يوضح هذا البروتوكول القياس الدقيق والقابل للتكرار لاستهلاك الأكسجين في جزر البنكرياس الرئيسية غير البشرية. وتوفر تقنيات تحميل الجزيرة وطلاء الصفيحة المجهرية اطارا لقياس كفاءه التنفس في أنواع أخرى من الخزان المستزرعة.
قياس استهلاك الأكسجين في مجموعات كرويه من الخلايا ، مثل الجزر السابقة البنكرياس الجسم الآخر ، تاريخيا كانت صعبه. ونحن نظهر قياس استهلاك جزيرة الأكسجين باستخدام ميكروبلايت 96-بئر مصممه لقياس استهلاك الأكسجين في خزان. في هذا الفحص ، يتم تغليف ألواح المجهرية كروي مع الخلية والانسجه لاصقه في اليوم السابق لفحص. نحن الاستفادة من حجم صغير من الحل لاصقه لتشجيع جزيرة الانضمام إلى الجزء السفلي من البئر فقط. في يوم الفحص, يتم تحميل 15 الجزر مباشره في قاعده كل بئر باستخدام تقنيه التي تضمن الوضع الأمثل للجزر وقياس دقيق لاستهلاك الأكسجين. يتم البحث في جوانب مختلفه من التنفس الميتوكوندريا دوائيا في الجزر الرئيسية غير البشرية, بما في ذلك التنفس المعتمد علي ATP, التنفس القصوى, وتسرب البروتون. هذا الأسلوب يسمح لنتائج متسقة وقابله للتكرار باستخدام عدد قليل من الجزر الصغيرة لكل بئر. فانه يمكن نظريا ان تطبق علي اي خزان مثقف من حجم مماثل.
من أجل الحفاظ علي مستويات الجلوكوز في الدم العادية ، يجب ان تستشعر الخلية β البنكرياس الارتفاعات في الجلوكوز وتفرز الانسولين وفقا لذلك. يرتبط اقتران إفراز الانسولين مع مستويات الجلوكوز مباشره باستقلاب الجلوكوز وإنتاج ATP من خلال فوسفولات الاكسده المتقدريه. وهكذا, الميتوكوندريا تلعب دورا حاسما في تحفيز إفراز اقتران1. تقييم وظيفة الميتوكوندريا خليه β يمكن ان تكشف عن العيوب التي تؤدي إلى ضعف إفراز الانسولين. يتم أيضا ربط إفراز الجلوكاجون بخلايا α البنكرياس بشكل وثيق إلى وظيفة الميتوكوندريا2. علي الرغم من ان خطوط الخلايا جزيرة الخلد قد ثبت مفيده لبعض أنواع الاختبارات ، وعلم وظائف الخلايا من هذه الخلية لا تلخص بدقه وظيفة جزيرة كامله ، كما يتضح من التحفيز من إفراز الانسولين بواسطة جلوكاجون3،4 وتثبيط إفراز جلوخون بالانسولين/سوماتوستاتين5،6 في الجزر الجزيرة سليمه. وهذا يدل علي الحاجة إلى قياس استهلاك الأكسجين باستخدام الجزر كامله وسليمه.
وقد تطورت تقنيات قياس التنفس الخلوي للخلايا الجزيرة بمرور الوقت ، من استخدام الاصباغ الفلورية الحساسة للأكسجين7 إلى أجهزه الاستشعار الصلبة التي تقيس مباشره استهلاك الأكسجين8. صممت في البداية لأحاديه الطبقة ، والخلايا الملتصقة ، والتي يشيع استخدامها أنظمه لوحه ثقافة الخلايا أثبتت انها غير فعاله لجزر البنكرياس. وبما ان الجزر لا تلتزم بشكل طبيعي بالآبار ، فهي عرضه لان يتم دفعها إلى محيط الثقافة مما يؤدي إلى قياس غير دقيق لاستهلاك الأكسجين9. ان يكافح هذا مشكله, يختص [24-ول] لوحات مع هبوط مركزيه ان استطاع احتويت جزائر كان طورت9. ومع ذلك ، فان نظام اللوحات التي تبلغ 24 بئرا كان محدودا بالعدد الكبير من الجزر المطلوبة (50-80 لكل بئر) وعدد الحالات التي يمكن اختبارها في وقت واحد10. وقد تغلبت التطورات الاخيره من الصفائح الدقيقة 96 المصممة خصيصا لتحليل تدفق خارج الخلية في خزان هذه الحواجز ، مما يتيح قياس التنفس جزيرة مع 20 أو اقل من الجزر الصغيرة لكل10جيدا.
هنا ، ونحن نظهر استخدام هذا النظام لقياس استهلاك الأكسجين في الجزر من المكاك اليابانية (المكاك تهيمن) ، وهو نموذج الحيوانية مع البيولوجيا جزيرة مماثله للبشر11،12. في هذا البروتوكول ، يتم تحليل 15 الجزر المكاك لكل بئر. في ايدينا ، 15 الجزر لكل بئر تنتج ارتفاع استهلاك الأكسجين خط الأساس من عدد اقل من الجزر ، مع تنشيط قويه وقمع التنفس استجابه للتلاعب الدوائي. ونحن نسلط الضوء علي الخطوات اللازمة للتحضير لفحص ، وسيله فعاله لتحميل متسقة من الجزر في وسط كل بئر ، والتحديات المشتركة عند تنفيذ هذا الفحص.
وقد أعاقت الدراسة من استهلاك الأكسجين جزيرة في السابق من قبل شكل كروي من الجزر ، وعدم التزام بالأسطح الثقافية ، وعدد الجزر المطلوبة لكل بئر. في هذا البروتوكول ، ونحن تسليط الضوء علي فعاليه 96 كروي microplate لقياس استهلاك الأكسجين جزيرة علي عدد قليل من الجزر الصغيرة وإظهار تقنيه لمناوله وتحميل ?…
The authors have nothing to disclose.
ويود المؤلفون ان يعترفوا بنواه الفحص العالي الانتاجيه لاستخدام مرافقهم ، والتكنولوجيات الحيوية Agilent ، والدكتور بول Kievit (جامعه اوريغون للصحة والعلوم) لعزل الرئيسيات غير البشرية ، واريك دوناهو (جامعه فانديربيلت) للحصول علي المساعدة في الشكل 1. وقد دعمت J.M.E. من قبل NIGMS من المعاهد الوطنية للصحة تحت رقم الجائزة T32GM007347. وقد دعمت M.G. من قبل المعاهد القومية للصحة/NIDDK (R24DK090964) وأداره شؤون قدامي المحاربين (BX003744).
Cell culture dish, 60 mm X 15 mm style | Corning | 430166 | |
Cell-Tak Cell and Tissue Adhesive | Corning | 354240 | |
Conical tube, 50 mL | Falcon | 352070 | |
Dextrose anhydrous | Fisher Scientific | BP350-1 | For glucose solution, 200 mg/ml, sterile filetered |
Disposable reservoirs (sterile), 25 ML | Vistalab | 3054-1033 | for loading multichannel pipet |
EZFlow Sterile 0.45 μm PES Syringe Filter, 13 mm | Foxx Life Sciences | 371-3115-OEM | |
L-glutamine | Gibco | 25030-081 | 200 mM (100x) |
Multichannel pipette tips | ThermoFisher Scientific | 94410810 | |
Multichannel pipette, 15-1250 μL | ThermoFisher Scientific | 4672100BT | Recommended |
P20, P200, and P1000 pipettes | Eppendorf | 2231000602 | |
pH Probe | Hanna Instruments | HI2210-01 | |
Pipette tips, 20 μL, 200 μL, 1000 μL | Olympus | 24-404, 24-412, 24-430 | |
Seahorse XF Base Media | Agilent | 103334-100 | |
Seahorse XF Cell Mito Stress Test Kit | Agilent | 103015-100 | Includes Oligomycin, FCCP, and Rotenone/Antimycin A |
Seahorse XFe96 Analyzer | Agilent | S7800B | Including prep station with 37 °C non-CO2 incubator |
Seahorse XFe96 Spheroid Fluxpak Mini | Agilent | 102905-100 | Includes sensor cartridge, spheroid microplate, and calibrant |
Sodium bicarbonate | Fisher Scientific | BP328-500 | |
Sodium pyruvate | Gibco | 11360-070 | 100 mM (100x) |
Stereo Microscope | Olympus | SZX9 | |
Syringe (sterile), 5 mL | BD | 309603 | For sterile filtration |
Water (sterile) | Sigma | W3500-500mL |