Um protocolo para a indução da eritupse, a morte celular programada em eritrócitos, usando o ionóforo de cálcio, ionomicina, é fornecido. A eittose bem-sucedida é avaliada monitorando a fosfateina da localização no folheto exterior da membrana. Foram examinados fatores que afetam o sucesso do protocolo e condições ideais fornecidas.
Eritrose, morte celular programada de eritrócito, ocorre em uma série de doenças hematológicas e durante a lesão aos eritrócitos. Uma marca registrada das células eryptoticas é a perda da assimetria composicional da membrana celular, levando à translocação de fósforoarfrino para o folheto externo da membrana. Este processo é desencadeado pelo aumento da concentração intracelular de Ca2+, que ativa a scramblase, uma enzima que facilita o movimento bidirecional de fosfolípidos entre folhetos de membrana. Dada a importância da eryptose em várias condições doentes, tem havido esforços para induzir a erytose in vitro. Tais esforços têm geralmente invocado o ionóforo de cálcio, ionomicina, para melhorar a concentração intracelular Ca2 + e induzir a eryptose. Entretanto, muitas discrepâncias foram relatadas na literatura a respeito do procedimento para induzir a eryptose usando o ionomycin. Aqui, relatamos um protocolo passo a passo para eritptose induzida pela ionomicina em eritrócitos humanos. Nós nos concentramos em etapas importantes no procedimento, incluindo a concentração de ionóforo, tempo de incubação e esgotamento da glicose, e fornecer resultado representativo. Este protocolo pode ser usado para induzir reproduzivelmente a eryptose em laboratório.
A morte celular programada em eritrócitos, também conhecida como eritrose, é comum em muitas condições clínicas e distúrbios hematológicos. A eryptose está associada ao encolhimento celular e à perda de assimetria fosfolípida na membrana plasmática celular1,2. A perda de assimetria resulta na translocação de fosfatidylserine (PS), um lipídio normalmente localizado no folheto interno3,4, para o folheto exterior celular, que sinaliza para macrófagos para phagocitose e remover eritrócitos defeituosos5,6,7,8. No final da vida útil normal dos eritrócitos, a remoção de células eritptoticas por macrófagos garante o equilíbrio dos eritrócitos em circulação. No entanto, em condições doentes, como doença falciforme e talassemia9,10,11,eritrese reforçada pode resultar em anemia grave2. Devido à sua importância em doenças hematológicas, há um interesse significativo em examinar os fatores que induzem ou inibem a eryptose e os mecanismos moleculares subjacentes a este processo.
A membrana plasmática de eritrócitos saudáveis é assimétrica, com diferentes fosfolípidos localizando-se nos folhetos externos e internos. A assimetria da membrana é regulada principalmente pela ação das enzimas da membrana. O translocase aminofosfosfórico facilita o transporte de aminofosfípidos, PS e fosfatidylethanolamina (PE), direcionando esses lipídios para o folheto interno celular. Por outro lado, o floppase transporta a colina contendo fosfolípidos, fosfatatidylcholine (PC) e esfingomielina (SM), do interior ao folheto externo da membrana celular12. No entanto, ao contrário das células saudáveis, a membrana dos eritrócitos eritptoticos é embaralhada. Isto é devido à ação de uma terceira enzima, scramblase, que interrompe a assimetria fosfolípido, facilitando o transporte bidirecional de aminofosfosfípidos13,14,15,16. Scramblase é ativado por níveis intracelulares elevados de Ca2+. Portanto, os ionóforos de cálcio, que facilitam o transporte de Ca2+ através da membrana celular12,são indutores eficientes de eitosse.
Ionomicina, um ionóforo de cálcio, tem sido amplamente utilizado para induzir erittose em eritrócitos12,17,18,19,20,22,23,24,25,26. Ionomicina tem grupos hidrofílicos e hidrofóbicos, que são necessários para ligar e capturar íon Ca2 +, e transportá-lo para o espaço citosólico27,28,29. Isso leva à ativação de scramblase e translocação de PS para o folheto externo, que pode ser facilmente detectado usando annexin-V, uma proteína celular com uma alta afinidade com PS12. Embora provocar a eryptose por ionomicina seja relatado geralmente, há uma discrepância considerável do método na literatura(tabela 1). A população de eritrócitos submetidos à eritrose depende de diferentes fatores, como concentração de ionóforo, tempo de tratamento com ionóforo e o teor de açúcar do ambiente extracelular (esgotamento da glicose ativa canais de caation e facilita a entrada de Ca2+ no espaço citosólico)30,31. No entanto, há pouca consistência nesses fatores na literatura, dificultando o desempenho da eritose reproduzivelmente in vitro.
Neste protocolo, apresentamos um procedimento passo a passo para induzir eritrose em eritrócitos humanos. Os fatores que afetam a eryptose bem-sucedida que inclui a concentração de Ca2+, concentração do ionophore, tempo do tratamento, e pre-incubação no amortecedor glicose-esgotado são examinados e os valores óptimos são relatados. Este procedimento demonstra que a pré-incubação de eritrócitos em um amortecedor livre de glicose aumenta significativamente a porcentagem de eritrose em comparação com tampão contendo glicose. Este protocolo pode ser usado em laboratório para produzir eritrócitos eritptoticos para várias aplicações.
O objetivo deste procedimento é fornecer valores ideais para a concentração de ionóforo, tempo de tratamento e concentração de glicose extracelular, que são fatores importantes para garantir a indução bem-sucedida da eryptose. Um passo crítico no protocolo é o esgotamento da glicose extracelular, que, apesar de sua importância, não tem sido suficientemente enfatizada na literatura. O teor de açúcar na solução ringer normal (5 mM) tem um efeito inibitório sobre a eryptose. O esgotamento da glicose no amb…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pelo NIH grant R15ES030140 e NSF concessão CBET1903568. O apoio financeiro da Russ College of Engineering and Technology e do Departamento de Engenharia Química e Biomolecular da Universidade de Ohio também é reconhecido.
96-well plate | Fisher Scientific | 12-565-331 | |
Annexin V Alexa Fluor 488 – apoptosis kit | Fisher Scientific | A10788 | Store at 4 °C |
BD FACSAria II flow cytometer | BD Biosciences | 643177 | |
CaCl2 | Fisher Scientific | C79-500 | |
Centrifuge | Millipore Sigma | M7157 | Model Eppendorf 5415C |
Confocal fluorescence microscopy | Zeiss, LSM Tek Thornwood | Model LSM 510, Argon laser excited at 488 nm for taking images | |
Cover glasses circles | Fisher Scientific | 12-545-100 | |
Disposable round bottom flow cytometry tube | VWR | VWRU47729-566 | |
DMSO | Sigma-Aldrich | 472301-100ML | |
DPBS | VWR Life Science | SH30028.02 | |
Glucose monohydrate | Sigma-Aldrich | Y0001745 | |
HEPES Buffer (1 M) | Fisher Scientific | 50-751-7290 | Store at 4 °C |
Ionomycin calcium salt | EMD Milipore Corp. | 407952-1MG | Dissolve in DMSO to reach 2 mM. Store at -20 °C |
KCl | Fisher Scientific | P330-500 | |
MgSO4 | Fisher Scientific | M65-500 | |
Microcentrifuge tube | Fisher Scientific | 02-681-5 | |
NaCl | Fisher Scientific | S271-500 | |
Plain glass microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-4 | |
Synergy HFM microplate reader | BioTek | ||
Whole blood in ACD | Zen-Bio | Store at 4 °C and warm to 37 °C prior to use |