Этот протокол демонстрирует индукцию гемогенной программы в кожных фибробластах человека путем принудительного выражения транскрипционных факторов GATA2, GFI1B и FOS для генерации гематопоиетических стволовых и прародителей клеток.
Клеточные и молекулярные механизмы, лежащие в основе спецификации гематопоатических стволовых клеток человека (ГСК), остаются неуловимыми. Стратегии для повторения человеческого HSC появление in vitro необходимы для преодоления ограничений в изучении этого сложного процесса развития. Здесь мы описываем протокол для создания гематопоиетического стебля и клеток, похожих на гененора, из человеческих дермальных фибробластов, использующих подход прямого перепрограммирования клеток. Эти клетки проходят через гемогенный промежуточный клеточный тип, напоминающий эндотелиальный к гематопоиетному переходу (EHT), характерный для спецификации HSC. Фибробласты были перепрограммированы на гемогенные клетки с помощью трансдукции GATA2, GFI1B и FOS транскрипции факторов. Это сочетание трех факторов индуцированных морфологических изменений, выражение гемогенных и гематопогетических маркеров и динамических транскрипционных программ EHT. Перепрограммированные клетки генерируют гематопоитетическое потомство и заселяют иммунодефицитных мышей в течение трех месяцев. Этот протокол может быть адаптирован к механистскому вскрытию процесса EHT человека, о чем свидетельствует здесь, определив цели GATA2 на ранних этапах перепрограммирования. Таким образом, гемогенное перепрограммирование человека обеспечивает простой и уступчивый подход к выявлению новых маркеров и регуляторов возникновения HSC человека. В будущем верная индукция гемогенной судьбы в фибробластах может привести к генерации специфических для пациентов ГСК для трансплантации.
Окончательный гематопоиетических стволовых клеток и клеток-предшественников (HSPCs) возникают в области аорты-гонад-мезонефров (AGM) и плаценты из эндотелиальных прекурсоров с гемогенной емкостью, через эндотелиальный-гематопоатический переход (EHT)1, 2. Гемогенные прекурсоры (ГП) выражают как эндотелиальные, так и гематопоитические маркеры, но их точная идентификация остается неуловимой, особенно в человеческой системе. Несмотря на то, что относительно сохранивпроцесс у млекопитающих, развитие гематопоиетических стволовых клеток (HSC) по-прежнему значительно отличается между людьми и моделями мыши3,4. Поэтому необходимы подходы in vitro для повторения развития HSC человека.
Дифференциация плюрипотентных стволовых клеток (ПСК) на HSCs, хотя и многообещающая, встретила ограниченный успех в течение последних 20 лет, в основном из-за имеющихся протоколов дифференциации, которые приводят к примитивным гематопоитическим потомкам с плохим притворством способность5,6,7. Кроме того, методы перепрограммирования прямых ячеек были применены для генерации HSPC-подобных ячеек из нескольких типов клеток, используя транскрипционные факторы (TFs)8,9. В частности, переэкспрессия трех TFs, Gata2, Gfi1b и cFos, преобразованных мыши эмбриональных фибробластов в HSPCs через промежуточный HP с определенным фенотипом (Пром1-Ска-1’CD34-CD45-)10. Этот процесс напоминал EHT, который происходит в эмбрионе и плаценте, во время спецификации окончательного hematopoiesis. Этот фенотип позволил идентификации и изоляции населения HPs в мышь плаценты, что после краткосрочной культуры и Notch активации генерируется последовательно трансплантативных HSCs11.
До сих пор не было установлено фенотипа, который отличал бы человеческие ГХК от их предшественников, но некоторые молекулы, как известно, выражены в новых HSCs. Integrin alpha 6 (ITGA6 или CD49f) высоко выражен в долгосрочном заселении ГХК, самых незрелых клетки в отсеке HSC12, и ангиотензин-преобразующий фермент (ACE или CD143) присутствует в CD34 отрицательных гематопоитических предшественников в эмбриональных кроветворных тканей13.
Недавно мы показали, что человеческие версии трех TFs, GATA2, FOS и GFI1B перепрограммировать человеческие кожные фибробласты (HDFs) в HPs с краткосрочной возможностью привить14. На начальных этапах перепрограммирования GATA2 привлекает открытый хроматин и набирает GFI1B и FOS для подавления генов фибробластов и активации эндотелиальных и гематопогетических генов. Индуцированные клетки высоко выражали CD49f и ACE, и содержали небольшой процент клеток, выражающих маркер HSPC CD34. Ген CD9, который выражается в HSCs15 и имеет важное значение для HSC самонаведения16, было показано, что прямая цель GATA2 и среди наиболее до регулируемых генов в перепрограммированных клеток14. Таким образом, CD9 может представлять собой дополнительный маркер для HPs человеческого окончательного гематопоеза.
В этом протоколе мы описываем генерацию HSPC-подобных клеток из фибробластов человека через принудительное выражение GATA2, GFI1B и FOS, а также адаптированный метод анализа иммунопременции хроматина (ChIP)-секвенирования (seq) в начале Перепрограммирования. TFs были закодированы в доксициклин (DOX)-индуцируемого лентивирусного вектора (pFUW-tetO), который содержит элемент тетрациклина (TRE) и минимальный промоутер ЦМВ, и были трансукторованы вместе с составным вектором, содержащим обратный тетрациклин трансактиваторный белок (pFUW-M2rtTA). Когда DOX (аналог тетрациклина) добавляется после трансдукции, он связывается с белком rtTA, который взаимодействует с TRE, позволяющим транскрипцию TF (Система Тет-Он). Процедура требует 25 дней. Для экспериментов ChIP-seq, HDFs были трансуктором с помеченными версиями GATA2 (pFUW-tetO-3xFLAG-GATA2) и GFI1B (pLV-tetO-HA-GFI1B), плюс pFUW-tetO-FOS и tF связывающие сайты были проанализированы через два дня после doX дополнения.
В конечном счете, гемогенное перепрограммирование фибробластов человека обеспечивает систему витровых путей для изучения механизмов, лежащих в основе гематопоеза развития человека и потенциальный источник специфических для пациентов HSPCs для будущего клинического применения.
В этой статье описан метод для генерации гематопоиетических клеток-прародителей непосредственно из фибробластов человека, которые проходят через промежуточные клетки HP, подобно окончательному HSCs14.
Бассейн производства лентивирных частиц, кодирующих GATA2, GFI1B и FOS был предпочтительным по сравнению с отдельным производством, так как в наших руках это приводит к более высокой эффективности перепрограммирования (неопубликованные данные). Лентивирусы, как члены семейства Retroviridae, как правило, содержат две копии положительной одноцепочечной РНК19. Повышенная эффективность перепрограммирования может быть обусловлена упаковкой двух различных трансгенов в одной и той же лецивирусной частице, что приводит к увеличению числа клеток, связанных с тремя транскрипционными факторами. Для обеспечения успеха этого протокола необходимо преобразовать HDF с достаточным количеством вируса в зависимости от прохождения клеток, чтобы получить оптимальный баланс между эффективностью перепрограммирования и жизнеспособностью клеток, как это рекомендовано в шаге 4.6. Кроме того, можно использовать свежие неконцентрированные вирусы. Рекомендуется преобразовывать клетки с 0,5-3 мл пула 3TF и M2rtTA. Кроме того, плотность клеток должна быть скорректирована в соответствии с приложением. 150 000 HDFs на 6-ну хорошую пластину (шаг 4.4) обеспечили оптимальную плотность для выполнения FACS, трансплантации и цитометрии потока анализа перепрограммированных клеток. Для экспериментов по ChIP-seq с самого начала требовалось больше ячеек (шаг 5.1). Важно регулярно проверять клетки на наличие морфологических изменений и два раза в неделю заменять гематопоиетическую среду для поддержки появления индуцированных гематопоэтиных клеток. Добавление гематопоитических цитокинов или сокультуры в слоях фидера может повысить эффективность перепрограммирования.
С помощью этого метода мы можем определить новые гематопоитические маркеры, которые динамически выражены во время гемогенного перепрограммирования. CD9, который, как было показано, регулируется в перепрограммированных клеток на транскрипционном уровне14, быстро выражается на поверхности клетки в начальных фазах перепрограммирования вместе с CD49f и CD143, выступающей в качестве нового маркера человеческих прекурсоров HSC. Мы также показываем, что ITGA6 и ACE являются прямыми целями GATA2 на начальных этапах гемогенного перепрограммирования, в дополнение к CD9 и CD3414, обеспечивая прямую механистическую связь между гемогеной человека прекурсор фенотип и GATA2.
Одним из преимуществ этой системы является использование относительно однородных фибробластных культур. В то время как PSCs легко расширяются и поддерживаются в пробирке,протоколы дифференциации генерируют неоднородные популяции, которые включают гематопоитетические прародители, которые прививаютсявряют плохо 5,6,7. Кроме того, существует риск опухолевого генеза при пересадке ПСК полученных HSPCs, так как недифференцированные PSCs все еще может оставаться в культуре даже после использования протоколов дифференциации. Кроме того, фибробласты, прямое перепрограммирование в HSCs была применена к крови совершенных прародителей20 и эндотелиальных клеток21. Однако, начиная с крови ограниченных клеток-прародителей препятствует терапевтическое применение в результате HSCs, если пациент несет мутации, которые влияют на стволовых / прародитель гематопоитической популяции22. В случае эндотелиальных клеток, они более трудно получить по сравнению с фибробластов, и представляют собой очень неоднородной популяции клеток с точки зрения фенотипа, функции и структуры, которые являются орган-зависимых23. Другие исследования удалось перепрограммировать мыши фибробластов в привитых гематопоиетических прародителей24,25 еще, до сих пор, ни один другой протокол описывает поколение HSPC-подобных клеток из человеческих фибробластов.
Этот подход, в сочетании с фармакологическим ингибированием, генным нокаутом, или нокдаун позволяет определить индивидуальные или комбинации факторов, которые необходимы для непосредственного стимулирования человека HSCs. Технологии CRISPR-Cas9 в HDF до перепрограммирования представляют собой захватывающую попытку определить новые регуляторы человеческого окончательного гематоподия. В будущем, перепрограммирование не связанных с кровью типов клеток человека, таких как фибробласты будет служить в качестве платформы для создания здоровых пациентов с учетом гематопоиетических клеток-прародителей для клинического применения.
The authors have nothing to disclose.
Фонд Кнута и Алисы Валленберг, медицинский факультет Лундского университета и региона Сконе признаны за щедрую финансовую поддержку. Эта работа была поддержана грантом от Olle Engkvists Stiftelse (194-0694 Филипе Перейра) и стипендии PhD от Фунданьо пара Ci’ncia электронной Tecnologia (PTDC/BIM-MED/0075/2014 Филипе Перейра, и SFRH/BD/135725/2018 и SFRH/BD/51968/2012 Рите Алвес и Андрея Гомеша). Это исследование было также поддержано средствами от NIH и NYSTEM (1R01HL119404 и C32597GG к Kateri A. Moore).
0.45 μm low-protein binding filter, 150 mL Bottle Top Vacuum Filter | Corning | #430625 | |
2-Mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | #M6250 | |
Alexa Fluor 488 anti-human CD34 clone 581 | BioLegend | #343518 | |
BD Pharmingen APC Mouse Anti-Human Angiotensin Converting Enzyme (CD143) clone BB9 | BD Biosciences | #557929 | |
BES buffered saline | Sigma-Aldrich | #14280 | |
Calcium chloride (CaCl2) | Sigma-Aldrich | #449709 | |
Centrifugal filter unit, Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit | Sigma-Aldrich | #UFC903096 | |
Dissociation solution, TrypLE Express Enzyme (1X) no phenol red | Gibco | #12604-021 | |
Doxycycline hyclate (DOX) | Sigma-Aldrich | #D9891 | |
eBioscience CD49f (Integrin alpha 6) Monoclonal Antibody (eBioGoH3 (GoH3)), PE-Cyanine7 | Invitrogen | #25-0495-82 | |
FUW-M2rtTA | Addgene | #20342 | |
Gelatin from Porcine Skin Type A | Sigma-Aldrich | #G1890 | |
Gibco L-Glutamine (200 mM) | ThermoFisher Scientific | #25030-024 | |
Gibco MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) | ThermoFisher Scientific | #11140-035 | |
Hematopoietic medium, MyeloCult H5100 | STEMCELL Technologies | #05150 | |
Hexadimethrine bromide (polybrene) | Sigma-Aldrich | #H9268 | |
Human Dermal Fibroblasts (HDFs) | ScienCell | #2320 | |
HyClone Dulbecco's Modified Eagles Medium (DMEM) | GE Healthcare | #SH30243.01 | |
HyClone Fetal Bovine Serum (FBS) | GE Healthcare | #SV30160.03 | |
HyClone Penicillin Streptomycin 100X Solution (Pen/Strep) | GE Healthcare | #SV30010 | |
HyClone Phosphate Buffered Saline solution (PBS) | GE Healthcare | #SH30256.01 | |
Hydrocortisone | STEMCELL Technologies | #7904 | |
Mouse serum | Sigma-Aldrich | #M5905 | |
PE anti-human CD9 Antibody clone HI9a | BioLegend | #312105 | |
pFUW-tetO-3xFLAG-GATA2 | Addgene | #125600 | |
pFUW-tetO-FOS | Addgene | #125598 | |
pFUW-tetO-GATA2 | Addgene | #125028 | |
pFUW-tetO-GFI1B | Addgene | #125597 | |
pLV-tetO-HA-GFI1B | Addgene | #125599 | |
pMD2.G | Addgene | #12259 | |
psPAX2 | Addgene | #12260 |