Detectie van totale reactieve zuurstofsoorten in aanhangende cellen door 2',7'-Dichloododihydrofluorescein Diacetate Kleuring
Summary
Hier presenteren we een protocol om de totale cellulaire reactieve zuurstofsoorten (ROS) te detecteren met behulp van 2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetaat (DCFH-DA). Deze methode kan cellulaire ROS lokalisatie visualiseren in aanhangende cellen met een fluorescentiemicroscoop en ros intensiteit kwantificeren met een fluorescentieplaatlezer. Dit protocol is eenvoudig, efficiënt en kosteneffectief.
Abstract
Oxidatieve stress is een belangrijke gebeurtenis onder zowel fysiologische als pathologische omstandigheden. In deze studie laten we zien hoe oxidatieve stress te kwantificeren door het meten van de totale reactieve zuurstof soorten (ROS) met behulp van 2′,7′,7’s ofgfohydrofluoresceïne diacetaat (DCFH-DA) kleuring in colorectale kanker cellijnen als voorbeeld. Dit protocol beschrijft gedetailleerde stappen, waaronder de voorbereiding van dcfh-DA-oplossing, incubatie van cellen met DCFH-DA-oplossing en meting van genormaliseerde intensiteit. DCFH-DA kleuring is een eenvoudige en kosteneffectieve manier om ROS in cellen te detecteren. Het kan worden gebruikt om ROS generatie te meten na chemische behandeling of genetische modificaties. Daarom is het nuttig voor het bepalen van cellulaire oxidatieve stress op milieustress, het verstrekken van aanwijzingen voor mechanistische studies.
Introduction
Drie belangrijke reactieve zuurstofsoorten (ROS) die door cellulair metabolisme worden geproduceerd die van fysiologische betekenis zijn superoxideanion, hydroxylradical, en waterstofperoxide1. Bij lage concentraties nemen ze deel aan fysiologische celprocessen, maar bij hoge concentraties hebben ze nadelige effecten op celsignaleringstrajecten1. Ons lichaam heeft antioxidantsystemen ontwikkeld, die effectief zijn tegen overmatige ROS. Oxidatieve stress kan echter optreden wanneer ROS het ontgiftende vermogen van ons lichaam overweldigt, wat bijdraagt aan vele pathologische aandoeningen, waaronder ontsteking, kanker en neurodegeneratieve ziekte2,3,4. Het doel van deze methode is het bepalen van de totale cellulaire ROS in aanhangende cellen met behulp van 2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetaat (DCFH-DA) kleuring. De reden is dat oxidatie van DCFH-DA tot 2′-7’dichlorofluorescein (DCF) op grote schaal is gebruikt voor totale ROS-detectie, waaronder hydroxylradicalen (•OH) en stikstofdioxide (•NR2). Mechanistisch, DCFH-DA wordt opgenomen door cellen waar cellulaire esterase kloven uit de acetyl groepen, wat resulteert in DCFH. Oxidatie van DCFH door ROS zet het molecuul om in DCF, dat groene fluorescentie uitzendt bij een excitatiegolflengte van 485 nm en een emissiegolflengte van 530 nm. Vergeleken met detectie van fluorescentie met stroomcytometrie en andere alternatieve methoden5,voordelen van deze methode met behulp van een fluorescentie microscoop en een plaatlezer zijn dat het duidelijk zichtbare fluorescerende beelden produceert, en is gemakkelijk uit te voeren, efficiënt en kosteneffectief. Deze methode is op grote schaal gebruikt om cellulaire ROS te detecteren voor het bestuderen van verschillende aandoeningen6,7,8. Dit protocol wordt gebruikt voor het detecteren van de totale ROS in aanhangende cellen. Het gebruik van deze methode om ROS in suspensiecellen te detecteren, kan enkele wijzigingen nodig hebben.
Protocol
Representative Results
Discussion
Het experimentele protocol dat hier wordt beschreven is gemakkelijk reproduceerbaar om cellulaire totale ROS te meten. De kritieke stappen omvatten het maken van DCFH-DA-oplossing fris en het vermijden van blootstelling aan licht, het minimaliseren van de cel status verstoring en uitgebreide PBS wassen vlak voor het nemen van beelden. Voor de bereiding van dcfh-DA werkoplossing moet de voorraadoplossing worden toegevoegd in voorverwarmde DMEM vlak voordat deze in de 24 putplaat wordt toegevoegd. De reden is dat oude oplo…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de National Institutes of Health (K01DK114390), een Research Scholar Grant van de American Cancer Society (RSG-18-050-01-NEC), een Research Pilot Project Grant van de University of New Mexico Environmental Health Signature Program and Superfund (P42 ES025589), een Shared Resources Pilot Project Award en een Research Program Support Pilot Project Award van UNM uitgebreid kankercentrum (P30CA118100) , en een nieuwe onderzoeker award van de Dedicated Health Research Funds aan de Universiteit van New Mexico School of Medicine.
Materials
| 2',7'-Dichlorofluorescein diacetate | Cayman Chemical, Ann Arbor, MI | 20656 | |
| Doxorubicin hydrochloride | TCI America, Portland, OR | D4193-25MG | |
| Dulbecco's Modified Eagle Medium | Corning, Corning, NY | 45000-304 | |
| Ferrous Sulfate Heptahydrate | VWR, Radnor, PA | 97061-542 | |
| Invitrogen EVOS FL Auto Imaging System | Thermo Fisher Scientific Waltham, MA | AMAFD1000 | or any other fluorescence microscope |
| Protein assay Bradford solution | Bio-Rad, Hercules, CA | 5000001 | |
| SpectraMax M2 Microplate Reader | Molecular Devices, Radnor, PA | 89429-532 | or any other fluorescence microplate reader |
References
- Birben, E., et al. Oxidative stress and antioxidant defense. World Allergy Organization Journal. 5 (1), 9-19 (2012).
- Kim, G. H., et al. The Role of Oxidative Stress in Neurodegenerative Diseases. Experimental Neurobiology. 24 (4), 325-340 (2015).
- Sullivan, L. B., Chandel, N. S. Mitochondrial reactive oxygen species and cancer. Cancer & Metabolism. 2, 17 (2014).
- Formentini, L., et al. Mitochondrial ROS Production Protects the Intestine from Inflammation through Functional M2 Macrophage Polarization. Cell Reports. 19 (6), 1202-1213 (2017).
- Rakotoarisoa, M., et al. Curcumin- and Fish Oil-Loaded Spongosome and Cubosome Nanoparticles with Neuroprotective Potential against H2O2-Induced Oxidative Stress in Differentiated Human SH-SY5Y Cells. ACS Omega. 4 (2), 3061-3073 (2019).
- Mateen, S., et al. Increased Reactive Oxygen Species Formation and Oxidative Stress in Rheumatoid Arthritis. PLoS One. 11 (4), (2016).
- Kim, H., et al. The interaction of Hemin and Sestrin2 modulates oxidative stress and colon tumor growth. Toxicology and Applied Pharmacology. 374, 77-85 (2019).
- Wang, S. H., et al. Sotetsuflavone inhibits proliferation and induces apoptosis of A549 cells through ROS-mediated mitochondrial-dependent pathway. BMC Complementary and Alternative Medicine. 18, 235 (2018).
- Kruger, N. J., Walker, J. M. The Bradford Method For Protein Quantitation. The Protein Protocols Handbook. , 17-24 (2009).
- Tetz, L. M., et al. Troubleshooting the dichlorofluorescein assay to avoid artifacts in measurement of toxicant-stimulated cellular production of reactive oxidant species. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 67 (2), 56-60 (2013).
- Rong, L., et al. Hydrogen peroxide detection with high specificity in living cells and inflamed tissues. Regenerative Biomaterials. 3 (4), 217-222 (2016).
- Liu, L. Z., et al. Quantitative detection of hydroxyl radical generated in quartz powder/phosphate buffer solution system by fluorescence spectrophotometry. Guang Pu Xue Yu Guang Pu Fen Xi. 34 (7), 1886-1889 (2014).
