Este protocolo apresenta uma plataforma integrada de espectroscopia-massa raman (EM) que é capaz de alcançar a resolução unicelular. A espectroscopia raman pode ser usada para estudar a resposta celular aos medicamentos, enquanto a EM pode ser usada para análise direcionada e quantitativa da captação e metabolismo de medicamentos.
As células são conhecidas por serem inerentemente heterogêneas em suas respostas às drogas. Portanto, é essencial que a heterogeneidade unicelular seja contabilizada em estudos de descoberta de medicamentos. Isso pode ser alcançado medindo com precisão a infinidade de interações celulares entre uma célula e uma droga no nível unicelular (ou seja, captação de drogas, metabolismo e efeito). Este artigo descreve uma plataforma de espectroscopia e espectrometria de massa (EM) de ramano para monitorar alterações metabólicas de células em resposta a drogas. Usando esta plataforma, as mudanças metabólicas em resposta à droga podem ser medidas pela espectroscopia de Raman, quando a droga e seu metabolito puderem ser quantificados usando a espectrometria maciça na mesma pilha. Os resultados sugerem que é possível acessar informações sobre captação de drogas, metabolismo e resposta em um nível unicelular.
As células respondem de forma diferente às mudanças em seu microambiente no nível unicelular, um fenômeno denominado heterogeneidade celular1. Apesar disso, os estudos atuais de descoberta de medicamentos são baseados em medições médias de populações celulares, que ofuscam informações sobre potenciais subpopulações, bem como variações unicelulares2. Esta informação ausente pode explicar por que algumas células são mais suscetíveis a drogas, enquanto outros são resistentes. Curiosamente, a falta de informações unicelulares sobre a resposta a medicamentos é uma possível razão para o fracasso dos ensaios clínicos de fase II dos medicamentos3. Portanto, para resolver esse problema, as interações celulares com a droga (ou seja, captação, metabolismo e resposta) devem ser medidas no nível unicelular.
Para conseguir isso, nós projetamos um sistema único em que as células únicas vivas são rastreadas usando espectroscopia Raman sem rótulo, em seguida, caracterizado ainda mais usando espectrometria de massa4. A espectroscopia de Raman fornece uma impressão digital molecular do estado celular, um espectro complexo resultante das contribuições de muitas moléculas dentro da célula. Apesar dessa complexidade, pode-se considerar que as impressões digitais de Raman refletem a estrutura eometabolismo de uma célula inteira5,6. A espectroscopia raman se destaca na medição de estados celulares de forma não invasiva e relativamente alta, o que o torna útil para triagem e avaliação da resposta a medicamentos no nível unicelular.
Em contraste, a EM fornece a sensibilidade e a seletividade necessárias para medir a captação de medicamentos no nível unicelular. Como a EM é destrutiva (a amostra [célula] é normalmente consumida durante a análise), integrá-la com espectroscopia Raman não destrutiva e sem rótulos pode fornecer uma alta sobre-oferta e um sistema sensível. Esta plataforma combinada é capaz de fornecer mais informações sobre a captação de drogas, metabolismo e efeitos no nível unicelular.
Este manuscrito elucida um protocolo usado para estudar as interações celulares com drogas no nível unicelular usando culturas in vitro usando uma plataforma Raman-MS integrada. Para fazer isso, as células carcinoma hepatocelular (HepG2) e tamoxifeno são usadas como modelo. As células hepG2 foram escolhidas porque ocupam tamoxifeno e metabolizar a droga, e eles são simultaneamente afetados devido aos seus efeitos hepatotóxicos. Dois estados são usados neste manuscrito: células tratadas com drogas versus células não tratadas (controle).
Neste manuscrito, um caso simples foi escolhido em que as células HepG2 foram expostas (ou não) ao tamoxifeno. A capacidade de um sistema de espectroscopia e espectrometria de massa ramano é demonstrada para monitorar os efeitos do tamoxifeno nas células. A espectroscopia de Raman permitiu a identificação de potenciais biomarcadores que refletiam uma resposta geral de células individuais à exposição a medicamentos. Alguma heterogeneidade entre as células únicas foi observada, sugerindo que algumas células não responderam à exposição à droga. Por outro lado, o LSC-MS foi capaz de realizar uma análise direcionada da droga e seu metabólito no nível unicelular, no qual um alto grau de heterogeneidade foi observado na droga e em sua abundância de metabólitos. Esta heterogeneidade ajuda a explicar por que algumas células são afetadas pela droga, enquanto outros aparentemente não são, apesar das células provenientes de uma população supostamente uniforme12.
Entre os aspectos específicos desta técnica que requerem atenção, é importante avaliar a qualidade da configuração do microscópio e processamento de sinal para garantir a reprodutibilidade dos dados. Se o pré-processamento dos espectros for feito com cuidado, as variações de sinal devem ser maximizadas no máximo local de cada pico. Por outro lado, a linha de base e a borda dos espectros devem sobrepor-se entre as condições celulares testadas. Outro aspecto importante é o modelo multivariado utilizado para investigar as diferenças entre os tratamentos. É preciso avaliar cuidadosamente os modelos e parâmetros do modelo para garantir uma análise precisa e precisa. Uma vantagem do modelo PLS, ao contrário das redes neurais, é que ele permite o acesso aos pesos associados a cada comprimento de onda (mudanças de Raman) que melhor distinguem as condições testadas pelo modelo.
Apesar da espectroscopia de Raman discriminar com sucesso a resposta da droga, deve-se salientar que esta técnica é limitada em seu uso para fornecer interpretação biológica. Isto é principalmente devido à complexidade do sinal espectral, que abrange uma mistura de milhares de moléculas. Portanto, é necessária uma investigação mais aprofundada para avaliar as variações sistemáticas entre as intensidades espectrais de Raman e as variações nas concentrações de medicamentos. Além disso, estudos semelhantes de outras linhas celulares são necessários para avaliar a generalização de biomarcadores espectrais associados ao tamoxifeno.
Além disso, pode ser de interesse realizar medições de tecidos vivos para avaliar a farmacodinâmica e estudar como as drogas penetram e fluem dentro de cada célula. Além disso, deve-se notar que o passo de amostragem no LSC-MS é altamente dependente da habilidade do operador. Parâmetros como resolução espacial, posição celular dentro do capilar após a amostragem e força de taxa de produção são totalmente dependentes do operador, o que limita a adoção em larga escala do LSC-MS. Embora, sistemas automatizados de amostragem possam aliviar esse problema. Além disso, enquanto o LSC-MS se destaca na amostragem de células aderentes ou flutuantes em seus estados nativos, ele executa mais mal em células de amostragem incorporadas em seções de tecidos. Isto é devido à tendência da ponta capilar da amostragem quebrar se a densidade da amostra é elevada. Portanto, outra abordagem, como a sonda única, pode ser mais adequada nesses casos14,15.
Como as células aqui utilizadas são amostradas em condições ambientais com preparação mínima de amostras, o LSC-MS pode ser facilmente integrado com outras tecnologias, como mostra sua integração com Raman neste protocolo. Outra integração semelhante com a holografia 3D permitiu alcançar a quantidade absoluta de metabólitos celulares no nível subcelular16. Além disso, a integração com citometria de fluxo permitiu a descoberta de biomarcadores metabólicos em células tumorais circulantes únicas de pacientes com câncer de neuroblastoma17,18.
No futuro, devido ao recente crescente interesse em combinar conjuntos de dados das modalidades de imagem19,também pode ser de interesse estudar as variações sistemáticas entre os sinais de Raman e os resultados da espectrometria de massa (bem como outros métodos omics) usando abordagens computacionais integrativas. Curiosamente, já encontramos várias correlações lineares fracas, mas significativas, entre as intensidades dos picos de Raman identificadas pelas pontuações VIP e a abundância de tamoxifeno ou seu metabólito no nível unicelular, conforme identificado pela MS4. Esses dados podem sugerir uma relação metabólica entre os perfis de EM e os espectros de Raman e a possibilidade de prever esses valores.
The authors have nothing to disclose.
Os autores agradecem toshio yanagida por seu apoio e RIKEN fundos colaborativos internos atribuídos ao Dr. Arno Germond.
0.1% penicillin-streptomycin | Nacalai Tesque | 09367-34 | |
35mm glass bottom grid dish | Matsunami | ||
4-Hydroxy Tamoxifen standard | Sigma-Aldrich | 94873 | |
532 nm diode pumped solid-state laser | Ventus, Laser Quantum | ||
BIOS-L101T-S motorized microscope stage | OptoSigma | ||
CT-2 cellomics coated sampling capillaries | HUMANIX | ||
d5-Tamoxifen standard | Cambridge Isotope Laboratories | ||
Dimethyl sulfoxide LC-MS grade | Nacalai Tesque | D8418 | |
Dulbecco's Modified Eagle's medium | Sigma-Aldrich | D5796 | |
Eppendorf GELoader tips | Eppendorf | ||
fetal bovine serum | Hyclone laboratories | SH3006603 | |
FluoroBrite DMEM | Thermo Fisher Scientific | ||
Formic acid LC-MS grade | Sigma-Aldrich | 33015 | |
HepG2 cell line (RCB1886) | RIKEN cell bank center | RCB1886 | |
MC0-19A1C Incubator | Sanyo Electric Co. | MC0-19A1C | |
Methanol LC-MS grade | Sigma-Aldrich | 1060352500 | |
MMO-203 3-D Micromanipulator | Narshige | MMO-203 | |
NA:0.95, UPL40 water-immersion Olympus objective lens | Olympus | ||
Nanoflex nano-ESI adaptor | Thermo Fisher Scientific | ES071 | |
On-stage incubator | ibidi | ||
Pierce LTQ Velos ESI calibration solution | Thermo Fisher Scientific | 88323 | |
PIXIS BR400 cooled CCD camera | Princeton Instruments | ||
Q-Exactive Orbitrap | Thermo Fisher Scientific | ||
Rat-tail collagen coating solution | Cell Applications Inc. | ||
Tamoxifen standard | Sigma-Aldrich | 85256 |