Цель юаней протокола состоит в том, чтобы сплавить два различных типа клеток для создания гибридных ячеек. Флуоресценция микроскопии анализ сросшиеся клетки используется для отслеживания клетки происхождения клеточных органелл. Этот асссможно использовать для изучения того, как клеточная структура и функция реагируют на возмущение путем слияния клеток.
В липидных мембранах жизнь пространственно разделена, чтобы позволить изолированное образование различных молекулярных состояний внутри клеток и органелл. Слияние клеток представляет собой слияние двух или более клеток для формирования одной клетки. Здесь мы предоставляем протокол для слияния клеток двух различных типов клеток. Сросые гибридные клетки обогащаются сортировкой на основе цитометрии потока, за которой следует флуоресцентная микроскопия структуры и функции гибридных клеток. Флуоресцентно помеченные белки, генерируемые при редактировании генома, образуются внутри сброшенных клеток, что позволяет идентифицировать клеточные структуры на основе выбросов флуоресценции и ссылаться на тип клеточного происхождения. Этот надежный и общий метод может быть применен к различным типам клеток или органеллам, представляющим интерес, чтобы понять клеточную структуру и функции по целому ряду фундаментальных биологических вопросов.
Гомеостасическое поддержание клеточной структуры имеет решающее значение для жизни. Клетки имеют характерные морфологии, субклеточные числа органелл и внутренний биохимический состав. Понимание того, как эти фундаментальные свойства генерируются и как они идут наперекосяк во время болезни, требуют лабораторных инструментов, чтобы возмутить их.
Слияние клеток представляет собой слияние двух или более отдельных клеток. Слияние клеток, возможно, имеет решающее значение для появления эукариотической жизни1. В организме человека, слияние клеток является относительно редким, происходящих во время ограниченных условий развития и типов тканей, таких как во время оплодотворения или формирования мышц, костей и плаценты2. Этот протокол описывает индукцию слияние клеток в линиях клеток культуры ткани с дифференциально флуоресцентно обозначенными органеллами, как инструмент для того чтобы понять механизмы контролируя структуру и функцию клетки.
В пробирке индуцированных клеточных клеток слияния имеет центральное значение для производства моноклональных антител3, важный инструмент для биологических исследований и лечения заболеваний. Слияние клеток также было использовано, чтобы задать много различных фундаментальных клеточных биологических вопросов о доминировании клеточного цикла4, aneuploidy5,6, клеточное перепрограммирование7,8, ремонт поврежденных нейронов9, вирусное пролиферации10, апоптоз11, tumorigenesis12, цитоскелетная динамика13, и мембранного синтеза14,15. Лабораторные методы, чтобы вызвать слияние клеток16,17,18,19 индуцировать липидной мембраны объединения через физическое слияние двух двух слоев в один. Слияние клеток может быть вызвано электричеством18, вирусные методы17, термоплазмонное отопление20, трансгенное выражение19, и химических веществ, включая полиэтиленгликоль (PEG)16,21,22.
Центросомами являются микротубулы, организуя центры, контролирующие клеточную форму, подвижность, поляризацию и деление23. Центросомные корни представляют собой волокнистые структуры, простирающиеся от центросомы, содержащие белок rootletin24 (кодируется геном CROCC). Недавно мы использовали клеточные клетки слияния, чтобы понять, как центросомы положение и число меняется внутри гетерокарионов по отношению к родительским клеткам24. Обоснование использования этого метода заключается в отслеживании клетки происхождения корней в гетерокарионе после слияния дифференциально флуоресцентно отмеченных родительских клеток, и, таким образом, к изображению слиянию и делению органеллы. Флуоресцентно помеченные белки rootletin-meGFP или rootletin-mScarlet-I создаются путем редактирования генома в отдельных клеточных линиях, которые затем сливается с PEG-опосредованного синтеза клеток. Мы описываем использование клеточных красителей(Таблица материалов) для идентификации сросшиеся клетки по цитометрии потока и последующей флуоресценционной микроскопии идентификации центросомной клетки происхождения и морфологии (Рисунок 1). Этот подход является надежным и уникальным методом для изучения того, как основные изменения в клеточном состоянии, включая число органелл посягают на гомеостаз клеток.
Мы демонстрируем поверхностный и экономичный протокол для сплавливки клеток и визуализации последующей архитектуры клеточных гибридов с помощью микроскопии, что занимает около двух дней от начала до конца. Критическими частями этого протокола являются обогащение срослых ячеек сорт?…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была профинансирована Wellcome Trust Генри Wellcome стипендий Р.М. (https://wellcome.ac.uk/grant номер 100090/12 /). Фонднера не принимала никакого значения в разработке, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи. Мы благодарим Ашока Венкитарамана и Пола Френка за критические советы и рекомендации по проекту. Мы благодарим Кьяру Коссетти и Габриэлу Грондис-Котарба в Кембриджском институте медицинских исследований Потока Цитометрии объекта за отличную поддержку. Мы благодарим Лиама Кассидея, Томаса Миллера и Джанмарко Контино за коррективы рукописи.
15 ml tube | Sarstedt | 62554502 | |
37% formaldehyde solution | Sigma-Aldrich | F8875 | |
880 Laser Scanning Confocal Airyscan Microscope | Carl Zeiss | ||
8-well imaging dishes | Ibidi | 80826 | |
Anti-GFP alpaca GFP booster nanobody | Chromotek | gba-488 | |
BD Influx Cell Sorter | BD Biosciences | ||
Bovine serum albumin | Sigma-Aldrich | A7906 | |
Cell Filters (70um) | Biofil | CSS010070 | |
CellTrace Far Red | ThermoFisher Scientific | C34572 | |
CellTrace Violet | ThermoFisher Scientific | C34571 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM), high glucose, GlutaMAX, pyruvate | ThermoFisher Scientific | 31966021 | |
Fetal Bovine Serum | Sigma-Aldrich | 10270-106 | |
FluoTag-X2 anti-mScarlet-I alpaca nanobody | NanoTag Biotechnologies | N1302-At565 | |
L15 CO2 independent imaging medium | Sigma-Aldrich | 21083027 | |
Penicillin/streptomycin | Sigma-Aldrich | 15140122 | |
Phenol red free DMEM, high glucose | ThermoFisher Scientific | 21063029 | |
Phosphate buffered saline (1 x PBS) | 8 g NaCl, 0.2 g KCl, 1.44 g Na2HPO4, 0.24 g KH2HPO4, dH2O up to 1L | ||
Polyethylene Glycol Hybri-Max 1450 | Sigma-Aldrich | P7181 | |
Polypropylene tubes | BD Falcon | 352063 | |
Triton X-100 | Fisher BioReagents | BP151 | nonionic surfactant |
Trypsin | Sigma-Aldrich | T4049 | |
Tween 20 | Fisher BioReagents | BP337 | nonionic detergent |