
Одним из распространенных способов исследования функции рецептора VTA является использование комбинации электрофизиологических подходов, которые решают, как эти рецепторы изменяют скорость срабатывания нейронов1,8. Эти исследования очень ценны для понимания того, какие рецепторы участвуют в управлении DA при активации. Тем не менее, эти исследования могут только предположить, что может произойти вниз по течению на терминале аксона (то есть высвобождение нейротрансмиттера). CIS-FSCV основывается на этих электрофизиологических исследованиях, отвечая, как выход VTA-выстрела, фазового высвобождения DA, регулируется рецепторами, расположенными на дендритах VTA и клеточных телах. Таким образом, CIS-FSCV хорошо подходит для развития этих электрофизиологических исследований. В качестве примера, активация никотиновых рецепторов может индуцировать всплеск-возбуждение в VTA9,а CIS-FSCV у анестезированной крысы был использован, чтобы показать, что активация никотинового ацетилхолинового рецептора (nAChR) в VTA также контролирует фазовое высвобождение DA в NAc10,11.
Механистическое исследование фазовой регуляции DA также обычно изучается с использованием срезовых препаратов наряду с применением лекарств в ванне. Эти исследования часто фокусируются на пресинаптической регуляции фазового высвобождения DA из дофаминовых терминалей, поскольку клеточные тела часто удаляются из среза12. Эти препараты ценны для изучения влияния пресинаптических рецепторов на дофаминовые терминали, тогда как CIS-FSCV лучше подходит для изучения влияния соматодендритических рецепторов на дофаминовые нейроны, а также пресинаптических входов в VTA. Это различие важно, потому что активация соматодендритных рецепторов в VTA может иметь другой эффект, чем активация пресинаптического рецептора NAc. Действительно, блокирование дофаминергических пресинаптических nAChRs в NAc может повысить высвобождение фазового дофамина во время выстрела13,тогда как обратное верно при VTA somatodendritc nAChRs10,11.
CIS-FSCV является идеальным подходом для изучения способности рецепторов VTA регулировать фазовое высвобождение DA. Важно отметить, что этот подход может быть выполнен на неповрежденной крысе, либо обезболенной, либо свободно движущейся. Этот подход подходит для острых исследований, для изучения функции рецептора в его исходном состоянии10,14, а также для долгосрочных исследований, которые могут оценить функциональные изменения в рецепторе после воздействия препарата или поведенческих манипуляций11,15.
CIS-FSCV предоставляет уникальную возможность исследовать механизмы рецепторов VTA, лежащие в основе фазового высвобождения DA. Есть два критических шага для обеспечения правильной записи. Во-первых, должна быть достигнута стабильная базовая запись с небольшим дрейфом в вызванном сигнале D…
The authors have nothing to disclose.
Работа поддерживалась Элизабеттаунским колледжем (R.J.W, M.L. и L.M.), стипендией NSF Graduate Fellowship (R.J.W.) и Йельской школой медицины (N.A.).
Electrode Filling Solution/Supplies | |||
Micropipette | World Precision Instruments | MF286-5 (28 gauge) | |
Potassium Acetate | Sigma | 236497-100G | |
Potassium Chloride | Sigma | P3911-25G | |
Electrode Supplies | |||
Carbon fiber | Thornel | T650 | |
Electrode puller | Narishige International | PE-22 | Note: horizontal pullers can be used as well |
Glass capillary | A-M systems | 626000 | |
Insulated wires for electrodes | Weico Wire and Cable Incorporated | UL 1423 | Length; 10 cm; diameter,0.4mm; must get custom made; insulated material should cover 5 cm of the wire |
Light Microscope (for viewing and cutting electrode) | Fischer Scientific | M3700 | |
Pin | Phoenix Enterprises | HWS1646 | To be soldered onto the insuled electrode wire and reference electrode; connects to headstage |
Putty | Alcolin | 23922-1003 | Used to place electrode on while cutting the carbon fiber |
Scalpal Blade | World Precision Instruments | 500239 | For cutting carbon fiber to the apprpriate length |
Silver Wire | Sigma | 327026-4G | |
FSCV Hardware/Software | |||
Faraday Cage | U-Line | H-3618 (36" x 24" x 42") | |
Potentiostat | Univ. of N. Carolina, Electronics Facility | ||
Stimulating electrode | PlasticsOne | MS303/2-A/SPC | when ordering, request a 22 mm cut below pedestal |
TarHeel HDCV Software | University of North Carolina-Chapel Hill | – | https://chem.unc.edu/critcl-main/criticl-electronics/criticl-electronics-hardware/ for ordering information |
UEI breakout box | Univ. of N. Carolina, Electronics Facility | https://chem.unc.edu/critcl-main/criticl-electronics/criticl-electronics-hardware/ for ordering information | |
UEI power supply | Univ. of N. Carolina, Electronics Facility | https://chem.unc.edu/critcl-main/criticl-electronics/criticl-electronics-hardware/ for ordering information | |
Stimulator Hardware | |||
Neurolog stimulus isolator | Digitimer Ltd. | DS4 | Neurolog 800A |
Infusion/Stimulation Supplies | |||
Infusion Pump | New Era Syringe Pump | NE-300 | |
Internal Cannula | PlasticsOne | C315I/SPC INTERNAL 33GA | |
Microliter Syringe | Hamilton | 80308 | |
Tubing | PlasticsOne | C313CT/ PKG TUBING 023 X 050 PE50 | |
Surgical Supplies | |||
Cannula Holder | Kopf Instruments | 1776 P-1 | |
Cotton Tip Applicators | Vitality Medical | 806 | |
Electrode Holder | Kopf Instruments | 1770 | |
Heating Pad | Kent Scientific | RT-0501 | |
Povidone Iodine | Vitality Medical | 29906-004 | |
Screws | Stoelting | Bone Anchor Screws/Pkg.of 100 | 1.59 mm O.D., 3.2 mm long |
Silver wire reference with AgCl | InVivo Metric | E255A | |
Square Gauze | Vitality Medical | 441408 | |
Stereotax | Kopf Instruments | Model 902 (Dual Arm Bar) | |
Histological Supplies | |||
Formulin | Sigma | 1004960700 | |
Power supply | BK Precision | 9110 | |
Sucrose | Sigma | 80497 | |
Tungsten microelectrode | MicroProbes | WE30030.5A3 | |
Drugs for infusions | |||
((2R)-amino-5-phosphonovaleric acid | Sigma Aldrich | A5282 | |
N-methyl-D-aspartate | Sigma Aldrich | M3262 | |
Mecamylamine hydrochloride (M9020-5mg) | Sigma Aldrich | M9020 | |
Scopolamine hydrobromide (S0929-1g) | Sigma Aldrich | S0929 |