Описываем метод индуцирования волосатых корней агробактериями ризогенов-опосредованногопреобразования в тартарной гречке(Fagopyrum tataricum). Это может быть использовано для исследования функций генов и производства вторичных метаболитов в тартарной гречихе, быть принятым для любой генетической трансформации, или использоваться для других лекарственных растений после улучшения.
Тартарная гречка (ТБ) –Фагопирум татарикум (L.) Gaertn) обладает различными биологическими и фармакологическими видами деятельности, поскольку содержит обильные вторичные метаболиты, такие как флавоноиды, особенно рутетин. Агробактерии rhizogenes постепенно используются во всем мире, чтобы вызвать волосатые корни в лекарственных растений для исследования функций генов и повышения урожайности вторичных метаболитов. В этом исследовании мы описали подробный метод для создания A. rhizogenes-опосредованноговолосатые корни при туберкулезе. Cotyledons и hypocotyledonary соты на 7-10 дней были выбраны в качестве explants и инфицированных A. rhizogenes проведения бинарного вектора, который индуцированных приключений волосатые корни, которые появились после 1 недели. Генерируемая трансформация волосатых корней была определена на основе морфологии, отбора резистентности (канамицин) и экспрессии генов репортера (зеленый флуоресцентный белок). Впоследствии, преобразованные волосатые корни были самораспространены по мере необходимости. Между тем, миелобластоз (MYB) транскрипционный фактор, FtMYB116, был преобразован в геном тб с помощью A. rhizogenes-опосредованноговолосатые корни для проверки роли FtMYB116 в синтезации флавоноидов. Результаты показали, что экспрессия генов, связанных с флавоноидами, и урожайность флавоноидных соединений (рутина и кверцетина) были значительно (p qlt; 0.01) способствовали FtMYB116, что свидетельствует о том, что A. rhizogenes-опосредованныеволосатые корни могут быть использованы в качестве эффективного альтернативного инструмента для исследования функций генов и производства вторичных метаболитов. Подробный пошаговый протокол, описанный в данном исследовании для генерации волосатых корней, может быть принят для любой генетической трансформации или других лекарственных растений после корректировки.
Тартарная гречка (ТБ)(Fagopyrum tataricum (L.) Gaertn) является одним из видов дикотипидона, относящихся к роду Фагопирум и семейство Polygonaceae1. Как вид гомологионной пищи китайской медицины, ТБ получает значительный интерес благодаря своему характерю химического состава и разнообразной биоактивности против болезней. Туберкулез в основном богат углеводами, белками, витаминами и каротиноидами, а также полифенолами, такими как фенольные кислоты и флавоноиды1. Продемонстрировано различные биологические и фармакологические свойства флавоноидов, в том числе антиоксидативные, антигипертензивные2и противовоспалительные, а также противораковые и антидиабетическиесвойства.
Agrobacterium rhizogenes является бактериейпочвы,которая способствует развитию волосатых корнеплодов в нескольких высших растений, особенно dicotyledons, путем заражения раны сайтов4,5. Этот процесс инициируется передачей T-ДНК в корневой плазмид(Ri) плазмид 5,,6 и обычно сопровождается интеграцией и экспрессией экзогенного гена из плазмида Ri и последующими шагами генерации волосатого фенотипа корня7. A.rhizogenes-опосредованные трансгенные волосатые корни, как мощный инструмент в области биотехнологии растений, наиболее широко используются благодаря их стабильной и высокой производительности и легкому получению в короткий период. Кроме того, волосатые корни, индуцированные A. rhizogenes эффективно отличаются их плагиотропного развития корня и высоко ветвления роста в гормон-свободной среде8. Они могут быть использованы в нескольких областях исследований, в том числе искусственного производства семян, исследования корневых узелков, а также при изучении взаимодействия с другими организмами, такими как микоризные грибы, нематод, и корнеплоды7,9. Кроме того, волосатые культуры преобразования корней широко используются в качестве экспериментальной системы для исследования биохимических путей и химической сигнализации и для производства вторичных метаболитов растений, которые используются в качестве фармацевтических препаратов, косметики и пищевых добавок8,10. Ценные вторичные метаболиты, в том числе индоле алкалоиды, акониты, тропановые алкалоиды, терпеноиды и флавоноиды, синтезированные в волосатых корнях дикого типа, были исследованы в течение нескольких десятилетий у многочисленных2,видов, таких как ginsenoside в panax ginseng11, кумарин в Am majmius12, и phenolic compounds.
Волосатые корни были произведены с использованием A. rhizogenes в 79 видов растений из 27 семейства14. Например, A. rhizogenes-опосредованныеволосатые корня преобразование было сообщено в сое15,16, Сальвиа17, Пламбаго Indica18, Lotus japonicus19, и цикорий (Cichorium intybus Л.) 20. ТБ волосатые преобразования корня также были исследованы2. Немногие подробные протоколы доступны в отношении развития волосатые корни при посредничестве A. rhizogenes либо проведение бинарный вектор или нет. Например, Sandra et al.21 внедрили метод производства трансгенных картофельных волосатых корней, выдержанный в побегах дикого типа. Полностью развитые волосатые корни могут быть визуализированы через 5-6 недель после инъекции А. ризогенов, несущих ген gus reporter в стволовые межузлы картофельных растений. Другое исследование также сообщило трансгенной волосатой корневой системы, индуцированной A. rhizogenes укрывательство гена репортера gusA в джуте (Corchorus capsularis L.) 22. Кроме того, Supaart et al.23 получили трансгенные табачные волосатые корни с использованием A. rhizogenes, преобразованного с помощью экспрессионного вектора pBI121, несущего ген синтазы 11-тетрагидроканнабиноловой кислоты (ТГКА) для производства ТГКА.
Однако поэтапный процесс эффективного поколения трансформации волосатых корней, особенно при тб-тбе, был относительно менее продемонстрирован. В этом исследовании, мы описали подробный протокол с использованием A. rhizogenes проведения репортер гена (GFP), селективный маркер (Кан), и ген интереса (b4, определены из нашей группы, но неопубликованный ген из основных селип-петля-сhelix (bHLH) семьи) для создания волосатых корней генетической трансформации при туберкулезе. Эксперимент длился 5-6 недель, от прививки семян до генерации волосатых корней, включая препарат эксплантации, инфекцию, сокультивирование, субкультирование и последующее распространение. Кроме того, A. rhizogenes, содержащий бинарную плазмиду, несущую тб-трансген транскрипционного фактора миелобластоза 116 (FtMYB116),был использован для определения того, может ли FtMYB116 способствовать накоплению флавоноидов, особенно рутения, в туберкулезе на гене и метаболическом уровне через тб-волосатую трансформацию корня. FtMYB116, который является светоиндуцированным транскрипционным фактором, регулирует синтез рутения при различных условиях света5. Синкон синтаза (CHS), флаванон-3-гидроксилаза (F3H),флавоноид-3′-гидроксилаза (F3‘H), и флавонол синтаза (FLS)24 являются ключевыми ферментами, участвующими в метаболический путь биосинтеза рутина. Таким образом, это исследование демонстрирует переэкспрессию FtMYB116 в ТБ волосатые корни и экспрессия ключевых генов фермента, а также содержание рутения и других флавоноидов, таких как кверцетин.
Туберкулез был использован в нескольких исследованиях, связанных со вторичными метаболитами на генетическом и метаболических уровнях1,,2,,5,,27,,28. Волосатые корневой культуры, как уникальный источни…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана Фундаментальными научно-исследовательскими фондами для Центральных научно-исследовательских институтов социального обеспечения (XKT17002).
2*Taq PCR MasterMix | Aidlab, China | PC0901 | |
Agar powder | Solarbio Life Science, Beijing, China | A8190 | |
Applied Biosystems 2720 thermo cycler | ThermoFisher Scientific, US | A37834 | |
AS | Solarbio Life Science, Beijing, China | A8110 | Diluted in DMSO, 100 mM |
binary vectors | ThermoFisher Scientific (invitrogen), US | / | pK7WG2D/pK7GWIWG2D (II) |
Cefotaxime,sodium | Solarbio Life Science, Beijing, China | C8240 | Diluted in Water, 200 mg/mL |
CF15RXII high-speed micro | Hitachi, Japan | No. 90560201 | |
Diposable Petri-dish | Guanghua medical instrument factory, Yangzhou, China | / | |
DYY-6C electrophoresis apparatus | Bjliuyi, Beijing China | ECS002301 | |
EASYspin Plus Plant RNA Kit | Aidlab, China | RN38 | |
ELGA purelab untra bioscience | ELGA LabWater, UK | 82665JK1819 | |
Epoch Microplate Spectrophotometer | biotek, US | / | |
Gateway BP/LR reaction enzyme | ThermoFisher Scientific (invitrogen), US | 11789100/11791110 | |
HYG-C multiple-function shaker | Suzhou Peiying Experimental Equipment Co., Ltd. China | / | |
Kan | Solarbio Life Science, Beijing, China | K8020 | Diluted in Water, 100 mg/mL |
MLS-3750 Autoclave sterilizer | Sanyo, Japan | / | |
MS salts with vitamins | Solarbio Life Science, Beijing, China | M8521 | |
NaCl | Solarbio Life Science, Beijing, China | S8210 | |
Other chemicals unstated | Beijing Chemical Works, China | ethanol, mercury bichloride, etc. | |
PHS-3C pH meter | Shanghai INESA Scientific Instrument Co., Ltd, China | a008 | |
Plant Genomic DNA Kit | TIANGEN BIOTECH (BEIJING) CO., LTD | DP305 | |
Rifampin | Solarbio Life Science, Beijing, China | R8010 | Diluted in DMSO, 50 mg/mL |
Spectinomycin | Solarbio Life Science, Beijing, China | S8040 | Diluted in Water, 100 mg/mL |
Sucrose | Solarbio Life Science, Beijing, China | S8270 | |
Trans2K DNA Marker | TransGen Biotech, Beijing, China | BM101-01 | |
Tryptone | Solarbio Life Science, Beijing, China | LP0042 | |
Whatman diameter 9 cm Filter paper | Hangzhou wohua Filter Paper Co., Ltd | / | |
Yeast Extract powder | Solarbio Life Science, Beijing, China | LP0021 |