Summary

アグロバクテリウム・リゾゲネスによる毛深い根を誘発する -タータルソバにおける媒介性形質転換(ファゴピラム・タタリカム)

Published: March 11, 2020
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Summary

我々は、アグロバクテリウム・リゾゲネスによって毛深い根を誘導する方法を記述する – 酒盤の媒介性形質転換(ファゴピラム・タタリカム)これは、タータリーそばにおける遺伝子機能および二次代謝産物の産生を調査するために使用され、任意の遺伝的形質転換に採用されるか、または改善後の他の薬用植物に使用することができる。

Abstract

酒類そば(TB)[ファゴピルラムタタサリカム(L.)ゲールトン]は、フラボノイド、特にルチンなどの二次代謝産物が豊富に含まれているため、様々な生物学的および薬理学的活性を有する。アグロバクテリウム・リゾゲネスは、徐々に遺伝子機能を調査し、二次代謝産物の収量を増加させるために薬用植物の毛深い根を誘導するために、世界的に使用されてきました。本研究では、結核におけるA.根茎遺伝子媒介性毛状根を生成する詳細な方法を説明した。7~10日のコチルドンと低コチルド軸を外植体として選び、バイナリベクターを持つA.根茎に感染し、1週間後に出現した出現性の毛状根を誘発した。生成された毛深い根形質転換は、形態、抵抗性選択(カナマイシン)、レポーター遺伝子発現(緑色蛍光タンパク質)に基づいて同定した。その後、変換された毛深い根は、必要に応じて自己増殖した。一方、骨髄芽細胞症(MYB)転写因子FtMYB116は、フラボノイドの合成におけるFtMYB116の役割を検証するために、A.根茎遺伝子媒介毛根を用いて結核ゲノムに変換された。その結果、フラボノイド関連遺伝子の発現とフラボノイド化合物(ルチンおよびケルセチン)の収量がFtMYB116によって有意に促進された(p<0.01)ことを示し、A.根茎介在毛根が遺伝子機能および二次代謝産物の産生を調査するための効果的な代替ツールとして使用できることを示した。毛深い根を生成するためのこの研究で説明されている詳細なステップバイステッププロトコルは、調整後に任意の遺伝的形質転換または他の薬用植物に採用することができる。

Introduction

酒類そば(TB)(ファゴピルム・タタリカム(L.)ゲールトン)は、ファゴピルム属及びファミリー・ポリゴンア科1に属するジコチルドンの一種である。中国医学の相同食品の一種として、結核は、その独特の化学組成と疾患に対する多様な生物活動のためにかなりの関心を受けています。TBは主に炭水化物、タンパク質、ビタミン、カロテノイド、フェノール酸およびフラボノイドなどのポリフェノール類に富んでいます1.抗酸化、抗高血圧2、および抗炎症ならびに抗癌および抗糖尿病特性を含むフラボノイドの様々な生物学的および薬理活性が実証されている3。

アグロバクテリウム・リゾゲネスは、創傷部位44,55に感染することにより、いくつかの高等植物、特にジコチルドンにおける毛深い根疾患の発症に寄与する土壌細菌である。このプロセスは、根誘起(Ri)プラスミド55、66におけるT-DNAの転写によって開始され、一般的には、Riプラスミドからの外因性遺伝子の統合および発現と毛深い根表現型7を生成するステップを伴う。A. 根茎遺伝子-媒介トランスジェニック毛根は、植物バイオテクノロジーの分野における強力なツールとして、短期間での安定した高い生産性と容易な入手のために最も広く使用されてきた。さらに、A.根茎遺伝子によって誘導される毛深い根は、その形成的な根の発達とホルモンフリー培地8における高度に分岐する成長によって効率的に区別される。それらは、人工種子生産、根結節研究、および菌根菌菌、線虫、および根病原体77、99などの他の生物との相互作用を研究する研究を含むいくつかの研究分野で使用することができる。また、毛深い根形転換培養は、生化学的経路や化学シグナル伝達を調査し、医薬品、化粧品、食品添加物88,1010として使用される植物二次代謝産物を製造するための実験システムとして広く使用されている。野生型の毛状根で合成されたインドールアルカロイド、アコナイト、トロパネアルカロイド、フラボノイドなどの貴重な二次代謝産物は、数十年にわたり、パナックス人参11のギンセノシド、アムミマジャス12、およびフェノリック化合物で数十年にわたって調査2,されてきた。

毛深い根は、27家族から79種の植物種でA.根茎遺伝子を用いて製造されている14.例えば、A.根茎-媒介毛根形変換は、大豆15、16、サルビア17、プラムバゴインディカ18、ロータスジャポニクス19、チコリ(チコリウムインティバスL.)で報告されています。,1620.TB毛深い根形変換も調査済み 2.バイナリベクターを運ぶかどうかにかかわらず、A.根遺伝子によって媒介される毛深い根の発達に関して利用可能な詳細なプロトコルはほとんどありません。例えば、Sandra et al.21は野生型の芽に持続するトランスジェニックポテト毛状根を作製する方法を導入した。完全に発達した毛深い根は、ジャガイモ植物の茎間節にガスレポーター遺伝子を運ぶA.根茎遺伝子の注入後5〜6週間後に視覚化することができた。別の研究はまた、ジュートでgusAレポーター遺伝子を収容するA.根茎遺伝子によって誘発されるトランスジェニック毛状根系を報告していた(コーコーラスカプクラリスL.22さらに、Supaartら23、Δ1-テトラヒドロカンナビノール酸(THCA)合成酵素の遺伝子を担持する発現ベクター pBI121で形質転換したA.根生遺伝子を用いてトランスジェニックタバコ毛状根を得てTHCAを産生する。

しかし、特に結核において、毛深い根形変換の効果的な生成のためのステップバイステップのプロセスは比較的実証されていない。本研究では、レポーター遺伝子(GFP)、選択的マーカー(Kan)、および対象遺伝子(b4)を用いた詳細なプロトコル(我々の群から同定されたが、基本的ならせんループらせん(bHLH)ファミリー)を用いて、結核における毛深い根遺伝子変換を生成する詳細なプロトコルについて説明した。実験は、外植の準備、感染、コキュレーション、培養、その後の伝播を含む、種子の接種から毛深い根の生成まで、5〜6週間続いた。さらに、骨髄芽細胞症転写因子116の結核トランスジーンを運ぶバイナリプラスミドを含むA.リゾゲレンス、FtMYB116がTB毛根形変換を介して遺伝子および代謝レベルにおけるフラボノイド、特にルチンの蓄積を促進できるかどうかを決定するために使用された。FtMYB116は、光誘発転写因子であり、異なる光条件5の下でルチンの合成を調節する。カルボンシンターゼ(CHS)、フラバノン-3-ヒドロキシラーゼ(F3H)、フラボノイド-3’ヒドロキシラーゼ(F3’H)およびフラボノールシンターゼ(FLS)24は、ルチン生合成の代謝経路に関与する主要な酵素である。H24そこで、この研究は、結核性毛深い根におけるFtMYB116の過剰発現と主要な酵素遺伝子の発現、ならびにルチンおよびケルセチンなどの他のフラボノイドの含有量を示す。

Protocol

この研究で使用される結核は、山西農業科学アカデミーの小雑穀物研究センターが栽培した「JinQiao No.2」の品種に由来するBT18と名付けられました。このプロトコルの主要な手順を図 1に示します。 注:外植に関連する操作を迅速に操作し、可能であれば、ペトリ皿を閉じてしまい、しおれや汚染を避けてください。特に明記しない限り、全ての外植?…

Representative Results

アグロバクテリウム根虫遺伝子-媒介性結核毛状根形変換本研究では、A.根茎遺伝子を用いて遺伝的に形質転換された毛深い根を得るために確立されたステップバイステップのプロトコルについて説明する。TB種子の接種から、同定された毛深い根の収穫まで約5〜6週間かかり、いくつかの重要なステップが図1(A-H)に示A-Hされてい?…

Discussion

結核は、遺伝的および代謝レベル,,1、2、5、27、282,5で二1次代謝産物に関連するいくつかの研究で使用されている。2728毛深い根培養は、代謝産物産生のユニークな供給源として、代謝工学29において極めて重要な役割を果たし、関連遺伝子を挿入するこ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

本研究は中央公共福祉研究機関ZXKT17002の基礎研究基金によって支援されました。

Materials

2*Taq PCR MasterMix Aidlab, China PC0901
Agar powder Solarbio Life Science, Beijing, China A8190
Applied Biosystems 2720 thermo cycler ThermoFisher Scientific, US A37834
AS Solarbio Life Science, Beijing, China A8110 Diluted in DMSO, 100 mM
binary vectors ThermoFisher Scientific (invitrogen), US / pK7WG2D/pK7GWIWG2D (II)
Cefotaxime,sodium Solarbio Life Science, Beijing, China C8240 Diluted in Water, 200 mg/mL
CF15RXII high-speed micro Hitachi, Japan No. 90560201
Diposable Petri-dish Guanghua medical instrument factory, Yangzhou, China /
DYY-6C electrophoresis apparatus Bjliuyi, Beijing China ECS002301
EASYspin Plus Plant RNA Kit Aidlab, China RN38
ELGA purelab untra bioscience ELGA LabWater, UK 82665JK1819
Epoch Microplate Spectrophotometer biotek, US /
Gateway BP/LR reaction enzyme ThermoFisher Scientific (invitrogen), US 11789100/11791110
HYG-C multiple-function shaker Suzhou Peiying Experimental Equipment Co., Ltd. China /
Kan Solarbio Life Science, Beijing, China K8020 Diluted in Water, 100 mg/mL
MLS-3750 Autoclave sterilizer Sanyo, Japan /
MS salts with vitamins Solarbio Life Science, Beijing, China M8521
NaCl Solarbio Life Science, Beijing, China S8210
Other chemicals unstated Beijing Chemical Works, China ethanol, mercury bichloride, etc.
PHS-3C pH meter Shanghai INESA Scientific Instrument Co., Ltd, China a008
Plant Genomic DNA Kit TIANGEN BIOTECH (BEIJING) CO., LTD DP305
Rifampin Solarbio Life Science, Beijing, China R8010 Diluted in DMSO, 50 mg/mL
Spectinomycin Solarbio Life Science, Beijing, China S8040 Diluted in Water, 100 mg/mL
Sucrose Solarbio Life Science, Beijing, China S8270
Trans2K DNA Marker TransGen Biotech, Beijing, China BM101-01
Tryptone Solarbio Life Science, Beijing, China LP0042
Whatman diameter 9 cm Filter paper Hangzhou wohua Filter Paper Co., Ltd /
Yeast Extract powder Solarbio Life Science, Beijing, China LP0021

References

  1. Fabjan, N., et al. Tartary Buckwheat ( Fagopyrum tataricum Gaertn .) as a Source of Dietary Rutin and Quercitrin. Agricultural and Food Chemistry. 51, 6452-6455 (2003).
  2. Kim, Y. K., et al. Production of Phenolic Compounds in Hairy Root Culture of Tartary Buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertn). Journal of Crop Science & Biotechnology. 12 (1), 53-57 (2009).
  3. Yao, Y., et al. D-chiro-inositol-enriched tartary buckwheat bran extract lowers the blood glucose level in KK-Ay mice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56 (21), 10027-10031 (2008).
  4. Giri, A., Narasu, M. L. Transgenic hairy roots. Biotechnology Advances. 18 (1), 1-22 (2000).
  5. Zhang, D., et al. The light-induced transcription factor FtMYB116 promotes accumulation of rutin in Fagopyrum tataricum. Plant, Cell & Environment. 42, (2018).
  6. Chilton, M. -. D., et al. Agrobacterium thizogenes inserts T-DNA into the genomes of the host plant root cells. Nature. 295 (4), 129 (1982).
  7. Guillon, S., Trémouillaux-Guiller, J., Kumar Pati, P., Gantet, P. Hairy Roots: a Powerful Tool for Plant Biotechnological Advances. Bioactive Molecules and Medicinal Plants. , 271-283 (2008).
  8. Srivastava, S., Srivastava, A. K. Hairy root culture for mass-production of high-value secondary metabolites. Critical Reviews in Biotechnology. 27 (1), 29-43 (2007).
  9. Veena, V., Taylor, C. G. Agrobacterium rhizogenes: Recent developments and promising applications. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 43 (5), 383-403 (2007).
  10. Ramachandra Rao, S., Ravishankar, G. A. Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology Advances. 20 (2), 101-153 (2002).
  11. Palazón, J., et al. Growth and Ginsenoside Production in Hairy Root Cultures of Panax ginseng using a Novel Bioreactor. Planta Med. 69 (04), 344-349 (2003).
  12. Staniszewska, I., Królicka, A., Maliński, E., Łojkowska, E., Szafranek, J. Elicitation of secondary metabolites in in vitro cultures of Ammi majus L. Enzyme and Microbial Technology. 33 (5), 565-568 (2003).
  13. Uddin, M. R., Li, X., Won, O. J., Park, S. U., Pyon, J. Y. Herbicidal activity of phenolic compounds from hairy root cultures of Fagopyrum tataricum. Weed Research. 52, 25-33 (2011).
  14. Christey, M. C., Braun, R. H. Production of hairy root cultures and transgenic plants by Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. Methods in Molecular Biology. 286, 47-60 (2005).
  15. Olhoft, P. M., et al. A novel Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation method of soybean [Glycine max (L.) Merrill] using primary-node explants from seedlings. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant. 43 (6), 536-549 (2007).
  16. Kereszt, A., et al. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of soybean to study root biology. Nature Protocols. 2 (4), (2007).
  17. Pistelli, L., et al. . Bio-Farms for Nutraceuticals: Functional Food and Safety Control by Biosensors. , (2010).
  18. Gangopadhyay, M., Sircar, D., Mitra, A., Bhattacharya, S. Hairy root culture of Plumbago indica as a potential source for plumbagin. Biologia Plantarum. 52 (3), 533-537 (2008).
  19. Okamoto, S., Yoro, E., T, S., K, M. Division Hairy Root Transformation in lotus Japonicus. Bio-Protocol. 3 (12), 14-17 (2013).
  20. Fathi, R., Mohebodini, M., Chamani, E. High-efficiency Agrobacterium rhizogenes-mediated genetic transformation in Cichorium intybus L. via removing macronutrients. Industrial Crops and Products. 128, 572-580 (2019).
  21. Fernández-piñán, S., et al. Transformation of Potato and the Promoter Activity of a Suberin Gene by GUS Staining. Journal Of Visualized Experiments. , e1 (2019).
  22. Chattopadhyay, T., Roy, S., Mitra, A., Maiti, M. K. Development of a transgenic hairy root system in jute (Corchorus capsularis L.) with gusA reporter gene through Agrobacterium rhizogenes mediated co-transformation. Plant Cell Reports. 30 (4), 485-493 (2011).
  23. Sirikantaramas, S., et al. The gene controlling marijuana psychoactivity. Molecular cloning and heterologous expression of Δ1-tetrahydrocannabinolic acid synthase from Cannabis sativa L. Journal of Biological Chemistry. 279 (38), 39767-39774 (2004).
  24. Zhou, M. L., et al. Characterization of Functional Genes in Buckwheat. Molecular Breeding and Nutritional Aspects of Buckwheat. , 327-331 (2016).
  25. Liang, C., et al. A Comparative Analysis of the Chloroplast Genomes of Four Salvia Medicinal Plants. Engineering. 5 (5), 907-915 (2019).
  26. Wang, J., Zhang, X., Yan, G., Zhou, Y., Zhang, K. Over-expression of the PaAP1 gene from sweet cherry (Prunus avium L.) causes early flowering in Arabidopsis thaliana. Journal of Plant Physiology. 170 (3), 315-320 (2013).
  27. Li, J., et al. Analysis of Flavonoid Metabolites in Buckwheat Leaves Using UPLC-ESI-MS/MS. Molecules. , (2019).
  28. Zhu, F. Chemical composition and health effects of Tartary buckwheat. Food Chemistry. 203, 231-245 (2016).
  29. Kaur, B., Malik, C. P. Hairy root culture -a unique source for metabolites production. Journal of Plant Science Research. 25 (2), 123-141 (2010).
  30. Thwe, A. A., et al. Metabolomic Analysis and Phenylpropanoid Biosynthesis in Hairy Root Culture of Tartary Buckwheat Cultivars. Plos One. 8 (6), (2013).
  31. Thwe, A. A., et al. Accumulation of Phenylpropanoids and Correlated Gene Expression in Hairy Roots of Tartary Buckwheat under Light and Dark Conditions. Applied Biochemistry and Biotechnology. 174 (7), 2537-2547 (2014).
  32. Zhang, K., et al. Jasmonate-responsive MYB factors spatially repress rutin biosynthesis in Fagopyrum tataricum. Journal of Experimental Botany. 69 (8), 1955-1966 (2018).
  33. Zhou, M., et al. FtSAD2 and FtJAZ1 regulate activity of the FtMYB11 transcription repressor of the phenylpropanoid pathway in Fagopyrum tataricum. New Phytologist. 216, (2017).
  34. Giri, A., Narasu, M. L. Transgenic hairy roots: Recent trends and applications. Biotechnology Advances. 18 (1), 1-22 (2000).
  35. Thwe, A., et al. Effect of different Agrobacterium rhizogenes strains on hairy root induction and phenylpropanoid biosynthesis in tartary buckwheat (Fagopyrum tataricum Gaertn). Frontiers in Microbiology. 7, 1-10 (2016).
  36. Cheng, Q., et al. RNA interference-mediated repression of SmCPS (copalyldiphosphate synthase) expression in hairy roots of Salvia miltiorrhiza causes a decrease of tanshinones and sheds light on the functional role of SmCPS. Biotechnology Letters. 36 (2), 363-369 (2014).
  37. Huang, X., et al. Efficient Rutin and Quercetin Biosynthesis through Flavonoids-Related Gene Expression in Fagopyrum tataricum Gaertn . Hairy Root Cultures with UV-B Irradiation. Frontiers In Plant Science. 7, 1-11 (2016).
  38. Godwin, I., Todd, G., Ford-lloyd, B., Newbury, H. J. The effects of acetosyringone and pH on Agrobacterium-mediated transformation vary according to plant species. Plant Cell Reports. 9, 671-675 (1991).
  39. Stachel, S. E., Messens, E., Van Montagiu, M., Zambryski, P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens. Nature. 318 (19), (1985).
  40. Bolton, G. W., Nester, E. W., Gordon, M. P. Plant Phenolic Compounds Induce Expression of the Agrobacterium tumefaciens loci needed for virulence. Science. 232 (10), 983-985 (1986).
  41. Ferri, M., et al. Chitosan treatment induces changes of protein expression profile and stilbene distribution in Vitis vinifera cell suspensions. Proteomics. 9 (3), 610-624 (2009).
  42. Bourgaud, F., Gravot, A., Milesi, S., Gontier, E. Production of plant secondary metabolites: a historical perspective. Plant Science. 161 (5), 839-851 (2001).
  43. Kumagai, H., Kouchi, H. Gene Silencing by Expression of Hairpin RNA in Lotus japonicus Roots and Root Nodules. Molecular Plant-Microbe Interactions. 16 (8), 663-668 (2003).
  44. Sunil Kumar, G. B., Ganapathi, T. R., Srinivas, L., Revathi, C. J., Bapat, V. A. Expression of hepatitis B surface antigen in potato hairy roots. Plant Science. 170 (5), 918-925 (2006).

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Mi, Y., Zhu, Z., Qian, G., Li, Y., Meng, X., Xue, J., Chen, Q., Sun, W., Shi, Y. Inducing Hairy Roots by Agrobacterium rhizogenes-Mediated Transformation in Tartary Buckwheat (Fagopyrum tataricum). J. Vis. Exp. (157), e60828, doi:10.3791/60828 (2020).

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