Eine neuartige drahtlose Technik zur Aufzeichnung extrazellulärer neuronaler Signale aus dem Gehirn frei schwimmender Goldfische wird vorgestellt. Das Aufnahmegerät besteht aus zwei Tetrodes, einem Microdrive, einem neuronalen Datenlogger und einem wasserdichten Gehäuse. Alle Teile sind mit Ausnahme des Datenloggers und seines Anschlusses maßgeschneidert.
Die neuronalen Mechanismen, die das Fischverhalten regeln, bleiben weitgehend unbekannt, obwohl Fische die Mehrheit aller Wirbeltiere ausmachen. Die Fähigkeit, die Gehirnaktivität von frei beweglichen Fischen aufzuzeichnen, würde die Forschung auf der neuronalen Basis des Fischverhaltens erheblich voranbringen. Darüber hinaus ist eine präzise Kontrolle der Aufnahmeposition im Gehirn entscheidend für die Untersuchung koordinierter neuronaler Aktivität über Regionen im Fischhirn hinweg. Hier präsentieren wir eine Technik, die drahtlos aus dem Gehirn frei schwimmender Fische aufzeichnet und gleichzeitig die Tiefe des Aufnahmeortes steuert. Das System basiert auf einem neuronalen Logger, der mit einem neuartigen wasserkompatiblen Implantat verbunden ist, das die Aufnahmeposition durch mikroantriebsgesteuerte Tetrodes einstellen kann. Die Fähigkeiten des Systems werden durch Aufnahmen aus dem Telencephalon von Goldfischen veranschaulicht.
Fische sind die größte und vielfältigste Gruppe von Wirbeltieren, und wie andere Wirbeltiere zeigen sie komplexe kognitive Fähigkeiten wie Navigieren, Geselligkeit, Schlafen, Jagen, etc. Dennoch bleiben die neuronalen Mechanismen, die das Fischverhalten regeln, größtenteils unbekannt.
In den letzten Jahrzehnten wurden vor allem extrazelluläre Aufnahmen von immobilisierten Fischen implementiert, um verschiedene Aspekte der neuronalen Basis des Verhaltens1,2zu untersuchen. Obwohl diese Technik für einige sensorische Systeme geeignet ist, ist die Untersuchung des gesamten Spektrums der neuronalen Verhaltensgrundlage bei immobilisierten Tieren schwierig, wenn nicht gar unmöglich. Die ersten Fortschritte betrafen die Aufnahme von gefesselten Schwimmfischen aus den Mauthner-Zellen3,4. Mauthner-Zellen sind jedoch überproportional groß und die aufgezeichneten Wirkungspotentialamplituden, die bis zu wenige mV erreichen können, erleichtern die Aufnahme. Später beschrieben Canfield et al. einen Proof of Concept, wenn er ein gefesseltes Tier benutzte, um aus dem Telencephalon von Fischen5aufzunehmen. Eine weitere neuere Technik zur Aufzeichnung der neuronalen Aktivität von Fischen ist die Kalzium-Bildgebung (siehe Rezensionen von Orger und de Polavieja6und Vanwalleghem et al.7). Diese Technik wurde für den Einsatz mit Zebrafischlarven entwickelt, da Haut und Schädel während der Larvenphase transparent sind. Diese Technik kann jedoch nicht verwendet werden, um komplexe Verhaltensweisen in späteren Entwicklungsstadien zu untersuchen.
Hier präsentieren wir eine neuartige Technik zur Erfassung extrazellulärer neuronaler Aktivität aus dem Gehirn frei schwimmender Fische. Dies ist eine modifizierte Version des Protokolls, das in Vinepinsky et al.8beschrieben wird. Die wichtigste Innovation ist die Zugabe eines Mikroantriebs, der es ermöglicht, die Position der Elektroden nach der Operation zu steuern. Die Technik wurde für die Aufzeichnung aus dem Telencephalon von Goldfischen mit einer Reihe von Tetroden entwickelt, die über einen Microdrive mit einem neuronalen Datenlogger verbunden sind. Das gesamte Setup ist kabellos und am Schädel des Fisches verankert. Das spezifische Gewicht des Systems wird dem wasserspezifischen Gewicht durch Zugabe eines kleinen Schwimmers ausgeglichen, der es den Fischen ermöglicht, frei zu schwimmen.
Die Technik basiert auf der Verwendung eines neuronalen Datenloggers, der das Signal in einem onboard-Speichergerät verstärkt, digitalisiert und speichert. Das Logger-Telemetriesystem wird verwendet, um die Aufnahmen zu starten und zu stoppen und für die Synchronisation mit der Videokamera. In diesem Protokoll wird ein 16-Kanal-Neural-Logger verwendet, eingebettet in eine wasserdichte Box zusammen mit dem Microdrive.
Die Microdrive-Baugruppe besteht aus zwei Hauptkomponenten: dem Microdrive selbst und dem Microdrive-Gehäuse (Abbildung 1A,B). Das Gehäuse hält den Microdrive und die Tetrodes und fungiert auch als Anker zwischen dem Schädel und der Logger-Box (Abbildung 1C). Die PVC-Loggerbox wird mit einem Maschinenverfahren hergestellt und mit einem O-Ring versiegelt(Abbildung 1E-G, siehe auch Ergänzende Abbildung 1, Ergänzende Abbildung 2und Ergänzende Abbildung 3 für ein dreidimensionales [3D]-Diagramm). An einem Ende wird ein Stück Polystyrolschaum an der Loggerbox befestigt, um das Gewicht des Implantats zu kompensieren und den Fischen ein auftriebsneutrales Implantat zu geben. Die Konstruktion des im Protokoll beschriebenen Mikroantriebs folgt dem von Vandecasteele et al.9 vorgestellten Verfahren mit einer Modifikation, um den Mikroantrieb am Gehäuse zu befestigen (Abbildung 1A). Alle wichtigen Schritte werden vorgestellt.
Das im Protokoll zur Herstellung des Fischschädels beschriebene Verfahren ähnelt dem in Vinepinsky et al.8 vorgestellten verfahren und wird kurz im Protokoll beschrieben. Einen Tag nach der Operation werden die Fische in der Regel vollständig von den Auswirkungen der Anästhesie erholt und sind bereit für die Verhaltensexperimente. Beachten Sie, dass die Tetrode-Position durch Drehen der Microdrive-Schraube eingestellt werden kann. Die Schraube hat einen Abstand von 300 m pro Volldrehung und es wird eine Weiterentwicklung von 75 m empfohlen, bis die Ziel-Gehirnposition erreicht ist. Ein geeigneter Hirnatlas sollte konsultiert werden, um die spezifische Hirnregion von Interesse anzusprechen. Es ist ratsam, die Elektrodenimpedanz jedes Mal zu testen, wenn der Fisch für batterie- oder Speicherkartenersatz beäpftiert wird.
In diesem Protokoll werden die Schritte beschrieben, die bei der Implantation eines Tetrode-Arrays in das Telencephalon frei schwimmender Goldfische erforderlich sind. Diese Technik implementiert einen neuronalen Logger, der die signale aus bis zu 16 Kanälen zusammen mit einem Mikroantrieb verstärkt und aufzeichnet, der die Tetrode-Position im Gehirn anpassen kann. Der Microdrive ermöglicht es, die Position im Gehirn anzupassen, um die Aufnahme zu optimieren.
Dieses Protokoll kann leicht f?…
The authors have nothing to disclose.
Wir danken Nachum Ulanovsky und den Mitgliedern des Ulanovsky-Labors für ihre Hilfe. Darüber hinaus sind wir Tal Novoplansky-Tzur für die hilfreiche technische Unterstützung dankbar. Wir danken Ihnen für die finanzielle Unterstützung durch THE ISRAEL SCIENCE FOUNDATION – FIRST Program (Grant-Nr. 281/15) und den Helmsley Charitable Trust durch die Initiative für landwirtschaftliche, biologische und kognitive Robotik der Ben-Gurion Universität des Negev.
0.7 mm round drill bits | Compatible with the drill. | ||
15-blade Scalpel | Sigma-Aldrich | ||
16 channel PCB board | Neurlynx | EIB-16 | |
1X3M phillips flat head screws | Stainless steel. Any type. | ||
1X3M phillips round head screws | Stainless steel. Any type. | ||
27 cm X 19 cm X 1 mm brass plate | See Figure 2 | ||
2X6M phillips flat head screws | Stainless steel. Any type. | ||
3140 RTV coating | Dow Crowning | 2767996 | |
75 µm Silver wire | A-M Systems | ||
Brass machine screws #00-90 | 947-1006 | ||
Brass plates 7.5mm X 2.5mm X 0.6mm | A 3D drawing is provided. See supplementary 1 | ||
Coated Tungsten wire 25µm | California Fine Wire Company | 5000160 | Depending on the appication the tetrodes can be fabricated from any type of wire. Popular wires are nicrome wires that can be found with lower diameters (eg. A-M systems, 762000) |
Coated Tungsten wire 50µm | A-M Systems | 795500 | Can be replaced with any other wire with low impedance |
Cyanoacrilic glue | |||
Dental Burnisher | ComDent UK | Any small sterille stainless-still tool will do. | |
Dental cement – GCFujiPLUS | GC | 431011 | Other dental cements would probably will work as well although we have never tried any other. |
Dental drill or nail polish drill | Dental drills are expensive, a nail polish drill can be a cheap replacement. | ||
Drill bit #65 | 947-65 | ||
Fast curing epoxy | Any 5 minutes curing epoxy can be used here. | ||
Logger box with O-ring sealing | A 3D drawing is provided. See supplementary 1-3. The box should be machine fabricated (do not use 3D printers). Use transperant material, to be able to see the indicator LEDs on the logger. | ||
Motorized turning device | Custom made as described in "open ephys" website. Can also be purchusaed from neurolynx ("Tetrode Spinner 2.0") or bulit by other means. | ||
Mouselog-16 Neural logger | Deuteron Technologies Ltd | There are several neural loggers available on the market, including: SpikeGadget (UH32 32channels) and Neurologger 2/2A/2B of Alexei Vyssotski. It should be noted that weight is not a major contraint since it can be counterbalanced with floating Styrofoam | |
MS-222 | Sigma Aldrich | E10521 | Ethtl 3-aminobenzoate methanesulfonate 98% |
Nano-Z plating | White Matter LLC | The nano-Z can be bought from several supllieres. Any impedance meter can be used, e.g. IMP-1 / 6662 / 2788, BAK Electronics. | |
PCB pins | Neurlynx | Neuralynx EIB Pins | |
Polymide tubing 250µm | A-M Systems | 822000 | |
Rechargable battery | 3.7 Lipo battery, 370 mAh. Holds about 6 hours of recording. Smaller or larger battries can be used to reduce the weight or extend recording time. | ||
Silicone tubing 0.64 mm | A-M Systems | 806100 | |
Stainless steel 1.5 mm | A-M Systems | 846000 | |
Sudium Bicarbonate | Sigma Aldrich | S9625 | |
Tap #00-90 | 947-1301 | ||
Vaseline | Any type of soft petroleum skin protectant can be used here. |