Dato che i GPCR sono interessanti obiettivi drogabili, lo screening dei ligandi GPCR è quindi indispensabile per l’identificazione dei composti di piombo e per gli studi di deorfanotrizzazione. A fronte di questi sforzi, descriviamo PRESTO-Tango, una piattaforma di risorse open source utilizzata per la profilazione simultanea del reclutamento transitorio di z-arrestin2 a circa 300 GPCR utilizzando un test reporter basato su TEV.
Essendo la più grande e versatile superfamiglia genica e mediatori di una serie di vie di segnalazione cellulare, i recettori accoppiati alle proteine G (GPCR) rappresentano uno degli obiettivi più promettenti per l’industria farmaceutica. Ergo, la progettazione, l’implementazione e l’ottimizzazione dei saggi di screening dei ligandi GPCR è fondamentale, in quanto rappresentano strumenti di controllo remoto per la scoperta di farmaci e per la manipolazione della farmacologia e dei risultati del GPCR. In passato, i saggi dipendenti dalla proteina G caratterizzavano quest’area di ricerca, rilevando eventi indotti dal ligando e quantificando la generazione di messaggeri secondari. Tuttavia, dall’avvento della selettività funzionale, così come una maggiore consapevolezza di diversi altri percorsi indipendenti dalla proteina G e dei limiti associati ai saggi dipendenti dalla proteina G, c’è una maggiore spinta verso la creazione di alternative saggi di screening dei ligandi GPCR. A questo scopo, descriviamo l’applicazione di una di queste risorse, la piattaforma PRESTO-Tango, un sistema di giornalista luciferata luciferasi che consente l’interrogatorio parallelo e simultaneo del GPCR-ome umano, un’impresa che in precedenza era considerata tecnicamente ed economicamente irrealizzabile. Sulla base di un saggio di reclutamento indipendente indipendente dalla proteina G-arrestin2, l’universalità della tratta mediata da z-arrestin2 e della segnalazione presso i GPCR rende PRESTO-TANGO uno strumento adatto per studiare circa 300 GPD umani non olfattivi, tra cui circa 100 recettori orfani. La sensibilità e la robustezza di PRESTO-Tango lo rendono adatto per schermi primari ad alto rendimento utilizzando librerie composte, impiegati per scoprire nuovi obiettivi GPCR per farmaci noti o per scoprire nuovi ligandi per i recettori orfani.
I recettori accoppiati alle proteine G (GPCR) costituiscono la più grande e diversificata famiglia di proteine transmembrane, operando come interfacce di comunicazione tra una cellula e il suo ambiente1. La versatilità dei GPR è evidenziata dalla loro capacità di rilevare una vasta gamma di ligandi – dai neurotrasmettitori ai nucleotidi, peptidi ai fotoni, e molti altri – così come la loro capacità di regolare numerose cascate di segnalazione a valle coinvolte nella crescita cellulare, migrazione, differenziazione, apoptosi, cottura cellulare, ecc2,3. Considerando la loro ubiquità e il coinvolgimento in una moltitudine di processi fisiologici, questa famiglia di recettori è della massima importanza terapeutica, dimostrare dal fatto che più di un terzo dei farmaci prescritti attualmente disponibili si rivolgono a GPCR4. Tuttavia, queste terapie esistenti si rivolgono solo a un piccolo sottoinsieme della superfamiglia (circa il 10%) e la farmacologia di molti GPCR rimane non chiarita. Inoltre, più di 100 GP esistono come recettori orfani, in quanto non sono stati abbinati a un ligando endogeno5. Pertanto, lo screening dei ligandi GPCR è fondamentale per la deorfamentizzazione e lo sviluppo di farmaci, in quanto spiana la strada verso la scoperta e l’ottimizzazione dei condotti e, eventualmente, verso la fase di sperimentazione clinica.
I metodi per lo screening dei ligandi GPCR sono tradizionalmente rientrati in una delle due categorie, le analisi funzionali indipendenti dalla proteina G o dalla proteina G6. La segnalazione di GPCR è regolata da proteine G eterotrimerici (G , g , che vengono attivate dallo scambio di GTP con il PIL vincolato alla sottounità7 diG . I segnali provenienti dal recettore attivato vengono trasdotti dalle proteine G tramite messaggeri secondari, come cAMP, Calcio, DAG e IP3, per mediare la segnalazione a valle agli effetti a valle8. La natura delle conseguenze funzionali della segnalazione delle proteine G è stata sfruttata per creare analisi basate sulle cellule che riflettono l’attivazione del recettore. Questi metodi, che misurano gli eventi prossimali (diretti) o distali (indiretti) nella segnalazione delle proteine G, sono più frequentemente utilizzati per lo screening dei ligandi GPCR e sono stati principalmente impiegati negli studi di deorfanotrizzazione6. Esempi di saggi che misurano direttamente l’attivazione delle proteine G mediate da GPCR includono il saggio vincolante [35S]GTP che misura il legame di un analogo GTP radioetichettato e non idrolizzabile alla sottounità di G, e il trasferimento di energia per la risonanza di F.risster/bioluminescenza (FRET/BRET, rispettivamente) sonde per monitorare le interazioni GPCR-G . I saggi che monitorano gli eventi distale sono gli strumenti più comunemente utilizzati per la profilazione GPCR; ad esempio, i saggi cAMP e IP1/3 misurano l’accumulo intracellulare di messaggeri secondari dipendenti dalla proteina G, mentre il flusso [Ca2]e i saggi di reporter che coinvolgono elementi di risposta specifici implicati nell’attivazione della proteina G (CRE, NFAT-RE, SRE, SRF-RE) esaminano ulteriormente gli eventi a valle della cascata di segnalazione11. Mentre la maggior parte dei suddetti saggi può essere eseguita a un livello di sono abbastanza sensibili, e vantano alcuni vantaggi specifici per l’analisi (ad esempio, la discriminazione tra agonisti completi/parziali, antagonisti neutri e agonisti inversi nel caso della rilegatura GTPS, o la funzionalità di analisi su cellule vive come [Ca2 ]e IP1/3)6, purtroppo non ci sono metodi dipendenti g-proteina esistenti che si adattino all’interrogatorio dell’intero GPCR-ome farmacologico. Ciò è in gran parte dovuto all’accoppiamento nativo di più sottofamiglie di proteine G ai GPCR, con conseguente segnalazione in diverse cascate e l’accoppiamento sconosciuto delle proteine G agli ORfani GPCR. Per mitigare questo problema, sono stati sviluppati saggi per forzare l’accoppiamento promiscuo di proteine G attraverso un’unica lettura comune di segnalazione, come il cAMP, e Ca2,anche se la maggior parte di essi sono a basso consumo12.
Un aspetto importante del ciclo di vita del GPCR è la cessazione della segnalazione dipendente dalle proteine G, che si verifica in gran parte attraverso il reclutamento di arresti z che induce ladissociazione della proteina G, e infine desensibilizzare il recettore, che è mirato per l’internalizzazione rivestita di clatra1in13 . Le isoforme più onnipresentisamente espresse di z-arrestin sono le non visive z-arrestin1 e z-arrestin2, indicate rispettivamente come arrestin-2 e arrestin-3, rispettivamente14. Inserisci i saggi basati sulle cellule indipendenti della proteina G, che aggiungono una nuova dimensione allo screening dei ligandi GPCR; il traffico di recettori, l’intera cellula senza etichetta e i saggi di reclutamento di arresto z sono tutti esempi degni di nota. I saggi di traffico di GPCR utilizzano ligandi con etichetta fluoroforo o anticorpi co-internalizzati che colpiscono il recettore15, mentre i saggi interi cellulari privi di etichetta utilizzano biosensori che traducono i cambiamenti cellulari indotti dal legame del ligando in output quantificabili, come i segnali elettrici o ottici16. In particolare, le interazioni per eccellenza nel GPCR- Il sistema Tango, sviluppato per la prima volta da Barnea et al. solo dieci anni fa, comporta l’introduzione di tre elementi genetici esogeni: una fusione proteica costituita da z-arrestin2 con proteasi del virus dell’incisione del tabacco (TEVp), un transattivatore di tetraciclina (tTA) legato a un GPCR tramite un virus dell’incisione del tabacco (TEVp), un transattivatore di tetraciclina (tTA) legato a un GPCR tramite un virus dell’incisione del tabacco sito di scissione di scissione (TEVcs) ed è preceduta da una sequenza del capoluogo C del recettore V2pressin (coda V2) per promuovere il reclutamento di arrestate, e un gene reporter luciferasi la cui trascrizione è innescata dal TTA fattore di trascrizione traslocazione al nucleo, che viene liberato dall’ancoraggio della membrana in seguito al reclutamento di z-arrestin2 (Figura 1)18. Le letture quantitative dell’attivazione della GPCR e del reclutamento di z-arrestin2 possono essere successivamente determinate leggendo la luminescenza. Una notevole distinzione è che mentre il traffico di recettori e i metodi interi cellulari privi di etichette sono relativamente a bassa velocità effettiva, il Tango ha diversi vantaggi, tra cui la lettura selettiva che è specifica per il recettore bersaglio e la sensibilità a causa dell’integrazione del segnale, che lo rendono un candidato adatto per lo screening dei ligandi su scala più ampia18.
In considerazione di queste caratteristiche strategiche, Kroeze e altri hanno sviluppato PRESTO-Tango (Parallel Receptor-ome Expression and Screening via Transcriptional Output-Tango), una piattaforma open source ad alta velocità che utilizza l’approccio Tango per profilare il GPCR-ome drogabile in modo parallelo e simultaneo19. Sfruttando il reclutamento “promiscuo” di z-arrestin2 in quasi tutti i GPR, PRESTO-Tango è il primo nel suo genere in termini di analisi funzionali basate sulle cellule, consentendo uno screening rapido “di primo round” di piccoli composti molecolari in quasi tutti i GPL non olfattivi, compresi gli orfani, indipendentedall’accoppiamento della sottofamiglia della proteina G.
I GPCR conformazionalmente dinamici sono centrali elettriche di trasduzione del segnale. Le proprietà fisiochimiche delle tasche di legame di questi recettori eptahelici, così come la loro rilevanza fisiologica sottolineano la necessità di strumenti di screening dei ligandi GPCR. Come presentato in precedenza, l’analisi PRESTO-Tango è rapida, sensibile e user-friendly, prestandosi allo sviluppo di farmaci. Non solo questo saggio misura l’attivazione indotta dagli agonisti, ma può anche essere utilizzata per quantifi…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto dai Canadian Institutes of Health Research (CIHR grant #MOP142219).
384 Well Optical Bottom Plates, Polystyrene Polymer Base, Cell Culture Treated, BLACK, with lid, Sterile | NUNC | 12-566 | |
384 Well Optical Bottom Plates, Polystyrene Polymer Base, Cell Culture Treated, White, with lid, Sterile | NUNC | 12-566-1 | |
384 Well Round Bottom, Polypropylene, Non-Treated, Blue, non-sterile, without lid | ThermoFisher | 12-565-390 | |
Antibiotic-Antimycotic | Wisent | 450-115-EL | |
D-Luciferin, sodium salt | GoldBio | LUCNA | |
DMEM with L-Glutamine, 4.5g/L Glucose and Sodium Pyruvate | Corning | 10-013-CV | |
Eppendorf Xplorer, 12-channel, variable, 15–300 µL | Eppendorf | 4861000155 | |
Eppendorf Xplorer, 12-channel, variable, 5–100 µL | Eppendorf | 4861000139 | |
Matrix Platemate 2×3 | ThermoFisher | 801-10001 | |
MicroBeta 1450 Wallac | Perkin Elmer | ||
Penicilin-Streptomycin | Wisent | 450-201-EL | |
Poly-L-Lysine hydrobromide | Millipore-Sigma | P2636-500MG | |
Roth Lab PRESTO-Tango GPCR Kit | Addgene | Kit #1000000068 |