Nachweis von reaktiven Sauerstoffspezies insgesamt in anhaftenden Zellen durch 2',7'-Dichlorodihydrofluorescein Diacetat-Färbung
Summary
Hier stellen wir ein Protokoll zum Nachweis der gesamten ulzellulären reaktiven Sauerstoffspezies (ROS) mit 2′,7′–Dichlordihydrofluorescein-Diaacetat (DCFH-DA) vor. Diese Methode kann die zelluläre ROS-Lokalisierung in anhaftenden Zellen mit einem Fluoreszenzmikroskop visualisieren und die ROS-Intensität mit einem Fluoreszenzplattenleser quantifizieren. Dieses Protokoll ist einfach, effizient und kostengünstig.
Abstract
Oxidativer Stress ist ein wichtiges Ereignis sowohl unter physiologischen als auch unter pathologischen Bedingungen. In dieser Studie zeigen wir, wie oxidativer Stress quantifiziert werden kann, indem wir die gesamte reaktive Sauerstoffspezies (ROS) am Beispiel von 2′,7′-dichlorohydrofluorescein-Diacetat (DCFH-DA) in Darmkrebszelllinien messen. Dieses Protokoll beschreibt detaillierte Schritte, einschließlich der Vorbereitung der DCFH-DA-Lösung, der Inkubation von Zellen mit DCFH-DA-Lösung und der Messung der normalisierten Intensität. DCFH-DA Färbung ist eine einfache und kostengünstige Möglichkeit, ROS in Zellen zu erkennen. Es kann verwendet werden, um die ROS-Generation nach chemischer Behandlung oder genetischen Modifikationen zu messen. Daher ist es nützlich, um zellulären oxidativen Stress auf Umweltstress zu bestimmen, und liefert Hinweise auf mechanistische Studien.
Introduction
Drei wichtige reaktive Sauerstoffspezies (ROS), die durch den Zellstoffwechsel produziert werden, die von physiologischer Bedeutung sind Superoxid-Anion, Hydroxylradikal und Wasserstoffperoxid1. Bei niedrigen Konzentrationen nehmen sie an physiologischen Zellprozessen teil, haben aber bei hohen Konzentrationen nachteilige Auswirkungen auf die Zellsignalwege1. Unser Körper hat antioxidative Systeme entwickelt, die gegen übermäßige ROS wirksam sind. Jedoch, oxidativer Stress kann auftreten, wenn ROS überwältigen die entgiftende Fähigkeit unseres Körpers, die zu vielen pathologischen Bedingungen beiträgt, einschließlich Entzündungen, Krebs, und neurodegenerative Erkrankungen2,3,4. Der Zweck dieser Methode ist es, die gesamte zelluläre ROS in anhaftenden Zellen mit 2′,7′–Dichlordihydrofluorescein-Diaacetat (DCFH-DA) Färbung zu bestimmen. Die Begründung ist, dass die Oxidation von DCFH-DA zu 2′-7’dichlorfluorescein (DCF) ausgiebig für den gesamten ROS-Nachweis einschließlich Hydroxylradikalen (•OH) und Stickstoffdioxid (•NO2)verwendet wurde. Mechanistisch wird DCFH-DA von Zellen aufgenommen, bei denen die zelluläre Esterase die Acetylgruppen abspaltet, was zu DCFH führt. Die Oxidation von DCFH durch ROS wandelt das Molekül in DCF um, das grüne Fluoreszenz bei einer Anregungswellenlänge von 485 nm und einer Emissionswellenlänge von 530 nm aussendet. Im Vergleich zum Nachweis der Fluoreszenz mit Durchflusszytometrie und anderen alternativen Methoden5ist es den Vorteilen dieser Methode mit einem Fluoreszenzmikroskop und einem Plattenleser, dass es deutlich sichtbare Fluoreszenzbilder erzeugt und einfach durchzuführen, effizient und kostengünstig ist. Diese Methode wurde weit verbreitet verwendet, um zelluläre ROS für die Untersuchung verschiedener Bedingungen zu erkennen6,7,8. Dieses Protokoll wird zum Erkennen von gesamtros in anhaftenden Zellen verwendet. Die Verwendung dieser Methode zum Erkennen von ROS in Suspensionszellen kann einige Änderungen erfordern.
Protocol
Representative Results
Discussion
Das hier beschriebene experimentelle Protokoll ist leicht reproduzierbar, um die zelluläre Gesamtmenge ROS zu messen. Zu den entscheidenden Schritten gehören die Frische der DCFH-DA-Lösung und die Vermeidung von Lichteinwirkung, die Minimierung von Zellstatusstörungen und umfangreiches PBS-Waschen direkt vor dem Aufnehmen von Bildern. Für die Herstellung der DCFH-DA-Arbeitslösung sollte die Lagerlösung direkt vor dem Hinzufügen in die 24-Well-Platte in vorgewärmtes DMEM aufgenommen werden. Der Grund dafür ist, …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Diese Arbeit wurde teilweise von den National Institutes of Health (K01DK114390), einem Forschungsstipendiatenstipendium der American Cancer Society (RSG-18-050-01-NEC), einem Forschungsprojekt-Stipendium von University of New Mexico Environmental Health Signature Program and Superfund (P42 ES025589), ein Shared Resources Pilot Project Award und ein Research Program Support Pilot Project Award von UNM comprehensive cancer center (P30CA118100) , und einen neuen Forschungsprüferpreis der Dedicated Health Research Funds an der University of New Mexico School of Medicine.
Materials
| 2',7'-Dichlorofluorescein diacetate | Cayman Chemical, Ann Arbor, MI | 20656 | |
| Doxorubicin hydrochloride | TCI America, Portland, OR | D4193-25MG | |
| Dulbecco's Modified Eagle Medium | Corning, Corning, NY | 45000-304 | |
| Ferrous Sulfate Heptahydrate | VWR, Radnor, PA | 97061-542 | |
| Invitrogen EVOS FL Auto Imaging System | Thermo Fisher Scientific Waltham, MA | AMAFD1000 | or any other fluorescence microscope |
| Protein assay Bradford solution | Bio-Rad, Hercules, CA | 5000001 | |
| SpectraMax M2 Microplate Reader | Molecular Devices, Radnor, PA | 89429-532 | or any other fluorescence microplate reader |
References
- Birben, E., et al. Oxidative stress and antioxidant defense. World Allergy Organization Journal. 5 (1), 9-19 (2012).
- Kim, G. H., et al. The Role of Oxidative Stress in Neurodegenerative Diseases. Experimental Neurobiology. 24 (4), 325-340 (2015).
- Sullivan, L. B., Chandel, N. S. Mitochondrial reactive oxygen species and cancer. Cancer & Metabolism. 2, 17 (2014).
- Formentini, L., et al. Mitochondrial ROS Production Protects the Intestine from Inflammation through Functional M2 Macrophage Polarization. Cell Reports. 19 (6), 1202-1213 (2017).
- Rakotoarisoa, M., et al. Curcumin- and Fish Oil-Loaded Spongosome and Cubosome Nanoparticles with Neuroprotective Potential against H2O2-Induced Oxidative Stress in Differentiated Human SH-SY5Y Cells. ACS Omega. 4 (2), 3061-3073 (2019).
- Mateen, S., et al. Increased Reactive Oxygen Species Formation and Oxidative Stress in Rheumatoid Arthritis. PLoS One. 11 (4), (2016).
- Kim, H., et al. The interaction of Hemin and Sestrin2 modulates oxidative stress and colon tumor growth. Toxicology and Applied Pharmacology. 374, 77-85 (2019).
- Wang, S. H., et al. Sotetsuflavone inhibits proliferation and induces apoptosis of A549 cells through ROS-mediated mitochondrial-dependent pathway. BMC Complementary and Alternative Medicine. 18, 235 (2018).
- Kruger, N. J., Walker, J. M. The Bradford Method For Protein Quantitation. The Protein Protocols Handbook. , 17-24 (2009).
- Tetz, L. M., et al. Troubleshooting the dichlorofluorescein assay to avoid artifacts in measurement of toxicant-stimulated cellular production of reactive oxidant species. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 67 (2), 56-60 (2013).
- Rong, L., et al. Hydrogen peroxide detection with high specificity in living cells and inflamed tissues. Regenerative Biomaterials. 3 (4), 217-222 (2016).
- Liu, L. Z., et al. Quantitative detection of hydroxyl radical generated in quartz powder/phosphate buffer solution system by fluorescence spectrophotometry. Guang Pu Xue Yu Guang Pu Fen Xi. 34 (7), 1886-1889 (2014).
