Células neurales del tallo/progenitor exhiben varias dinámicas de expresión de los componentes de señalización de la muesca que conducen a diferentes resultados de los eventos celulares. Dicha expresión dinámica puede revelarse mediante monitoreo en tiempo real, no mediante análisis estáticos, utilizando un sistema de imágenes de bioluminiscencia altamente sensible que permite la visualización de cambios rápidos en expresiones génicas.
La señalización de muesca regula el mantenimiento de las células madre/progenitoras neuronales mediante interacciones células celulares. Los componentes de la señalización Notch exhiben expresión dinámica. El efector de señalización de muesca Hes1 y el ligando de muesca Delta-like1 (Dll1) se expresan de manera oscilatoria en células neurales del tallo/progenitor. Debido a que el período de la expresión oscilatoria de estos genes es muy corto (2 h), es difícil monitorear su expresión cíclica. Para examinar estos cambios rápidos en la expresión génica o la dinámica de proteínas, se requieren reporteros de respuesta rápida. Debido a su rápida cinética de maduración y alta sensibilidad, el reportero de bioluminiscencia luciferasa es adecuado para monitorear los cambios rápidos en la expresión génica en las células vivas. Usamos un reportero luciferasa desestabilizado para monitorear la actividad promotora y un reportero fusionado con luciferasa para la visualización de la dinámica de proteínas a una sola célula. Estos reporteros de bioluminiscencia muestran una rápida rotación y generan señales muy débiles; por lo tanto, hemos desarrollado un sistema de imágenes de bioluminiscencia altamente sensible para detectar señales tan débiles. Estos métodos nos permiten monitorear varias dinámicas de expresión génica en células y tejidos vivos, que son información importante para ayudar a entender los estados celulares reales.
El cerebro de los mamíferos se compone de un gran número de varios tipos de neuronas y células gliales. Todas las células se generan a partir de células neurales madre/progenitoras (NNP), que primero proliferan para expandir sus números, luego comienzan a diferenciarse en neuronas, y finalmente dan lugar a células gliales1,2,3,4,5. Una vez que las células se han diferenciado en neuronas, no pueden proliferar o aumentar su número, y, por lo tanto, el mantenimiento de los PNJ hasta etapas posteriores es importante. La señalización de muesca a través de interacciones célula-célula desempeña un papel importante en el mantenimiento de los PNJ6,7. Los ligandos de muesca interactúan con la proteína de membrana, Notch, en la superficie de las células vecinas y activa la proteína Notch. Después de la activación, se produce proteólisis de la proteína Notch, liberando así el dominio intracelular de Notch (NICD) de la membrana celular en el núcleo8,9,10. En el núcleo, NICD se une a las regiones promotoras de Hes1 y Hes5 (Hes1/5) y activa la expresión de estos genes. Hes1/5 reprime la expresión de los genes proneurales Ascl1 y Neurogenin1/2 (Neurog1/2)11,12,13,14. Debido a que los genes proneurales inducen la diferenciación neuronal, Hes1/5 desempeña un papel esencial en el mantenimiento de los PNJ. Además, como los genes proneurales pueden activar la expresión del ligando Delatal como 1 (Dll1), Hes1/5 también reprime la expresión de Dll1. Por lo tanto, la expresión de Dll1 conduce a que las celdas vecinas sean negativas para Dll1 a través de la señalización Notch. De esta manera, las células inhiben que las células adyacentes sigan su mismo destino, un fenómeno conocido como inhibición lateral8. En el cerebro en desarrollo, la inhibición lateral juega un papel en la generación de varios tipos de células diferentes.
La imagen en tiempo real a nivel de celda única revela expresiones dinámicas de los componentes de la señalización Notch en NPC15,16,17. La señalización de muesca activa la expresión de Hes1,pero la proteína Hes1 se une a su propio promotor y reprime su propia expresión. Además, Hes1 es una proteína extremadamente inestable, que se degrada por la vía ubiquitina-proteasoma; por lo tanto, la represión de su propio promotor es sólo de corta duración y luego la transcripción comienza de nuevo. De esta manera, la expresión de Hes1 oscila tanto a nivel de transcripción como traslacional en un ciclo de 2 h18. La expresión oscilatoria de Hes1, a su vez, induce la expresión oscilatoria de los genes diana aguas abajo, como Ascl1, Neurog2 y Dll1, a través de la represión periódica15,16,17,19. Mientras que los genes proneurales pueden inducir la diferenciación neuronal, su expresión oscilatoria no es suficiente para la diferenciación neuronal; más bien su expresión sostenida es esencial para la diferenciación neuronal. La expresión oscilatoria de genes proneurales es importante para mantener los PNJ en lugar de inducir la diferenciación neuronal14,15,16. La expresión de Dll1 oscila tanto a nivel de transcripción como traslacional durante diversas morfogénesis, como la neurogénesis y la somitogénesis. La expresión dinámica de Dll1 es importante para la morfogénesis normal y la expresión constante de Dll1 induce defectos en la neurogénesis y la somitogénesis17. Estos hallazgos demuestran la importante función que la dinámica de la expresión génica y la cinética proteica tienen en la regulación de diversos eventos de desarrollo (es decir, diferentes dinámicas de expresión producen diferentes resultados en los comportamientos celulares).
Para analizar la dinámica de la señalización de la muesca, el análisis estático de los tejidos y las células es insuficiente porque están cambiando constantemente. La toma de imágenes en tiempo real de células individuales es una poderosa herramienta para revelar la dinámica en la expresión génica. La expresión dinámica de las moléculas de señalización de Notch sufre respuestas cíclicas rápidas en el período de 2-3 h. Esta rápida expresión periódica presenta dos problemas difíciles para el monitoreo en tiempo real: (1) la expresión de las moléculas se suprime a niveles bajos, y (2) la rotación rápida requiere reporteros de respuesta rápida. Para superar estos problemas, previamente desarrollamos un método de imagen en tiempo real de bioluminiscencia20. Debido a que el reportero de bioluminiscencia tiene una mayor sensibilidad y un tiempo de maduración más corto que los reporteros fluorescentes, esta estrategia nos permite monitorear la dinámica rápida en las células vivas. Usando la visualización en tiempo real, encontramos que más genes mostraban una expresión dinámica de lo que habíamos pensado anteriormente. Además, ha aumentado el número de informes que muestran la expresión y la dinámica de proteínas en las células vivas y la importancia de estas dinámicas en diversos eventos biológicos, lo que sugiere un papel fundamental de la dinámica en las expresiones génicas21,22.
En este informe, se describe una manera de visualizar la expresión del ligando de la muesca Dll1 en los NNJ tanto en cultivos disociados como en cultivos de sectores corticales. Para monitorear la dinámica de la transcripción de Dll1 a niveles de una sola célula, generamos cultivos disociados de PNJ derivados del telencéfalo embrionario de ratones transgénicos que transportaban a un reportero pDll1-Ub-Fluc, un reportero de luciferasa desestabilizado impulsado por el promotor de Dll1. Para monitorear la dinámica de proteínas Dll1 in vivo, introdujimos el reportero de fusión Dll1-Fluc en los PNJ en la corteza y visualizamos la expresión del reportero en los PNJ en cultivos de rebanadas corticales. Las imágenes en tiempo real nos permitieron capturar las diversas características de la expresión génica y la dinámica de proteínas en células vivas a alta resolución temporal.
Los componentes de la señalización Notch muestran expresiones oscilatorias en sincronía durante la somitogénesis pero fuera de sincronía durante la neurogénesis, lo que lleva a las dificultades para capturar la dinámica de expresión mediante análisis estático en este último caso. Por lo tanto, se requiere monitoreo en tiempo real para revelar la dinámica de expresión de los componentes de señalización Notch, como Hes1 y Dll1. Debido a que los períodos de las expresiones de las oscilacion…
The authors have nothing to disclose.
Agradecemos a Yumiko Iwamoto por apoyar la producción del vídeo. También estamos agradecidos a Akihiro Isomura por la discusión y los apoyos del análisis de imágenes, Hitoshi Miyachi por apoyos técnicos para la generación de animales transgénicos, Yuji Shinjo (Olympus Medical Science), Masatoshi Egawa (Olympus Medical Science), Takuya Ishizu ( Olympus Medical Science) y Ouin Kunitaki (Andor Japan) para el apoyo técnico y las discusiones del sistema de imágenes de bioluminiscencia. Este trabajo fue apoyado por Core Research for Evolutional Science and Technology (JPMJCR12W2) (R.K.), Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Areas (MEXT 24116705 for H.S. y MEXT 16H06480 for R.K.), Grant-in-Aid for Scientific Research (C) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS) (JSPS 18K06254) (H.S.), Fundación Takeda (R.K. y H.S.), y Plataforma para Enfoques Dinámicos al Sistema Vivo del Ministerio de Educación, Cultura, Deportes, Ciencia y Tecnología, Japón.
Bioluminescence Imaging System | |||
Chilled water circulator (chiller) | Julabo | Model: F12-ED | |
Cooled CCD camera | Andor Technology | Model: iKon-M 934 | |
Incubator system | TOKAI HIT | Model: INU-ONICS | |
Inverted microscope | Olympus | Model: IX81 | |
Inverted microscope | Olympus | Model: IX83 | |
LED illumination device | CoolLED | Model: pE1 | |
MetaMorph | MOLECULAR DEVICES | Model: 40000 | |
Mix gas controller | Tokken | Model: TK-MIGM OLO2 | |
Objective lens | Olympus | Model: UPLFLN 40X O | |
Preparations for Dissection | |||
Dissection microscope | Nikon | Model: SMZ-2B | |
Fluorescence stereoscopic microscope | Leica | Model: MZ16FA | |
Fine forceps | DUMONT | INOX No.5 | |
Scissors, Micro scissors | |||
Forceps | |||
Ring-shaped forceps | |||
10-cm plastic petri dish | greiner | 664160-013 | |
35-mm plastic petri dish | greiner | 627160 | |
PBS | Nacalai Tesque | 14249-24 | |
DMEM/F12 | invitrogen | 11039-021 | |
Reagents for NPC dissociation culture | |||
B27 supplement | invitrogen | 12587-010 | |
bFGF | invitrogen | 13256-029 | Stock solution: 1 μg/ml in 0.1% BSA/PBS |
D-luciferin | Nacalai Tesque | 01493-85 | Stock solution: 100mM in 0.9% saline |
DNase | Worthington Biochemical Corporation | LK003172 | Stock solution: 1000U/ml in EBSS |
EBSS | Worthington Biochemical Corporation | LK003188 | |
Glass bottom dish | IWAKI | 3910-035 | |
N2 supplement (100x) | invitrogen | 17502-048 | |
N-acetyl-cystein | Sigma | A-9165-25G | |
Papain | Worthington Biochemical Corporation | LK003178 | Stock solution: 7U/ml in EBSS |
Penicillin/Streptmycine | Nacalai Tesque | 09367-34 | |
Poly-L-lysine | Sigma | P-6281 | 40 mg/ml in DW |
Preparations for in utero electroporation | |||
50-ml syringe | TERUMO | 181228T | |
Electrode | Neppagene | 7-mm | |
Electroporator | Neppagene | CUY21 EDIT | |
Forceps | |||
Gauzes | Kawamoto co. | 7161 | |
Micro capillary | Made in-house | ||
PBS | Nacalai Tesque | 14249-24 | |
Pentbarbital | Kyoritsuseiyaku | Somnopentyl | |
Ring-shaped forceps | |||
Scissors, Micro scissors | |||
Suture needle | Akiyama MEDICAL MFG. CO | F17-40B2 | |
Xylazine | Bayer | Seractal | |
Preparations for Slice culture | |||
10-cm plastic petri dish | greiner | 664160-013 | |
35-mm plastic petri dish | greiner | 627160 | |
Culture insert | Millipore | PICM01250 | |
DMEM/F12 | invitrogen | 11039-021 | |
Fetal Bovine Serum | Sigma | 172012-500ML | |
Fine forceps | DUMONT | INOX No.5 | |
Forceps | |||
Horse Serum | Gibco | 16050-122 | |
Micro surgical knife | Alcon | 19 Gauge V-Lance | |
Multi-gas incubator | Panasonic | MCO-5MUV-PJ | |
N2/B27 media | Made in-house | ref. NPC dissociatioin culture | |
PBS | Nacalai Tesque | 14249-24 | |
Ring-shaped forceps | |||
Scissors, Micro scissors | |||
Silicon rubber cutting board | Made in-house |