Summary

Производство, кристаллизация и структурное определение мкножеского домена NEMO, имеющего обязательную силу IKK

Published: December 28, 2019
doi:

Summary

Мы описываем протоколы для определения структуры IKK-обязательной области NEMO с помощью рентгеновской кристаллографии. Методы включают экспрессию белка, очищение и характеристику, а также стратегии успешной оптимизации кристалла и определения структуры белка в его несвязанной форме.

Abstract

NEMO – это белок, который играет важную роль на пути NF-ЗБ, собирая IKK-комплекс с киназами IKK и IKK. После активации комплекс IKK фосфорилатирует молекулы I’B, ведущие к ядерной транслокации NF-‘B и активации генов-мишеней. Ингибирование взаимодействия NEMO/IKK является привлекательной терапевтической парадигмой для модуляции активности пути NF-ЗВ, что делает NEMO мишенью для проектирования и открытия ингибиторов. Чтобы облегчить процесс обнаружения и оптимизации ингибиторов NEMO, мы разработали улучшенную конструкцию связывающей области NEMO, которая позволила бы определить структуру белка в форме апо и при этом привязанных к небольшим молекулярным ингибитогам веса. Здесь мы представляем стратегию, используемую для проектирования, выражения и структурной характеристики мкноэ, имеющей обязательную область NEMO. Белок выражается в клетках кишечной палочки, растворяется в условиях денатурирования и очищается через три хроматографических шага. Мы обсуждаем протоколы получения кристаллов для определения структуры и описываем стратегии сбора и анализа данных. Протоколы найдут широкое применимость к структурному определению комплексов ИНГибиторов NEMO и малых молекул.

Introduction

Путь НФ-ЗБ активируется в ответ на различные стимулы, включая цитокины, микробные продукты и стресс, для регулирования экспрессии генов-мишеней, ответственных за воспалительный и иммунный ответ, гибель клеток или выживание и пролиферацию1. Патологии, включая воспалительные и аутоиммунные заболевания и рак2,3,4,5 были коррелированы с гиперактивацией пути, что сделало модуляцию деятельности NF-QB основной мишенью для разработки новых методов лечения6,7.

Канонический путь NF-QB, в частности, отличается от неканонического пути, ответственного за лимфорганогенез и активацию В-клеток, зависимостью первого от леса белка NEMO (NF-QB основной модулятор8) для сборки IKK-комплекса с кининами IKK и IKK. Комплекс IKK отвечает за фосфорилирование ИЗБЗ (ингибитор ЗВ), который нацелен на деградацию, освобождая димеры NF-qB для перемещения в ядро для транскрипциигенов 1 ЗЗ и, следовательно, является привлекательной мишенью для развития ингибиторов для модулирования активности NF-B.

Наше исследование фокусируется на характеристике белково-белкового взаимодействия между NEMO и IKK, ориентированной на NEMO для разработки малых молекул ингибиторов формирования комплекса IKK. Минимальная связывающая область NEMO, необходимая для связывания ИККЗ, включает в себя остатки 44-111, и его структура была определена в комплексе с пептидом, соответствующим последовательности IKK 701-7459. NEMO и IKK’ образуют четырехсепарок, где NEMO dimer вмещает два сипов IKK (701-745) в удлиненный открытый паз с расширенным интерфейсом взаимодействия. IkK (734-742), также известный как NEMO-обязательный домен (NBD), определяет наиболее важную горячую точку для связывания, где два основных триптофанов (739 741) хоронят глубоко в кармане NEMO. Детали сложной структуры могут помочь в структуре на основе проектирования и оптимизации малых ингибиторов молекулы ориентации NEMO. В то же время, трудно, что связывание небольшой молекулы или пептида воссоздало бы в NEMO полное конформивное изменение (т.е. обширное открытие dimer с коритой сутышки NEMO), вызванное связыванием длинной IKK (701-745), как наблюдается в кристалле, и структура несвязанной NEMO или NEMO, связанной с небольшим ингибитором молекулы, может представлять собой лучшую структуру ингибирования.

Полноформатные NEMO и более мелкие конструкции усечения, охватывающие область IKK-связывания, оказались неразрешимыми для определения структуры в несвязанной форме с помощью рентгеновской кристаллографии и методов ядерного магнитного резонанса (ЯМР)10, что побудило нас разработать улучшенную версию обязательной области NEMO. Действительно, NEMO (44-111) в несвязанной форме лишь частично сложен и претерпевает конформационный обмен, и поэтому мы намерены стабилизировать его димерную структуру, складку свернутой катушки и стабильность, сохраняя при этом связывающее сродство к IkK. Путем связывать 3 heptads идеально dimeric coiled-coil последовательностей11 на N-и C-termini протеина, и серии 4 перегласовок пункта, мы произвели NEMO-EEAA, конструкцию полно dimeric и сложенную в свернутой катушке, которая спасла IKK-связывающе сродство к наномолярному диапазону как наблюдаемое для полной длины NEMO12. В качестве дополнительного преимущества мы надеялись, что адаптеры с кудрявых катушек (на основе последовательности GCN4) облегчат кристаллизацию и в конечном итоге помогут в определении структуры рентгеновского излучения с помощью молекулярной замены. Сонючие катушка адаптеры были аналогичным образом использованы как для повышения стабильности, улучшить поведение решения и облегчить кристаллизацию для тримерных скудных катушек и фрагментов антител13,14. NEMO-EEAA легко выражается и очищается от клеток Escherichia. coli с размытым тегом гистидина, растворяется, сложен в стабильную тусклую свернутую катушки и легко кристаллизуется, с дифракцией до 1,9 евро. Наличие упорядоченных спиральных катушек регионов GCN4 может дополнительно помочь в постепенном использовании данных из кристаллов NEMO-EEAA путем молекулярной замены с использованием известной структуры GCN415.

Учитывая результаты, полученные с apo-NEMO-EEAA, мы считаем, что описанные здесь протоколы также могут быть применены к кристаллизации NEMO-EEAA в присутствии небольших пептидов (например, пептида NBD) или малых ингибиторов молекулы, с целью понимания требований к ингибированию NEMO и структурной оптимизации первоначальных ингибиторов свинца к высокой сродости. Учитывая пластичность и динамичный характер многих доменов скудной катушки16,использование смоченной катушки адаптеры могли бы найти более общую применимость в оказании помощи структурного определения.

Protocol

1. Конструкция конструкции для кристаллографии Клон последовательность NEMO-EEAA, как и в предыдущей публикации12 в векторе для выражения в кишечной палочке с помощью промоутера T7, в том числе N-терминал hexa-гистидин теги и протеазы расщепления сайта.ПРИМЕЧАНИЕ: В это…

Representative Results

Клонирование, выражение и очищение связывающей области NEMO, имеющей обязательную iKK.Протокол, последовавший в этом исследовании, чтобы получить окончательную последовательность NEMO-EEAA(Рисунок 1A), который произвел дифракционные кристаллы качества, уч…

Discussion

Попытки кристаллизации NEMO в несвязанной форме оказались безуспешными, включая попытки использования полноформатного белка и несколько конструкций усечения, охватывающих область, связывающую IKK. Наша биофизическая характеристика МКК-связывающей области NEMO (остатки 44-111) круговой дихр…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим профессора Д. Мэддена за многочисленные полезные дискуссии на протяжении всего проекта. Мы благодарим профессора Д. Болона за дар плазмиды, содержащей оптимизированную катушки GCN4. Мы благодарим доктора Б. Го за плазмиды NEMO. Мы благодарим Кристину Р. Арнольди, Тамар Басиашвили и Эми Кеннеди за демонстрацию процедуры. Мы благодарим БиоМТ Кристаллография Основной фонд и кафедры химии и биохимии и клеточной биологии в Дартмуте за использование кристаллографического оборудования и персонала BioMT за их поддержку. В этом исследовании использовалась линия луча AMX Национального синхротронного источника света II, Управления министерства энергетики США (DOE) Управления научных пользователей, работаемого для Управления науки Министерства энергетики США По линии Брукхейвенской национальной лаборатории по контракту No. ДЕ-SC0012704. Мы благодарим сотрудников NSLS II за их поддержку. Эта работа была профинансирована грантами NIH R03AR066130, R01GM133844, R35GM128663 и P20GM1131332, а также грантом Munck-Pfefferkorn Novel and Interactive.

Materials

20% w/v γ-PGA (Na+ form, LM) Molecular Dimensions MD2-100-150 For fine screen crystallization of NEMO-EEAA
3.5 kDa MWCO Dialysis Membrane Spectra/Por 132724 For dialysis removal of imidazole
Amicon Stirred Cell Millipose Sigma UFSC 05001 For protein concentration
Ammonium Chloride Millipore Sigma G8270 For minimal media labeling
Benzonase Nuclease Millipore Sigma 9025-65-4 For digestion of nucleic acid
BL21-CodonPlus (DE3)-RIL Competent Cells Agilent Technologies Model: 230245 TEV expression
CryoPro Hampton Research HR2-073 Cryo-protectants kit
D-Glucose (Dextrose) Millipore Sigma A9434 For minimal media labeling
Difco Terrific Broth ThermoFisher DF043817 For culture growth
Dithiothreitol > 99% Goldbio DTT25 For reduction of disulfides
E. coli: Rosetta 2 (DE3) Novagen 71400-3 Expression of unlabeled NEMO-EEAA
FORMULATOR Formulatrix Liquid handler/ screen builder
HCl – 1.0 M Solution Hampton Research HR2-581 For fine screen crystallization of NEMO-EEAA
HiLoad 16/600 Superdex 75 pg GE Healthcare 28989333 For size exclusion purification
HisTrap HP 5 mL column GE Healthcare 17524802 For purification of His-tagged NEMO-EEAA
HT 96 MIDAS Molecular Dimensions MD1-59 For sparse matrix screening of NEMO-EEAA
HT 96 Morpheous Molecular Dimensions MD1-46 For sparse matrix screening of NEMO-EEAA
Imidazole ThermoFisher 288-32-4 For elution from His-trap column
Isopropyl-beta-D-thiogalactoside Goldbio I2481C5 For induction of cultures
MRC2 crystallization plate Hampton Research HR3-083 Crystallization plate
NT8 – Drop Setter Formulatrix Crystallization
pET-16b Millipore Sigma 69662 For cloning of NEMO-EEAA
pET-45b Millipore Sigma 71327 For cloning of NEMO-EEAA
Phenylmethylsulfonyl fluoride ThermoFisher 36978 For inhibition of proteases
Polycarbonate Bottle for use in Ultracentrifuge Rotor Type 45 Ti Beckmann Coulter 339160 Ultracentrifuge bottle
Polyethylene Glycol 20,000 Hampton Research HR2-609 For fine screen crystallization of NEMO-EEAA
pRK793 (TEV) Addgene Plasmid 8827 For TEV production
QuikChange XL II Agilent Technologies 200522 Site directed mutagenesis
Required Cap Assembly: Beckmann Coulter 355623 Ultracenttrifuge bottle cap
ROCK IMAGER Formulatrix Crystallization Imager
Seed Bead Kit Hampton Research HR2-320 Seed generation
Sodium Chloride ≥ 99% Millipore Sigma S9888 For buffering of purification solutions
TCEP (Tris (2-Carboxyethyl) phosphine Hydrochloride) Goldbio TCEP1 Reducing agent
The Berkeley Screen Rigaku MD15-Berekely For sparse matrix screening of NEMO-EEAA
The PGA Screen Molecular Dimensions MD1-50 For fine screen crystallization of NEMO-EEAA
Tris – 1.0 M Solution Hampton Research HR2-589 For fine screen crystallization of NEMO-EEAA
Ultrapure Tris Buffer (powder format) Thermofisher 15504020 For buffering of purification solutions
Urea ThermoFisher 29700 For denaturation of NEMO-EEAA

References

  1. Gilmore, T. D. Introduction to NF-kappaB: players, pathways, perspectives. Oncogene. 25 (51), 6680-6684 (2006).
  2. Bassères, D. S., Baldwin, A. S. Nuclear factor-kappaB and inhibitor of kappaB kinase pathways in oncogenic initiation and progression. Oncogene. 25 (51), 6817-6830 (2006).
  3. Hayden, M. S., West, A. P., Ghosh, S. NF-kappaB and the immune response. Oncogene. 25 (51), 6758-6780 (2006).
  4. Lee, T. I., Young, R. A. Transcriptional regulation and its misregulation in disease. Cell. 152 (6), 1237-1251 (2013).
  5. Courtois, G., Gilmore, T. D. Mutations in the NF-kappaB signaling pathway: implications for human disease. Oncogene. 25 (51), 6831-6843 (2006).
  6. Zhao, J., et al. Development of novel NEMO-binding domain mimetics for inhibiting IKK/NF-κB activation. PLoS biology. 16 (6), 2004663 (2018).
  7. Zhang, Q., Lenardo, M. J., Baltimore, D. 30 Years of NF-κB: a blossoming of relevance to human pathobiology. Cell. 168 (1-2), 37-57 (2017).
  8. Jin, D. Y., Jeang, K. T. Isolation of full-length cDNA and chromosomal localization of human NF-kappaB modulator NEMO to Xq28. Journal of Biomedical Science. 6 (2), 115-120 (1999).
  9. Rushe, M., et al. Structure of a NEMO/IKK-associating domain reveals architecture of the interaction site. Structure. 16 (5), 798-808 (2008).
  10. Guo, B., Audu, C. O., Cochran, J. C., Mierke, D. F., Pellegrini, M. Protein engineering of the N-terminus of NEMO: structure stabilization and rescue of IKKβ binding. Biochemistry. 53 (43), 6776-6785 (2014).
  11. Havranek, J. J., Harbury, P. B. Automated design of specificity in molecular recognition. Nature Structural Biology. 10 (1), 45-52 (2003).
  12. Barczewski, A. H., Ragusa, M. J., Mierke, D. F., Pellegrini, M. The IKK-binding domain of NEMO is an irregular coiled coil with a dynamic binding interface. Scientific Reports. 9 (1), 2950 (2019).
  13. Arimori, T., et al. Fv-clasp: an artificially designed small antibody fragment with improved production compatibility, stability, and crystallizability. Structure. 25 (10), 1611-1622 (2017).
  14. Hernandez Alvarez, B., Hartmann, M. D., Albrecht, R., Lupas, A. N., Zeth, K., Linke, D. A new expression system for protein crystallization using trimeric coiled-coil adaptors. Protein Engineering, Design and Selection. 21 (1), 11-18 (2008).
  15. Oshaben, K. M., Salari, R., McCaslin, D. R., Chong, L. T., Horne, W. S. The native GCN4 leucine-zipper domain does not uniquely specify a dimeric oligomerization state. Biochemistry. 51 (47), 9581-9591 (2012).
  16. Truebestein, L., Leonard, T. A. Coiled-coils: The long and short of it. BioEssays: News and Reviews in Molecular, Cellular and Developmental Biology. 38 (9), 903-916 (2016).
  17. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72, 248-254 (1976).
  18. Kapust, R. B., et al. Tobacco etch virus protease: mechanism of autolysis and rational design of stable mutants with wild-type catalytic proficiency. Protein Engineering. 14 (12), 993-1000 (2001).
  19. Miladi, B., et al. A new tagged-TEV protease: construction, optimisation of production, purification and test activity. Protein Expression and Purification. 75 (1), 75-82 (2011).
  20. Miller, M. S., et al. Getting the Most Out of Your Crystals: Data Collection at the New High-Flux, Microfocus MX Beamlines at NSLS-II. Molecules. 24 (3), (2019).
  21. McCoy, A. J., Grosse-Kunstleve, R. W., Adams, P. D., Winn, M. D., Storoni, L. C., Read, R. J. Phaser crystallographic software. Journal of Applied Crystallography. 40, 658-674 (2007).
  22. Adams, P. D., et al. PHENIX: a comprehensive Python-based system for macromolecular structure solution. Acta Crystallographica Section D: Biological Crystallography. 66, 213-221 (2010).
  23. Terwilliger, T. C., et al. Iterative model building, structure refinement and density modification with the PHENIX AutoBuild wizard. Acta Crystallographica. Section D, Biological Crystallography. 64, 61-69 (2008).
  24. Emsley, P., Cowtan, K. Coot: model-building tools for molecular graphics. Acta Crystallographica. Section D, Biological Crystallography. 60, 2126-2132 (2004).
  25. Terwilliger, T. C., et al. phenix.mr_rosetta: molecular replacement and model rebuilding with Phenix and Rosetta. Journal of Structural and Functional Genomics. 13 (2), 81-90 (2012).
  26. Strong, M., Sawaya, M. R., Wang, S., Phillips, M., Cascio, D., Eisenberg, D. Toward the structural genomics of complexes: crystal structure of a PE/PPE protein complex from Mycobacterium tuberculosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (21), 8060-8065 (2006).
  27. Tickle, I. J., et al. . STARANISO. , (2018).
  28. French, S., Wilson, K. On the treatment of negative intensity observations. Acta Crystallographica Section A: Crystal Physics, Diffraction, Theoretical and General Crystallography. 34 (4), 517-525 (1978).
  29. Goldschmidt, L., Cooper, D. R., Derewenda, Z. S., Eisenberg, D. Toward rational protein crystallization: A Web server for the design of crystallizable protein variants. Protein Science: A Publication of the Protein Society. 16 (8), 1569-1576 (2007).
  30. Zhou, L., et al. Disulfide-mediated stabilization of the IκB kinase binding domain of NF-κB essential modulator (NEMO). Biochemistry. 53 (50), 7929-7944 (2014).
  31. D’Arcy, A., Bergfors, T., Cowan-Jacob, S. W., Marsh, M. Microseed matrix screening for optimization in protein crystallization: what have we learned. Acta Crystallographica. Section F, Structural Biology Communications. 70, 1117-1126 (2014).

Play Video

Cite This Article
Barczewski, A. H., Ragusa, M. J., Mierke, D. F., Pellegrini, M. Production, Crystallization, and Structure Determination of the IKK-binding Domain of NEMO. J. Vis. Exp. (154), e60339, doi:10.3791/60339 (2019).

View Video