Этот протокол предназначен для визуализации и анализа динамики клеточной ориентации и роста тканей в эпидемии брюшной полости Drosophila, поскольку плодовая муха подвергается метаморфозе. Описанная здесь методология может быть применена к изучению различных стадий развития, тканей и субклеточных структур в дрозофиле или других модельных организмах.
В многоклеточных организмах зрелые ткани и органы демонстрируют высокую степень порядка в пространственных расположениях их составных клеток. Замечательный пример приводится сенсорной эпителии, где клетки же или различных идентичностей собираются вместе через клеточные клетки слипа с указанием высокоорганизованных планарных моделей. Клетки выравниваются друг с другом в том же направлении и отображают эквивалентную полярность на больших расстояниях. Эта организация зрелой эпителии устанавливается в течение морфогенеза. Чтобы понять, как достигается планарное расположение зрелой эпителии, важно отслеживать ориентацию клеток и динамику роста с высокой пространственно-временной точностью во время развития in vivo. Надежные аналитические инструменты также необходимы для выявления и характеристики переходов на местном к глобальному характеру. Дрозофила куколка является идеальной системой для оценки ориентированных изменений формы клеток, лежащих в основе эпителиального морфогенеза. Pupal развивающихся эпителий представляет собой внешнюю поверхность неподвижного тела, что позволяет долгосрочное изображение нетронутых животных. Описанный здесь протокол предназначен для изображения и анализа поведения клеток как на глобальном, так и на местном уровне в эпидермисе брюшной полости pupal по мере его роста. Описанная методология может быть легко адаптирована к визуализации клеточного поведения на других стадиях развития, тканях, субклеточных структурах или модельных организмах.
Для достижения своей роли эпителиальные ткани полностью полагаются на пространственную организацию своих клеточных компонентов. В большинстве эпителий клетки не только упакованы друг против друга, чтобы создать точный слой булыжника, но они ориентируются относительно осей тела.
Функциональное значение точной организации тканей очевидно в сенсорных эпителиях, таких как позвоночное внутреннее ухо и сетчатка. В первом случае волосы и поддерживающие клетки выравниваются в определенном осевом направлении, чтобы эффективно чувствовать механические входы, такие как звук и движение1,2. Аналогичным образом, фоторецептор клеточной пространственной организации имеет важное значение для достижения оптимальных оптических свойств сетчатки3. Таким образом, пространственный контроль положения и ориентации клеток имеет особое значение для правильной физиологической функции.
Дрозофила является голометаболическим насекомым, которое претерпевает полное преобразование своих личинок структуры тела через метаморфозы, что приводит к его взрослых тканей. Дрозофила кукапа является отличной моделью для неинвазивных живой визуализации различных динамических событий, в том числе миграции клетокразвития 4, деление клеток и динамика роста5, сокращение мышц6, гибель клеток7, ремонт раны 8, и ориентация клеток9. У взрослой дрозофилы, внешний эпителий показывает высокую степень порядка. Это легко наблюдается на расположения трихом (т.е. выступы клеток, происходящих из отдельных эпителиальных клеток) и сенсорных щетины по всей поверхности тела мухи10. Действительно, трихом выровнены в параллельных рядах, направляющих воздушный поток11. Морфогенез эпителии взрослых и упорядоченное расположение отдельных клеток начинается во время эмбриогенеза и завершается во время стадии pupal. В то время как в эмбрионах клеточные деления, интеркалации и формы изменяют все уменьшающееся предельное управление ткани12,,13, это возвращается на более поздних стадиях развития, особенно на стадиях pupal, когда муха приближается к зрелости9.
Неподвижный кукачанка Drosophila обеспечивает идеальную систему для оценки формы клеток и изменения ориентации. Особой преимуществаю является эпидермис брюшной полости. В то время как предшественники взрослой головы, грудной клетки, гениталий и придатков растут и получают узоризм из личинок этапов, гистопласты, которые интегрированы в личиночной эпидермис, начинают расти и дифферециации только при pupariation14. Эта функция позволяет отслеживать все пространственно-временные события, участвующие в создании порядка тканей в полном объеме9.
Гистобласты определяются во время эмбрионального развития на контралатеральных позициях в каждом предполагаемом брюшном сегменте. В рознические брюшной эпидермис взрослого происходит от дорсолатерально расположен гистобласт гнезда, присутствующие в передней и задней отсеков15,16. По мере расширения гистопластов, заменяющих личиночные эпителиальные клетки (ЛЭК), контралатеральные гнезда предохраняют на дозорной средней линии, образуя конфлюентный лист17,,18,,19,20.
Эта работа описывает 1) методологию для вскрытия, монтажа и долгосрочной живой визуализации кукота Drosophila, и 2) аналитические методы для изучения динамики клеточной ориентации и роста при высоком пространственно-временном разрешении. Здесь представлен подробный протокол, охватывающий все шаги, необходимые от первоначальной подготовки куколок (т.е. постановки и визуализации) до извлечения и количественной оценки функций направленности и ориентации. Мы также описываем, как сделать вывод о местных свойствах тканей из анализа клеточных клонов. Все описанные шаги являются минимально инвазивными и позволяют проводить долгосрочный живой анализ. Описанные здесь методы могут быть легко адаптированы и применены к другим стадиям развития, тканям или модельным организмам.
Дальнобойный порядок является важной характеристикой большинства функциональных физиологических единиц. Во время морфогенеза порядок достигается за счет интеграции сложных инструкций, реализованных с высокой временной и пространственной точностью. Многоуровневые ограничения инт?…
The authors have nothing to disclose.
Мы хотели бы поблагодарить сотрудников лаборатории Мартин-Бланко за полезные обсуждения. Мы также благодарим Ника Тапона (Институт Крика, Лондон, Великобритания), Блумингтонский фондовый центр (Университет Индианы, США) и FlyBase (за аннотацию гена Дрозофилы). Федерика Манджоне была поддержана JAE-CSIC предварительной стипендий. Лаборатория Мартина-Бланко финансировалась из Программы Estatal de Fomento de la Investigacion Cientefica y T’cnica de Excelencia (BFU2014-57019-P и BFU2017-82876-P) и из Фонда Рамона Аресеса.
Analysis Software | – | ImageJ | Analyzing data |
Drosophila | Atpa::GFP | – | Strains employed for data collection |
Drosophila | hsflp1.22;FRT40A/FRT40A Ubi.RFP.nls | – | Strains employed for data collection |
Dumont 5 Forceps | FST | 11251-20 | 1.5 mm diameter for dissection |
Glass Bottom Plates | Mat Tek | P35G-0.170-14-C | Mounting pupae for data collection |
Halocarbon Oil 27 | Sigma-Aldrich | 9002-83-9 | mounting pupae |
Inverted Confocal microscope | Zeiss | LSM700 | Data collection |
Stereomicroscope | Leica | DFC365FX | Visualization of the pupae during dissection |