Summary

Supervivencia de células Purkinje en cultivos de rebanadas de cerebeloso organotípico

Published: December 18, 2019
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Summary

Los cultivos de rodajas organotípicas son una poderosa herramienta para estudiar los procesos neurodesarrollo o degenerativos/regenerativos. Aquí, describimos un protocolo que modela la muerte del neurodesarrollo de las células de Purkinje en cultivos de rebanadas cerebelosas de ratón. Este método puede beneficiar la investigación en el descubrimiento de fármacos neuroprotectores.

Abstract

El cultivo de rebanadas organotípicas es un potente modelo in vitro que imita las condiciones in vivo más de cerca que los cultivos celulares primarios disociados. En el desarrollo postnatal temprano, se sabe que las células de Purkinje cerebelosas pasan por un período vulnerable, durante el cual se someten a muerte celular programada. Aquí, proporcionamos un protocolo detallado para realizar la cultura de corte cerebelosa organotípico de ratón durante este momento crítico. Las rodajas se etiquetan además para evaluar la supervivencia celular de Purkinje y la eficacia de los tratamientos neuroprotectores. Este método puede ser extremadamente valioso para detectar nuevas moléculas neuroactivas.

Introduction

El modelado in vitro es una herramienta esencial en la investigación biomédica. Permite a los investigadores estudiar y controlar estrechamente mecanismos específicos en tipos de células restringidas, o en sistemas u órganos aislados. El cultivo de rebanadas organotípicas es una técnica in vitro ampliamente utilizada, especialmente en el campo de la neurociencia1. El método fue establecido por primera vez por El sr. G-hwiler, que cultivaba rebanadas cerebrales usando la técnica de tubo de rodillo2,y más tarde modificado por Yamamoto et al., que introdujeron el uso de una membrana microporosa para realizar cultivos de rebanadas corticales3. En comparación con los cultivos celulares primarios, los cultivos de rebanadas organotípicas presentan la ventaja de preservar la citoarquitectura del tejido, así como las conexiones celulares nativas en el plano de la sección del tejido.

Las rebanadas organotípicas se han cultivado desde muchas partes del sistema nervioso central, como el hipocampo4,la corteza5,el estriado6,el cerebelo4,7,y la médula espinal8,9,entre otros. Se ha demostrado que son una herramienta poderosa en los estudios de descubrimiento de fármacos10. Los efectos de las moléculas neuroactivas se pueden evaluar de muchas maneras: supervivencia y neurodegeneración mediante inmunomanchas y ensayos bioquímicos, formación de circuitos neuronales, o interrupción mediante electrofisiología y imágenes en vivo.

El objetivo de este trabajo es describir un método simple para realizar el cultivo organotípico de rodajas cerebelosas, que se sabe que es un modelo relevante para imitar el desarrollo cerebeloso in vitro. Particularmente, nos centramos en el estudio de la muerte del desarrollo celular de Purkinje. In vivo, las células de Purkinje se someten a apoptosis durante la primera semana postnatal, alcanzando su punto máximo en el día postnatal 3 (P3)11. El mismo patrón se observa en el cultivo de rodajas cerebelosas, con las neuronas Purkinje muriendo por apoptosis cuando la cerebella se toma de animales entre P1 y P8, con un pico en P34,12. El uso de los cultivos organotípicos de rodajas cerebelosas ha permitido identificar varias moléculas neuroprotectoras7,13, así como la comprensión de parte de los mecanismos involucrados en esta muerte celular programada14,15,16. Aquí, describimos un protocolo basado en el estudio de Stoppini et al.17 en el hipocampo, y adaptado al cerebelo por Dusart et al.4 Incluye disección rápida y corte de cerebella postnatal; cultivo de corte en un inserto de cultivo celular que contiene una membrana microporosa, con o sin tratamiento neuroprotector; y la tinción de inmunofluorescencia para evaluar la supervivencia neuronal.

Protocol

Todos los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con el comité de estudios de animales de la Universidad Northwestern. 1. Preparación previa a cultivos organotípicos de rodajas cerebelosas En una campana de cultivo celular rociada con 70% de etanol de antemano, prepare 200 ml de medio de cultivo en un filtro de vacío de 250 ml de botella-tapa unido a un receptor de botella estéril. Añadir 100 ml de águila basal media (BME), 50 ml de solución salina equilibrada de …

Representative Results

Como se muestra en la Figura 4, este protocolo produce cultivos organotípicos de rodajas cerebelosas en los que se puede evaluar la supervivencia celular de Purkinje siguiendo los pasos de inmunofluorescencia y adquisición de imágenes. Las células purkinje fueron etiquetadas con una combinación de anticuerpos anti-Calbindin D-28K (dilución 1/200) y Alexa594 anti-ratón (dilución 1/300). La costura de imágenes se realizó automáticamente mediante el software de adquisición de micros…

Discussion

El cultivo de rodajas cerebelosa es una poderosa herramienta para estudiar la muerte celular programada de Purkinje durante el desarrollo postnatal. Esta técnica se puede utilizar para examinar rápidamente las moléculas candidatas para su potencial neuroprotector. La principal ventaja es que la configuración es simple y muy rentable, y sólo requiere una inversión modesta en equipos (un vibratome puede costar hasta 3 veces más que un helicóptero de tejido). Además, se pueden generar de 10 a 15 rodajas sanas a par…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

El trabajo por imágenes se realizó en el Northwestern University Center for Advanced Microscopy con el apoyo generoso de NCI CCSG P30 CA060553 otorgado al Centro Integral del Cáncer Robert H Lurie. Agradecemos a Sean McDermott por su asistencia técnica y apoyo, y maya Epstein por las ilustraciones dibujadas a mano que se muestran en la Figura 1.

Materials

Alexa Fluor 594 Donkey anti-Mouse IgG secondary antibody ThermoFisher scientific A21203
Basal Medium Eagle (BME) ThermoFisher scientific 21010046
Biosafety cabinet Class II, Type A2 NuAire NU-540-400
Bovine serum albumin Millipore Sigma A2153
Brush
anti-Calbindin D-28K antibody (CB-955) Abcam ab82812
CO2 Incubator NuAire NU-5700
Corning Costar Flat Bottom 6-well Cell Culture Plates Fisher Scientific 07-200-83
Coverslips, 22 x 50 mm Fisher Scientific 12-545-E
Dressing forceps, straight Harvard Apparatus 72-8949
Double edge blades Fisher Scientific 50949411
Ethanol 200 proof Decon Labs, Inc 2701
Eye Scissors, straight Harvard Apparatus 72-8428
Fine forceps Fisher Scientific 16-100-127
L-Glutamine 100X ThermoFisher scientific 25030149
Glucose solution ThermoFisher scientific A2494001
Hanks’ Balanced Salt Solution ThermoFisher scientific 14025092
Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate Fisher Scientific H21492
Horse Serum, heat inactivated, New Zealand origin ThermoFisher scientific 26050088
ImageJ
McIlwain Tissue Chopper Fisher Scientific NC9914528
Microprobes Fisher Scientific 08-850
Millicell Cell Culture Inserts Millipore Sigma PICM0RG50
Nalgene Rapid-Flow Sterile Disposable Filter Units with PES Membrane, 250 mL ThermoFisher scientific 168-0045
Nikon A1R confocal laser microscope system Nikon
NIS-Elements Imaging Software Nikon
Paraformaldehyde Acros Organics 41678-0010
Pasteur pipets Fisher Scientific 13-678-20D
Potassium Chloride Fisher Scientific BP366-500
ProLong Gold Antifade Mountant ThermoFisher scientific P10144
Operating Scissors, straight Harvard Apparatus 72-8403
Orbital shaker Belly Dancer IBI Scientific BDRLS0003
Prism 8 GraphPad
Superfrost Plus Microscope Slides Fisher Scientific 12-550-15
Tissue Culture Dish, 60 mm w/ grip ring Fisher Scientific FB012921
Tissue culture plate, 24 well Falcon/Corning 353047
Transfer pipettes, sterile ThermoFisher scientific 13-711-21
Triton X-100 ThermoFisher scientific BP151-500

References

  1. Humpel, C. Organotypic brain slice cultures: A review. Neuroscience. 305, 86-98 (2015).
  2. Gahwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 4 (4), 329-342 (1981).
  3. Yamamoto, N., Kurotani, T., Toyama, K. Neural connections between the lateral geniculate nucleus and visual cortex in vitro. Science. 245 (4914), 192-194 (1989).
  4. Dusart, I., Airaksinen, M. S., Sotelo, C. Purkinje cell survival and axonal regeneration are age dependent: an in vitro study. Journal of Neuroscience. 17 (10), 3710-3726 (1997).
  5. Wiegreffe, C., Feldmann, S., Gaessler, S., Britsch, S. Time-lapse Confocal Imaging of Migrating Neurons in Organotypic Slice Culture of Embryonic Mouse Brain Using In Utero Electroporation. Journal of Visualized Experiments. (125), e55886 (2017).
  6. Daviaud, N., et al. Modeling nigrostriatal degeneration in organotypic cultures, a new ex vivo model of Parkinson’s disease. Neuroscience. 256, 10-22 (2014).
  7. Ghoumari, A. M., et al. Mifepristone (RU486) protects Purkinje cells from cell death in organotypic slice cultures of postnatal rat and mouse cerebellum. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (13), 7953-7958 (2003).
  8. Labombarda, F., et al. Neuroprotection by steroids after neurotrauma in organotypic spinal cord cultures: a key role for progesterone receptors and steroidal modulators of GABA(A) receptors. Neuropharmacology. 71, 46-55 (2013).
  9. Gao, P., et al. P2X7 receptor-sensitivity of astrocytes and neurons in the substantia gelatinosa of organotypic spinal cord slices of the mouse depends on the length of the culture period. Neuroscience. , 195-207 (2017).
  10. Sundstrom, L., Morrison, B., Bradley, M., Pringle, A. Organotypic cultures as tools for functional screening in the CNS. Drug Discovery Today. 10 (14), 993-1000 (2005).
  11. Jankowski, J., Miething, A., Schilling, K., Baader, S. L. Physiological purkinje cell death is spatiotemporally organized in the developing mouse cerebellum. Cerebellum. 8 (3), 277-290 (2009).
  12. Ghoumari, A. M., Wehrle, R., Bernard, O., Sotelo, C., Dusart, I. Implication of Bcl-2 and Caspase-3 in age-related Purkinje cell death in murine organotypic culture: an in vitro model to study apoptosis. European Journal of Neuroscience. 12 (8), 2935-2949 (2000).
  13. Ghoumari, A. M., Wehrle, R., De Zeeuw, C. I., Sotelo, C., Dusart, I. Inhibition of protein kinase C prevents Purkinje cell death but does not affect axonal regeneration. Journal of Neuroscience. 22 (9), 3531-3542 (2002).
  14. Ghoumari, A. M., et al. Neuroprotective effect of mifepristone involves neuron depolarization. FASEB Journal. 20 (9), 1377-1386 (2006).
  15. Repici, M., Wehrle, R., Antoniou, X., Borsello, T., Dusart, I. c-Jun N-terminal kinase (JNK) and p38 play different roles in age-related Purkinje cell death in murine organotypic culture. Cerebellum. 10 (2), 281-290 (2011).
  16. Rakotomamonjy, J., Ghoumari, A. M. Brain-Derived Neurotrophic Factor Is Required for the Neuroprotective Effect of Mifepristone on Immature Purkinje Cells in Cerebellar Slice Culture. International Journal of Molecular Sciences. 20 (2), (2019).
  17. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 37 (2), 173-182 (1991).
  18. Linkert, M., et al. Metadata matters: access to image data in the real world. Journal of Cell Biology. 189 (5), 777-782 (2010).
  19. Uesaka, N., et al. Organotypic coculture preparation for the study of developmental synapse elimination in mammalian brain. Journal of Neuroscience. 32 (34), 11657-11670 (2012).
  20. Falsig, J., et al. Prion pathogenesis is faithfully reproduced in cerebellar organotypic slice cultures. PLoS Pathogens. 8 (11), 1002985 (2012).
  21. Bouslama-Oueghlani, L., Wehrle, R., Sotelo, C., Dusart, I. The developmental loss of the ability of Purkinje cells to regenerate their axons occurs in the absence of myelin: an in vitro model to prevent myelination. Journal of Neuroscience. 23 (23), 8318-8329 (2003).
  22. Apuschkin, M., Ougaard, M., Rekling, J. C. Spontaneous calcium waves in granule cells in cerebellar slice cultures. Neuroscience Letters. 553, 78-83 (2013).
  23. Audinat, E., Knopfel, T., Gahwiler, B. H. Responses to excitatory amino acids of Purkinje cells’ and neurones of the deep nuclei in cerebellar slice cultures. Journal of Physiology. 430, 297-313 (1990).

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Cite This Article
Rakotomamonjy, J., Guemez-Gamboa, A. Purkinje Cell Survival in Organotypic Cerebellar Slice Cultures. J. Vis. Exp. (154), e60353, doi:10.3791/60353 (2019).

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