Summary

Induzione dell'eriptosi nei globuli rossi utilizzando un ionoforo di calcio

Published: January 21, 2020
doi:

Summary

Viene fornito un protocollo per l’induzione dell’eriptosi, la morte cellulare programmata negli eritrociti, utilizzando l’ionoforo di calcio, la ionomycina. L’eryptosi di successo viene valutata monitorando la fosfatidilaserina di localizzazione nel foglietto illustrativo esterno della membrana. Sono stati esaminati i fattori che influiscono sul successo del protocollo e sono state fornite condizioni ottimali.

Abstract

L’eriptosi, l’eritrocito morto cellulare programmato, si verifica in una serie di malattie ematologiche e durante la lesione agli eritrociti. Un segno distintivo delle cellule eriptotiche è la perdita di asimmetria compositiva della membrana cellulare, che porta alla traslocazione della fosfatidilanella nel volantino esterno della membrana. Questo processo è innescato da una maggiore concentrazione intracellulare di Ca2 ,che attiva la scramblase, un enzima che facilita il movimento bidirezionale dei fosfolipidi tra volantini a membrana. Data l’importanza dell’eriptosi in varie condizioni malate, ci sono stati sforzi per indurre l’eriptosi in vitro. Tali sforzi si sono generalmente affidati all’ionoforo di calcio, la ionomycina, per migliorare la concentrazione intracellulare di Ca2 e indurre l’eriptosi. Tuttavia, molte discrepanze sono state segnalate nella letteratura per quanto riguarda la procedura per indurre l’eryptosi utilizzando ionomycina. Qui, riportiamo un protocollo passo-passo per l’eriptosi indotta da ionomicina negli eritrociti umani. Ci concentriamo su importanti passi nella procedura, tra cui la concentrazione di ionoforo, il tempo di incubazione e l’esaurimento del glucosio e forniamo risultati rappresentativi. Questo protocollo può essere utilizzato per indurre riproducibilmente l’eryptosi in laboratorio.

Introduction

La morte cellulare programmata negli eritrociti, nota anche come eriptosi, è comune in molte condizioni cliniche e disturbi ematologici. L’eryptosi è associata al restringimento cellulare e alla perdita di asimmetria fosfolipidide nella membrana plasmatica cellulare1,2. La perdita di asimmetria provoca la traslocazione della fosfatidiladila (PS), un lipido normalmente localizzato nell’opuscolo interno3,4, nel volantino esterno della cellula, che segnala ai macrofagi di fagocitosi e rimuove gli eritrociti difettosi5,6,7,8. Alla fine della normale durata della vita degli eritrociti, la rimozione delle cellule eriftotiche dai macrofagi garantisce l’equilibrio degli eritrociti in circolazione. Tuttavia, in condizioni di malattia, come la malattia delle cellule falciformi e talassemia9,10,11, una maggiore eryptosi può provocare anemia grave2. A causa della sua importanza nelle malattie ematologiche, c’è un interesse significativo nell’esaminare i fattori che inducono o inibiscono l’eryptosi e i meccanismi molecolari alla base di questo processo.

La membrana plasmatica di eritrociti sani è asimmetrica, con diversi fosfolipidi che si localizzano nei volantini esterni e interni. L’asimmetria della membrana è regolata principalmente dall’azione degli enzimi della membrana. La translocasi aminofosofilidi consente il trasporto di aminoofosbantidi, PS e fosfatidylethanolamina (PE), indirizzando questi lipidi al foglietto interno della cellula. D’altra parte, il floppase trasporta la colina contenente fosfolipidi, fosfatidilcolina (PC) e sphingomyelin (SM), dal volantino interno a quello esterno della membrana cellulare12. Tuttavia, a differenza delle cellule sane, la membrana degli eritrociti erittoticiti è strapazzata. Ciò è dovuto all’azione di un terzo enzima, la scramblase, che interrompe l’asimmetria fosfolipidi facilitando il trasporto bidirezionale degli aminoofolipidi13,14,15,16. La Scramblase viene attivata da livelli intracellulari elevati di Ca2. Pertanto, gli ionofori di calcio, che facilitano il trasporto di Ca2 o attraverso la membrana cellulare12, sono efficienti induttori di eriptosi.

Ionomycin, un ionoforo di calcio, è stato ampiamente utilizzato per indurre eryptosi in eritrocites12,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26. L’ionomicina ha sia gruppi idrofili che idrofobici, che sono necessari per legare e catturare gli ioni Ca2 e trasportarlo nello spazio citosolico27,28,29. Questo porta all’attivazione della scramblase e alla traslocazione di PS al volantino esterno, che può essere facilmente rilevato utilizzando l’allegato-V, una proteina cellulare ad alta affinità con PS12. Sebbene sia comunemente riportata l’eriptosi mediante ionomycina, vi è una notevole discrepanza di metodi nella letteratura (Tabella 1). La popolazione di eritrociti sottoposti a eriptosi dipende da diversi fattori come la concentrazione di ionoforo, il tempo di trattamento con l’ionoforo e il contenuto di zucchero dell’ambiente extracellulare (l’esaurimento del glucosio attiva i canali di cation e facilita l’ingresso di Ca2, nello spazio citoco)30,31. Tuttavia, c’è poca coerenza in questi fattori nella letteratura, rendendo difficile eseguire l’eryptosi riproducibilmente in vitro.

In questo protocollo, presentiamo una procedura passo-passo per indurre l’eriptosi negli eritrociti umani. Vengono esaminati i fattori che influiscono sul successo dell’eryptosi, tra cui la concentrazione di Ca2o, la concentrazione di ionoforo, il tempo di trattamento e la pre-incubazione nel buffer impoverito di glucosio e vengono riportati valori ottimali. Questa procedura dimostra che la pre-incubazione degli eritrociti in un buffer privo di glucosio aumenta significativamente la percentuale di eryptosi rispetto al buffer contenente glucosio. Questo protocollo può essere utilizzato in laboratorio per produrre eritrociti eritotici per varie applicazioni.

Protocol

Tutti i campioni di sangue umano utilizzati nel protocollo descritto di seguito sono stati acquistati come campioni de-identificati. Nessun soggetto umano è stato direttamente coinvolto o reclutato per questo studio. Le linee guida della Dichiarazione di Helsinki dovrebbero essere utilizzate quando la ricerca coinvolge soggetti umani. 1. Isolamento degli eritrociti dal sangue intero Aggiungere 500 l di sangue intero nel citrato acido dextrose (ACD) (conservato a 4 gradi centigradi) …

Representative Results

Ottimizzazione della concentrazione di ionomycina Mentre l’iononomicina è necessaria per indurre l’eriptosi, l’aumento delle concentrazioni di ionomycina può portare all’emolisi (cioè la lisi degli eritrociti e il rilascio di emoglobina), che deve essere evitata. Il trattamento degli erittrociti con 1 .M ionomycin soluzione per 2 h è sufficiente per indurre l’eryptosi, come dimostra l’etichettatura di succes…

Discussion

L’obiettivo di questa procedura è quello di fornire valori ottimali per la concentrazione di ionoforo, il tempo di trattamento e la concentrazione di glucosio extracellulare, che sono fattori importanti per garantire una corretta induzione di eriptosi. Un passo critico nel protocollo è l’esaurimento del glucosio extracellulare, che, nonostante la sua importanza, non è stato sufficientemente sottolineato nella letteratura. Il contenuto di zucchero nella normale soluzione Ringer (5 mM) ha un effetto inibitorio sull’eryp…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione NIH R15ES030140 e dalla concessione NSF CBET1903568. È stato riconosciuto anche il sostegno finanziario del Russ College of Engineering and Technology e del Department of Chemical and Biomolecular Engineering dell’Università dell’Ohio.

Materials

96-well plate Fisher Scientific 12-565-331
Annexin V Alexa Fluor 488 – apoptosis kit Fisher Scientific A10788 Store at 4 °C
BD FACSAria II flow cytometer BD Biosciences 643177
CaCl2 Fisher Scientific C79-500
Centrifuge Millipore Sigma M7157 Model Eppendorf 5415C
Confocal fluorescence microscopy Zeiss, LSM Tek Thornwood Model LSM 510, Argon laser excited at 488 nm for taking images
Cover glasses circles Fisher Scientific 12-545-100
Disposable round bottom flow cytometry tube VWR VWRU47729-566
DMSO Sigma-Aldrich 472301-100ML
DPBS VWR Life Science SH30028.02
Glucose monohydrate Sigma-Aldrich Y0001745
HEPES Buffer (1 M) Fisher Scientific 50-751-7290 Store at 4 °C
Ionomycin calcium salt EMD Milipore Corp. 407952-1MG Dissolve in DMSO to reach 2 mM. Store at -20 °C
KCl Fisher Scientific P330-500
MgSO4 Fisher Scientific M65-500
Microcentrifuge tube Fisher Scientific 02-681-5
NaCl Fisher Scientific S271-500
Plain glass microscope slides Fisher Scientific 12-544-4
Synergy HFM microplate reader BioTek
Whole blood in ACD Zen-Bio Store at 4 °C and warm to 37 °C prior to use

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Cite This Article
Bigdelou, P., Farnoud, A. M. Induction of Eryptosis in Red Blood Cells Using a Calcium Ionophore. J. Vis. Exp. (155), e60659, doi:10.3791/60659 (2020).

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