Summary

Индуцирование волосатых корней агробактериями rhizogenes- Посредника Преобразование в тартарной гречихе(Фагопырум татарикум)

Published: March 11, 2020
doi:

Summary

Описываем метод индуцирования волосатых корней агробактериями ризогенов-опосредованногопреобразования в тартарной гречке(Fagopyrum tataricum). Это может быть использовано для исследования функций генов и производства вторичных метаболитов в тартарной гречихе, быть принятым для любой генетической трансформации, или использоваться для других лекарственных растений после улучшения.

Abstract

Тартарная гречка (ТБ) –Фагопирум татарикум (L.) Gaertn) обладает различными биологическими и фармакологическими видами деятельности, поскольку содержит обильные вторичные метаболиты, такие как флавоноиды, особенно рутетин. Агробактерии rhizogenes постепенно используются во всем мире, чтобы вызвать волосатые корни в лекарственных растений для исследования функций генов и повышения урожайности вторичных метаболитов. В этом исследовании мы описали подробный метод для создания A. rhizogenes-опосредованноговолосатые корни при туберкулезе. Cotyledons и hypocotyledonary соты на 7-10 дней были выбраны в качестве explants и инфицированных A. rhizogenes проведения бинарного вектора, который индуцированных приключений волосатые корни, которые появились после 1 недели. Генерируемая трансформация волосатых корней была определена на основе морфологии, отбора резистентности (канамицин) и экспрессии генов репортера (зеленый флуоресцентный белок). Впоследствии, преобразованные волосатые корни были самораспространены по мере необходимости. Между тем, миелобластоз (MYB) транскрипционный фактор, FtMYB116, был преобразован в геном тб с помощью A. rhizogenes-опосредованноговолосатые корни для проверки роли FtMYB116 в синтезации флавоноидов. Результаты показали, что экспрессия генов, связанных с флавоноидами, и урожайность флавоноидных соединений (рутина и кверцетина) были значительно (p qlt; 0.01) способствовали FtMYB116, что свидетельствует о том, что A. rhizogenes-опосредованныеволосатые корни могут быть использованы в качестве эффективного альтернативного инструмента для исследования функций генов и производства вторичных метаболитов. Подробный пошаговый протокол, описанный в данном исследовании для генерации волосатых корней, может быть принят для любой генетической трансформации или других лекарственных растений после корректировки.

Introduction

Тартарная гречка (ТБ)(Fagopyrum tataricum (L.) Gaertn) является одним из видов дикотипидона, относящихся к роду Фагопирум и семейство Polygonaceae1. Как вид гомологионной пищи китайской медицины, ТБ получает значительный интерес благодаря своему характерю химического состава и разнообразной биоактивности против болезней. Туберкулез в основном богат углеводами, белками, витаминами и каротиноидами, а также полифенолами, такими как фенольные кислоты и флавоноиды1. Продемонстрировано различные биологические и фармакологические свойства флавоноидов, в том числе антиоксидативные, антигипертензивные2и противовоспалительные, а также противораковые и антидиабетическиесвойства.

Agrobacterium rhizogenes является бактериейпочвы,которая способствует развитию волосатых корнеплодов в нескольких высших растений, особенно dicotyledons, путем заражения раны сайтов4,5. Этот процесс инициируется передачей T-ДНК в корневой плазмид(Ri) плазмид 5,,6 и обычно сопровождается интеграцией и экспрессией экзогенного гена из плазмида Ri и последующими шагами генерации волосатого фенотипа корня7. A.rhizogenes-опосредованные трансгенные волосатые корни, как мощный инструмент в области биотехнологии растений, наиболее широко используются благодаря их стабильной и высокой производительности и легкому получению в короткий период. Кроме того, волосатые корни, индуцированные A. rhizogenes эффективно отличаются их плагиотропного развития корня и высоко ветвления роста в гормон-свободной среде8. Они могут быть использованы в нескольких областях исследований, в том числе искусственного производства семян, исследования корневых узелков, а также при изучении взаимодействия с другими организмами, такими как микоризные грибы, нематод, и корнеплоды7,9. Кроме того, волосатые культуры преобразования корней широко используются в качестве экспериментальной системы для исследования биохимических путей и химической сигнализации и для производства вторичных метаболитов растений, которые используются в качестве фармацевтических препаратов, косметики и пищевых добавок8,10. Ценные вторичные метаболиты, в том числе индоле алкалоиды, акониты, тропановые алкалоиды, терпеноиды и флавоноиды, синтезированные в волосатых корнях дикого типа, были исследованы в течение нескольких десятилетий у многочисленных2,видов, таких как ginsenoside в panax ginseng11, кумарин в Am majmius12, и phenolic compounds.

Волосатые корни были произведены с использованием A. rhizogenes в 79 видов растений из 27 семейства14. Например, A. rhizogenes-опосредованныеволосатые корня преобразование было сообщено в сое15,16, Сальвиа17, Пламбаго Indica18, Lotus japonicus19, и цикорий (Cichorium intybus Л.) 20. ТБ волосатые преобразования корня также были исследованы2. Немногие подробные протоколы доступны в отношении развития волосатые корни при посредничестве A. rhizogenes либо проведение бинарный вектор или нет. Например, Sandra et al.21 внедрили метод производства трансгенных картофельных волосатых корней, выдержанный в побегах дикого типа. Полностью развитые волосатые корни могут быть визуализированы через 5-6 недель после инъекции А. ризогенов, несущих ген gus reporter в стволовые межузлы картофельных растений. Другое исследование также сообщило трансгенной волосатой корневой системы, индуцированной A. rhizogenes укрывательство гена репортера gusA в джуте (Corchorus capsularis L.) 22. Кроме того, Supaart et al.23 получили трансгенные табачные волосатые корни с использованием A. rhizogenes, преобразованного с помощью экспрессионного вектора pBI121, несущего ген синтазы 11-тетрагидроканнабиноловой кислоты (ТГКА) для производства ТГКА.

Однако поэтапный процесс эффективного поколения трансформации волосатых корней, особенно при тб-тбе, был относительно менее продемонстрирован. В этом исследовании, мы описали подробный протокол с использованием A. rhizogenes проведения репортер гена (GFP), селективный маркер (Кан), и ген интереса (b4, определены из нашей группы, но неопубликованный ген из основных селип-петля-сhelix (bHLH) семьи) для создания волосатых корней генетической трансформации при туберкулезе. Эксперимент длился 5-6 недель, от прививки семян до генерации волосатых корней, включая препарат эксплантации, инфекцию, сокультивирование, субкультирование и последующее распространение. Кроме того, A. rhizogenes, содержащий бинарную плазмиду, несущую тб-трансген транскрипционного фактора миелобластоза 116 (FtMYB116),был использован для определения того, может ли FtMYB116 способствовать накоплению флавоноидов, особенно рутения, в туберкулезе на гене и метаболическом уровне через тб-волосатую трансформацию корня. FtMYB116, который является светоиндуцированным транскрипционным фактором, регулирует синтез рутения при различных условиях света5. Синкон синтаза (CHS), флаванон-3-гидроксилаза (F3H),флавоноид-3′-гидроксилаза (F3H), и флавонол синтаза (FLS)24 являются ключевыми ферментами, участвующими в метаболический путь биосинтеза рутина. Таким образом, это исследование демонстрирует переэкспрессию FtMYB116 в ТБ волосатые корни и экспрессия ключевых генов фермента, а также содержание рутения и других флавоноидов, таких как кверцетин.

Protocol

Туберкулез, используемый в этом исследовании, был назван BT18, который возник из породы “Цзиньцзяо No 2”, культивируемой Исследовательским центром малого разного зерна Академии сельскохозяйственной науки Шаньси. Основные этапы этого протокола иллюстрируются на рисунке 1.</…

Representative Results

Agrobacterium rhizogenes-опосредованный ТБ волосатые корня преобразованияЭто исследование описывает пошаговое протокол, который был создан для получения генетически преобразованных волосатых корней с использованием A. rhizogenes. Потребовалось около 5-6 недель от прививки семян …

Discussion

Туберкулез был использован в нескольких исследованиях, связанных со вторичными метаболитами на генетическом и метаболических уровнях1,,2,,5,,27,,28. Волосатые корневой культуры, как уникальный источни…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Фундаментальными научно-исследовательскими фондами для Центральных научно-исследовательских институтов социального обеспечения (XKT17002).

Materials

2*Taq PCR MasterMix Aidlab, China PC0901
Agar powder Solarbio Life Science, Beijing, China A8190
Applied Biosystems 2720 thermo cycler ThermoFisher Scientific, US A37834
AS Solarbio Life Science, Beijing, China A8110 Diluted in DMSO, 100 mM
binary vectors ThermoFisher Scientific (invitrogen), US / pK7WG2D/pK7GWIWG2D (II)
Cefotaxime,sodium Solarbio Life Science, Beijing, China C8240 Diluted in Water, 200 mg/mL
CF15RXII high-speed micro Hitachi, Japan No. 90560201
Diposable Petri-dish Guanghua medical instrument factory, Yangzhou, China /
DYY-6C electrophoresis apparatus Bjliuyi, Beijing China ECS002301
EASYspin Plus Plant RNA Kit Aidlab, China RN38
ELGA purelab untra bioscience ELGA LabWater, UK 82665JK1819
Epoch Microplate Spectrophotometer biotek, US /
Gateway BP/LR reaction enzyme ThermoFisher Scientific (invitrogen), US 11789100/11791110
HYG-C multiple-function shaker Suzhou Peiying Experimental Equipment Co., Ltd. China /
Kan Solarbio Life Science, Beijing, China K8020 Diluted in Water, 100 mg/mL
MLS-3750 Autoclave sterilizer Sanyo, Japan /
MS salts with vitamins Solarbio Life Science, Beijing, China M8521
NaCl Solarbio Life Science, Beijing, China S8210
Other chemicals unstated Beijing Chemical Works, China ethanol, mercury bichloride, etc.
PHS-3C pH meter Shanghai INESA Scientific Instrument Co., Ltd, China a008
Plant Genomic DNA Kit TIANGEN BIOTECH (BEIJING) CO., LTD DP305
Rifampin Solarbio Life Science, Beijing, China R8010 Diluted in DMSO, 50 mg/mL
Spectinomycin Solarbio Life Science, Beijing, China S8040 Diluted in Water, 100 mg/mL
Sucrose Solarbio Life Science, Beijing, China S8270
Trans2K DNA Marker TransGen Biotech, Beijing, China BM101-01
Tryptone Solarbio Life Science, Beijing, China LP0042
Whatman diameter 9 cm Filter paper Hangzhou wohua Filter Paper Co., Ltd /
Yeast Extract powder Solarbio Life Science, Beijing, China LP0021

References

  1. Fabjan, N., et al. Tartary Buckwheat ( Fagopyrum tataricum Gaertn .) as a Source of Dietary Rutin and Quercitrin. Agricultural and Food Chemistry. 51, 6452-6455 (2003).
  2. Kim, Y. K., et al. Production of Phenolic Compounds in Hairy Root Culture of Tartary Buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertn). Journal of Crop Science & Biotechnology. 12 (1), 53-57 (2009).
  3. Yao, Y., et al. D-chiro-inositol-enriched tartary buckwheat bran extract lowers the blood glucose level in KK-Ay mice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56 (21), 10027-10031 (2008).
  4. Giri, A., Narasu, M. L. Transgenic hairy roots. Biotechnology Advances. 18 (1), 1-22 (2000).
  5. Zhang, D., et al. The light-induced transcription factor FtMYB116 promotes accumulation of rutin in Fagopyrum tataricum. Plant, Cell & Environment. 42, (2018).
  6. Chilton, M. -. D., et al. Agrobacterium thizogenes inserts T-DNA into the genomes of the host plant root cells. Nature. 295 (4), 129 (1982).
  7. Guillon, S., Trémouillaux-Guiller, J., Kumar Pati, P., Gantet, P. Hairy Roots: a Powerful Tool for Plant Biotechnological Advances. Bioactive Molecules and Medicinal Plants. , 271-283 (2008).
  8. Srivastava, S., Srivastava, A. K. Hairy root culture for mass-production of high-value secondary metabolites. Critical Reviews in Biotechnology. 27 (1), 29-43 (2007).
  9. Veena, V., Taylor, C. G. Agrobacterium rhizogenes: Recent developments and promising applications. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 43 (5), 383-403 (2007).
  10. Ramachandra Rao, S., Ravishankar, G. A. Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology Advances. 20 (2), 101-153 (2002).
  11. Palazón, J., et al. Growth and Ginsenoside Production in Hairy Root Cultures of Panax ginseng using a Novel Bioreactor. Planta Med. 69 (04), 344-349 (2003).
  12. Staniszewska, I., Królicka, A., Maliński, E., Łojkowska, E., Szafranek, J. Elicitation of secondary metabolites in in vitro cultures of Ammi majus L. Enzyme and Microbial Technology. 33 (5), 565-568 (2003).
  13. Uddin, M. R., Li, X., Won, O. J., Park, S. U., Pyon, J. Y. Herbicidal activity of phenolic compounds from hairy root cultures of Fagopyrum tataricum. Weed Research. 52, 25-33 (2011).
  14. Christey, M. C., Braun, R. H. Production of hairy root cultures and transgenic plants by Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. Methods in Molecular Biology. 286, 47-60 (2005).
  15. Olhoft, P. M., et al. A novel Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation method of soybean [Glycine max (L.) Merrill] using primary-node explants from seedlings. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 43 (6), 536-549 (2007).
  16. Kereszt, A., et al. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of soybean to study root biology. Nature Protocols. 2 (4), (2007).
  17. Pistelli, L., et al. . Bio-Farms for Nutraceuticals: Functional Food and Safety Control by Biosensors. , (2010).
  18. Gangopadhyay, M., Sircar, D., Mitra, A., Bhattacharya, S. Hairy root culture of Plumbago indica as a potential source for plumbagin. Biologia Plantarum. 52 (3), 533-537 (2008).
  19. Okamoto, S., Yoro, E., T, S., K, M. Division Hairy Root Transformation in lotus Japonicus. Bio-Protocol. 3 (12), 14-17 (2013).
  20. Fathi, R., Mohebodini, M., Chamani, E. High-efficiency Agrobacterium rhizogenes-mediated genetic transformation in Cichorium intybus L. via removing macronutrients. Industrial Crops and Products. 128, 572-580 (2019).
  21. Fernández-piñán, S., et al. Transformation of Potato and the Promoter Activity of a Suberin Gene by GUS Staining. Journal Of Visualized Experiments. , e1 (2019).
  22. Chattopadhyay, T., Roy, S., Mitra, A., Maiti, M. K. Development of a transgenic hairy root system in jute (Corchorus capsularis L.) with gusA reporter gene through Agrobacterium rhizogenes mediated co-transformation. Plant Cell Reports. 30 (4), 485-493 (2011).
  23. Sirikantaramas, S., et al. The gene controlling marijuana psychoactivity. Molecular cloning and heterologous expression of Δ1-tetrahydrocannabinolic acid synthase from Cannabis sativa L. Journal of Biological Chemistry. 279 (38), 39767-39774 (2004).
  24. Zhou, M. L., et al. Characterization of Functional Genes in Buckwheat. Molecular Breeding and Nutritional Aspects of Buckwheat. , 327-331 (2016).
  25. Liang, C., et al. A Comparative Analysis of the Chloroplast Genomes of Four Salvia Medicinal Plants. Engineering. 5 (5), 907-915 (2019).
  26. Wang, J., Zhang, X., Yan, G., Zhou, Y., Zhang, K. Over-expression of the PaAP1 gene from sweet cherry (Prunus avium L.) causes early flowering in Arabidopsis thaliana. Journal of Plant Physiology. 170 (3), 315-320 (2013).
  27. Li, J., et al. Analysis of Flavonoid Metabolites in Buckwheat Leaves Using UPLC-ESI-MS/MS. Molecules. , (2019).
  28. Zhu, F. Chemical composition and health effects of Tartary buckwheat. Food Chemistry. 203, 231-245 (2016).
  29. Kaur, B., Malik, C. P. Hairy root culture -a unique source for metabolites production. Journal of Plant Science Research. 25 (2), 123-141 (2010).
  30. Thwe, A. A., et al. Metabolomic Analysis and Phenylpropanoid Biosynthesis in Hairy Root Culture of Tartary Buckwheat Cultivars. Plos One. 8 (6), (2013).
  31. Thwe, A. A., et al. Accumulation of Phenylpropanoids and Correlated Gene Expression in Hairy Roots of Tartary Buckwheat under Light and Dark Conditions. Applied Biochemistry and Biotechnology. 174 (7), 2537-2547 (2014).
  32. Zhang, K., et al. Jasmonate-responsive MYB factors spatially repress rutin biosynthesis in Fagopyrum tataricum. Journal of Experimental Botany. 69 (8), 1955-1966 (2018).
  33. Zhou, M., et al. FtSAD2 and FtJAZ1 regulate activity of the FtMYB11 transcription repressor of the phenylpropanoid pathway in Fagopyrum tataricum. New Phytologist. 216, (2017).
  34. Giri, A., Narasu, M. L. Transgenic hairy roots: Recent trends and applications. Biotechnology Advances. 18 (1), 1-22 (2000).
  35. Thwe, A., et al. Effect of different Agrobacterium rhizogenes strains on hairy root induction and phenylpropanoid biosynthesis in tartary buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertn). Frontiers in Microbiology. 7, 1-10 (2016).
  36. Cheng, Q., et al. RNA interference-mediated repression of SmCPS (copalyldiphosphate synthase) expression in hairy roots of Salvia miltiorrhiza causes a decrease of tanshinones and sheds light on the functional role of SmCPS. Biotechnology Letters. 36 (2), 363-369 (2014).
  37. Huang, X., et al. Efficient Rutin and Quercetin Biosynthesis through Flavonoids-Related Gene Expression in Fagopyrum tataricum Gaertn . Hairy Root Cultures with UV-B Irradiation. Frontiers In Plant Science. 7, 1-11 (2016).
  38. Godwin, I., Todd, G., Ford-lloyd, B., Newbury, H. J. The effects of acetosyringone and pH on Agrobacterium-mediated transformation vary according to plant species. Plant Cell Reports. 9, 671-675 (1991).
  39. Stachel, S. E., Messens, E., Van Montagiu, M., Zambryski, P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens. Nature. 318 (19), (1985).
  40. Bolton, G. W., Nester, E. W., Gordon, M. P. Plant Phenolic Compounds Induce Expression of the Agrobacterium tumefaciens loci needed for virulence. Science. 232 (10), 983-985 (1986).
  41. Ferri, M., et al. Chitosan treatment induces changes of protein expression profile and stilbene distribution in Vitis vinifera cell suspensions. Proteomics. 9 (3), 610-624 (2009).
  42. Bourgaud, F., Gravot, A., Milesi, S., Gontier, E. Production of plant secondary metabolites: a historical perspective. Plant Science. 161 (5), 839-851 (2001).
  43. Kumagai, H., Kouchi, H. Gene Silencing by Expression of Hairpin RNA in Lotus japonicus Roots and Root Nodules. Molecular Plant-Microbe Interactions. 16 (8), 663-668 (2003).
  44. Sunil Kumar, G. B., Ganapathi, T. R., Srinivas, L., Revathi, C. J., Bapat, V. A. Expression of hepatitis B surface antigen in potato hairy roots. Plant Science. 170 (5), 918-925 (2006).

Play Video

Cite This Article
Mi, Y., Zhu, Z., Qian, G., Li, Y., Meng, X., Xue, J., Chen, Q., Sun, W., Shi, Y. Inducing Hairy Roots by Agrobacterium rhizogenes-Mediated Transformation in Tartary Buckwheat (Fagopyrum tataricum). J. Vis. Exp. (157), e60828, doi:10.3791/60828 (2020).

View Video