חטיבות התא ניתן לדמיין בזמן אמת באמצעות חלבונים מתויגים פלואורוסקופים ומיקרוסקופ זמן לשגות. בעזרת הפרוטוקול המוצג כאן, המשתמשים יכולים לנתח את דינמיקת התזמון של החטיבה הסלולרית, הרכבת הmitotic צירים והפרדה בין כרומוזום ובידוד. פגמים באירועים אלה בעקבות הפרעות RNA (RNAi)-תיווך גנים הסתרה ניתן להעריך ולכמת.
דרוסופילה התאים S2 הם כלי חשוב במחקר מיטוזה בתרבות רקמות, מתן תובנות מולקולריות לתוך תהליך זה הסלולר בסיסי באופן מהיר והתפוקה גבוהה. התאים S2 הוכיחו קלה הן יישומים קבוע-ו-לחיות ליצירת הדמיה. בעיקר, תא חי הדמיה יכול להניב מידע רב ערך על איך אובדן או מאבד של גן יכול להשפיע על קינטיקה ודינמיקה של אירועים מרכזיים במהלך חלוקת התא, כולל mitotic צירים הרכבה, כרומוזום הקונגרפת, והפרדה, כמו גם עיתוי כללי של מחזור התא. כאן אנו מנצלים תאים S2 באופן מאוד מבוקר עם מתויג fluorescently mCherry: α-לסמן את ציר mitotic ו-GFP: CENP-A (המכונה “CID” גן ב- Drosophila ילה) כדי לסמן את צנטרומר כדי לנתח את ההשפעות של הגנים mitotic המפתח על העיתוי של חלוקת תאים מתוך prophase (במיוחד בפירוק מעטפות גרעיניות; NEBD) עד תחילתה של אנאפה. פרוטוקול דימות זה מאפשר גם להדמיה של מיקרוטוכדורית ולדינמיקה של כרומוזום ברחבי מיטוזיס. להלן, אנו שואפים לספק פרוטוקול פשוט אך מקיף שיאפשר לקוראים להתאים בקלות תאים S2 עבור ניסויים בהדמיה חיה. התוצאות שהתקבלו מניסויים כאלה צריכים להרחיב את הבנתנו את הגנים המעורבים בחלוקת התא על ידי הגדרת תפקידם במספר אירועים בו זמנית ודינמיים. תצפיות שבוצעו במערכת זו של תרבות התא ניתן לאמת ולחקור בvivo באמצעות ערכת הכלים המרשימה של גישות גנטיות בזבובים.
החטיבה התא הוא תהליך קריטי לכל האורגניזמים הרב-תאיים, הן בהתפתחות הומאוסטזיס1. Drosophila ילה כבר משמש מודל למחקר של חלוקת תאים, עם ניסויים בסוגים שונים רקמות ותנאים גנטיים מתן תובנות מפתח לתוך התהליך. בעוד רבים של תובנות אלה באים מתנאי תא קבוע, החטיבה התא הוא הליך דינמי עם חלקים נעים רבים, ביצוע ויזואליזציה של תאים חיים אינטגרלי להערכת RNAi או השפעות הסתרה גנטית על חלקים רבים של חלוקת תאים, כולל מערך צירים, כרומוזום הקונגרס וההפרדה הציטוקינזה.
פרוטוקולים רבים פותחו ונוצלו במהלך השנים כדי להמחיש את דיוויזיות התאים של דרוזוהילה בvivo. בקבוצות שונות יש טכניקות מעובדות לחטיבות התמונה בשני דיסקים של הזחל והמוח זחל2,3,4,5,6,7,8 . טכניקות אלה, בעוד שימושי עבור הדמיה ברקמות ספציפיות, מוגבלות תפוקה ולעתים קרובות דורשים הדור ותחזוקה של מניות גנטיות כדי ליצור רכיבי פלורסנט ולשנות את הביטוי של גנים של עניין. תאים S2 מתורבת מ- Drosophila ילה לספק חלופה תפוקה גבוהה יותר כדי לבדוק במהירות את ההשפעות של גנים שונים בחלוקת התא. יתר על כן, עם היכולת transfect חלבונים שונים פלורסנט, התאים S2 ניתן לשנות במהירות כדי לקבוע את ההשפעות של הסתרה RNAi למטה על מרכיבים רבים של החטיבה התא. פלואור שתייגת גנים של עניין יכול להיות גם נצפתה בחלוקת התא, המאפשר אפיון דינמי של תפקידם9.
כאן אנו מספקים פרוטוקול מפורט עבור הדמיה חיה של תאים mitotic S2 באמצעות שיטות שתיארנו לאחרונה10. השיטה שלנו משתמשת בתאים מזוהמים למדי עם סמנים פלורסנט עבור microtubules ו צנטורמרים אשר הביטוי שלהם תחת שליטה של מקדם נחושת-inducible (מטתיוזה; pMT). מתודולוגיה זו יכולה לשמש את ציר התמונה ואת הדינמיקה כרומוזום בכל השלבים של מיטוזה ניצול מיקרוסקופ פלורסנט פשוט יחסית עם תוכנת דימות בסיסי. זה יכול להיות מותאם יותר להתאים לצרכים מחקר בודדים, עם העברה ארעית RNAi מציע אפשרויות מורחבת לקביעת התפקיד של גנים המועמדים ב mitosis. בגלל הפשטות היחסית של הפרוטוקול, זה יכול לשמש למסכים בקנה מידה קטן אובדן של פונקציה כדי לזהות גנים שעבורם לימוד נוסף vivo יהיה מועיל, ומאפשר מאמצים ממוקדים יותר ויעילות עם גנטי הבאים מניפולציה בזבובים.
זיהוי תא מתאים
מפתח הדמיה בחלוקת תאים S2 תחילה לאתר את התא הנכון. הזמן יכול להיות מבוזבז תאים הדמיה כי הם חשבו בטעות להיות מוכנים לחלק אבל לא לעשות זאת בפרק זמן סביר. יש לזהות את התאים המכילים שני מבני מרכז גלויים ובעלי מראות וגרעין שלם. לסנטרוזומים בטח יש סיבים זעירים. שמקורם בהם, ונותנים להם מראה של כוכבים גרעין שלם שופך אור בעת התאמת המיקוד, וגם עושה את המרכז המשוער של התא כהה יותר במראה. הגרעין יכלול גם את GFP: CID “נקודות”, עוד תכונה הבחנה כדי לסייע בזיהויו. תאים עם > 2 סנטרוזומים, טובולין דקדטה ללא טובולין סיבים שמקורם בהם, או תאים עם מסנטאחד בלבד יש להימנע. בנוסף, אם שני סנטרוזומים גלויים, אבל הגרעין אינו, NEBD כבר התרחשה ואת התא הוא מתקדם מדי בחלוקה שלה להיות התמונה אם ניתוח מלאה M-שלב רצוי. פעם תא המתאים נמצא, מהירות התחלת הדמיה היא חיונית כמו NEBD מתרחשת במהירות (בדרך כלל בתוך 3-5 דקות) ו עיכוב התחלת הדמיה יכול להוביל הזדמנויות החמיץ. למקד את התא בתוכנת הדמיה במהירות כגון הסנטזומים הם גלויים, או אם centrosomes הם מחוץ למטוס אחד עם השני, להגדיר את נקודת המוקד בין השניים, כך שכל אחד יכול להילכד כאשר הערימות Z נאספים מעל ומתחת למרכז המוגדר נקודה. לאחר ההתמקדות, הגדר מיד את ההיסט בין השלב למשטח התא החי באמצעות בדיקת המיקוד באינפרא-אדום (אם היא זמינה) והתחל בתוכנית ההדמיה. למרות הפרוטוקול המוצג כאן מותאם במיוחד עבור ניסויים הערכת NEBD-אל-אנאפא דינמיקה, שינויים פשוטים יכול להתאים לקוראים ללמוד אירועים mitotic חלופיים. עבור NEBD-to-מטשלב ו אנאפה-ל-telophase הדמיה, אנו מציעים 10 מרווחי תמונה לכידת תמונות כמו תהליכים אלה הם דינמיים מאוד להתרחש במהירות בתאי S2 (5-10 דקות). מעבר מטשלב-אל-אנאפא (המוקד הניסיוני טיפוסי שלנו) הוא תהליך ארוך יותר (20-30 דקות) בתאים S2, ואנחנו אוספים תמונות במרווחי זמן של 30. לבסוף, telophase-דרך-ציטוקינזה מתרחשת די לאט בתאים S2, ואנו מציעים 60 s מרווחי הספק מספיק ברזולוציה עבור תהליך זה במשך שעה משוער.
שמירה על הפוקוס בכל תוכנית ההדמיה
אם התקן בדיקת מיקוד אינפרא-אדום אינו זמין, הקפד להימנע מלהיתקל במיקרוסקופ או בשולחן שעליו הוא יושב, מאחר שפעולה זו עלולה לגרום לתא היוצא ממיקוד במהלך תוכנית ההדמיה, המוביל לתוצאות דו-משמעיות בטבלה שלא ניתן לתרגם. ציפוי מראש תא חי בארות עם פולי-L-ליזין יכול לעזור הדבקות בתאים, אשר יכול לעזור להימנע תנועה תא והוא שימושי במיוחד עבור הגדרות ללא בדיקות מיקוד אינפרא אדום. בנוסף, הגדרות כולל זעזועים קליטת פלטפורמות או שולחנות האוויר יכול עוד לעזור למנוע תאים זזים מחוץ לפוקוס. לבסוף, תוכנות מסוימות יש פונקציות הפסקה המאפשר למשתמש למקד ולחדש את התוכנית.
הדמיה של תאים מרובים
מועיל להצטברות נתונים היא שלעתים קרובות ניתן למקם תאים מרובים מוכנים לחילוק בתוך אותו שדה תצוגה לדימות. זה יכול להיות שימושי במיוחד עבור ניסויים שבו לתאים יש משכי זמן ארוך-שלב או מעצר ממושך (למשל, התנאים הלגרום הפעלה של SAC). עבור תאים אלה, אנו בדרך כלל התמונה עד התאים מולבן (כ 2-3 h), אבל העיתוי המלא של תאים שנעצרו צריך להיות על פי שיקול דעתה של החוקר. לפעמים התאים מרובים מראש מחלק יכול להיות במישורים מוקד שונים, ובמקרה זה עשוי להיות שימושי כדי להוסיף z-ערימות להכיל את כל התאים. הוספת ערימות z נוספת יכולה לסייע גם בשיפור הרזולוציה. שים לב יש לנקוט בפעולה זו, עם זאת, כפי שהוא יחשוף את התאים לקרינה יותר להוביל הלבנה מהירה יותר, כמו גם להוביל לגודלי קבצים גדולים על התקני אחסון בדיסק הקשיח.
הימנעות מצילום הלבנה ורעילות
השיטה שלנו מתארת הגדרות מסוימות עבור זמני חשיפה, מרווחי הדמיה, ערימות z, ו אחוז מעבר עבור מקור אור LED שלנו שבדרך כלל עובד עבור ההתקנה הניסיונית שלנו ואת התוצאות הרצויות. כמו מיקרוסקופים ומטרות ניסיוני עשוי להשתנות, מה יכול לעבוד היטב עבור המערכת שלנו עשוי להוביל הלבנת מוקדם או פוטורעילות באחרים. הצילום עלול להיות מחסור בתנועת צירים, בפיצול כדורית, מיקרודינמיקה פגומה והפעלת במחסום צירים ממושכת. שיטה פוטנציאלית אחת כדי למנוע מלכודות כאלה היא להגביל את זמן החשיפה. מצלמות המודרנית ביותר כעת בעלי טווחים דינמיים רחבים, ו היסטגרמות ניתן לכוונן להמחיש מבנים אפילו בחשיפות נמוכות מאוד. טכניקה נוספת היא להגדיל את מרווח ההדמיה (למשל, למספר דקות בין תמונות), כך שמספר הפעמים שהתא נחשף לאור לאורך מרווח הגבייה הכולל מופחת. זה יתרון במיוחד הדמיה לפרקי זמן ארוכים (שעות רבות), והוא יכול בנוסף לסייע בהפחתת גודל הקובץ של ניסויים כאלה. הגבלת מספר המחסניות z שצולמו יכולה גם לעזור להפחית את חשיפת האור, באמצעות 2 או אפילו רק 1 במקום 3. יתר על כך, התאמת אחוז הסיוע של אור (עבור מקורות אור LED), או ניצול דחיסות נייטרלית (ND) מסננים (עבור מנורת הלוגן והן מקורות אור LED) תפחית את עוצמת האור וביחד עם זמן חשיפה ארוכה יכול לשמר את הניראות . על ידי בחירת תאים עם centrosomes כבר מופרדים, חשיפה כוללת יכול להיות מוגבל כי תאים אלה בדרך כלל להזין מיטוזה במהירות (בתוך דקה או שתיים) לאחר תחילת ההדמיה. ניתן גם להגביל את הזמן שתאים מותרים לדימות לפני NEBD. המעבדה שלנו בדרך כלל קובע הפעם ב 10 דקות, אבל מגבלה שמרנית יותר ניתן בקלות להטיל על ידי המשתמש. בנוסף, יותר ‘ פולשני ‘ מדידה אנו ממליצים הוא טיפול עם dsRNA ממוקד נגד רכיב של SAC (כגון רוד או Mad2). אם מעצר פנוטיפ נובע מפגיעה לא ספציפית בתאים (למשל, השפעות מיקרו-כדורית פגומות), טיפול כזה פחות סביר לדכא את המעצר בהשוואה להשפעה בתום הרצון של גן העניין בניסוי המקורי.
הנחיות לעתיד
השיטה המתוארת כאן יכולה להיות מנוצל על מיקרוסקופ אפיסנטי פשוט יחסית לתמונה במהירות לחיות מחלקות תאים והוא יכול להתאים בקלות לעיצוב ניסיוני מסוים של החוקר ומטרות. מספר שיטות מצוינות עבור culturing, rnai מפדאון גישות, העברה ארעית, ו מיקרוסקופ פלואורסצנטית פורסמו עבור S2 ואחרים בתאי הילה9,14,15, מיכל בן 16 , 17. הפרוטוקול שלנו מציע כמה יתרונות. (1) השימוש קו תא יציב כפול (GFP: CID, mCherry: α-טובולין) בו מסמן שני מבנים mitotic מפתח, נמנע את הטרחה וסיבוכים פוטנציאליים של הזיהום חולף, ומבטיח כי כמעט כל התאים יהיה לבטא סמנים פלורסנט כמו מועמדים פוטנציאליים להדמיה. (2) הסתגלות מיטוזיס מוסיפה לפרוטוקולים שפורסמו בדיקת הדינמיקה השלד בתוך motile, תאים שאינם מפרידים ומרחיב לבדיקת אירועים mitotic בזמן אמת. בעוד אנו מאמינים שלנו היא טכניקה רבת עוצמה המוסיפה לרפרטואר של אחרים, תמיד ניתן לעשות שיפורים. שטח מסוים אחד של חלוקת תאים שמצאנו קשה לתדמית הוא מחלקה המרכזית. זה קורה לפני NEBD וקשה לקבוע מתי מסנטרוכמה אחד מוכן להפריד לשניים. שימוש בסמני מחזור תא פלורסנט (ציקלב A ו ציקלב ב) יכול לעזור לפתור בעיה זו, אך מגיע על חשבון הערוצים שיכולים לשמש להמחיש רכיבים של חלוקת תאים. האסטרטגיה הטובה ביותר שלנו בניסיון להמחיש את החטיבה המרכזית היא להוסיף רכישה מרובת נקודות לתוכנית ההדמיה (הגדרת נקודות שונות במישור XY לתמונה), אבל זה יכול לגרום לקבצים גדולים, והוא יכול גם לדרוש (בהתאם למספר הנקודות) הגדלת המרווח בין אוסף התמונות, הקטנת רזולוציית הזמן של הסרט המתקבל. פתרון אחר יכול להיות סנכרון של תאים בשלב הרצוי מחזור התא באמצעות תרופות היעד הרגולטורים מחזור התא ואחריו כשלון הבאים לפני הדמיה, למרות שיטות אלה לא יכול להיות אמין בתאים S2 במיוחד.
הפרוטוקול המוצג כאן מספק בסיס ליישומים עתידיים גם בדימות תאים חיים. עם טכנולוגיית הדמיה ותוכנה משופרת, עיבודים באמת גבוהה התפוקה של פרוטוקול זה באמצעות קיבולת גבוהה יותר, לוחות מרובי הצ יכול להיות אפשרי. חידושים כאלה יהיה להפוך מסכי rnai בקנה מידה גדול, כגון אלה שכבר השיגו ההכנות קבוע12,18, יותר צייתן בפורמט תא חי. מולקולה קטנה מסכי הסמים יכול להיות גם בחזה כאמצעי לזיהוי תרכובות הרומן מיקוד תהליכים חלוקת התא. שיפור של fluorophores ומסננים אופטיים יכול גם להוביל לדימות של רכיבים mitotic מרובים (לא רק את השניים שאנחנו מתארים), המאפשר דימות של הרגולטורים mitotic ספציפיים ואת האינטראקציות שלהם עם DNA ו/או ציר. לדוגמה, יצירת תאים עם כתבים פלורסנט לבטא בעקבות נזק DNA או במהלך אפופטוזיס יהיה כלים שימושיים כדי לזהות גנים חדשניים המעורבים בתהליכים אלה. גישות דומות ניתן להשתמש כדי לבחון את הדינמיקה של מחזור התא באמצעות ביטוי של מתויג fluorescently19.
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו ממומנת על ידי המכון הלאומי לבריאות (R01 GM108756). אנחנו אסירי תודה על גארי Karpen (אוניברסיטת קליפורניה, ברקלי) לספק לנו בנדיבות עם GFP: סיד מלאי קו S2 תא שממנו GFP שלנו: CID/mCherry: αTubulin line נוצר10.
Bright-Line Hemacytometer | Sigma-Aldrich | Z359629-1EA | for cell counting |
cellSens imaging software | Olympus | ||
CELLSTAR Cell Culture Flask, 50ML, 25 CM2, PS, Red Filter Screw Cap, Clear, Sterile, 10PCS/BAG | Greiner Bio-One | 690175 | |
CELLSTAR Cell Culture Multiwell Plate, 6 well, PS, Clear, TC, Lid with condensation rings, sterile, single packed | Greiner Bio-One | 657160 | |
Centrifuge 5804 R | eppendorf | Cat. 022623508 | |
Copper(II) sulfate pentahydrate, minimum 98% | Sigma-Aldrich | C3036-250G | |
Corning Fetal Bovine Serum | Fisher Scientific | MT35015CV | |
Effectene Transfection Reagent 1 mL | Qiagen | 301425 | for transient transfection |
IX-83 Inverted Epifluorescent Microscope | Olympus | ||
LabTek Chambered Slide Insert | Applied Scientific Instruments | I-3016 | |
MEGAscript T7 Transcription Kit | Thermo Fisher Scientific | AM1334 | For dsRNA production |
MOXI Z Mini Automated Cell Counter Kit | ORFLO | MXZ001 | for cell counting |
MS-2000 XY Flat-Top Automated Stage and Controller | Applied Scientific Instruments | ||
Nunc Lab-Tek II Chambered Coverglass (no 1.5 borosilicate glass) 8-well | Thermo Fisher Scientific | 155409 | |
Orca-Flash 4.0 LT Camera | Hammamatsu Photonics K.K. | C11440-42U | |
pMT/V5-His A Drosophila Expression Vector | Thermo Fisher Scientific | V412020 | |
Poly-L-Lysine | Cultrex | 3438-100-01 | |
Purifier Logic+ Class II, Type A2 Biosafety Cabinets | Labconco | 302310000 | |
Schneider's insect medium | Sigma-Aldrich | S0146-100ML | |
Spectra Tub Centrifuge Tubes | VWR | 470224-998 | |
Uner Counter BOD Incubator | Sheldon manufacturing (VWR) | 89409-346 | |
X-CITE 120 LED | ExcelitasTechnologies | Led light source | |
Z -Drift Compensator (ZDC) | Olympus | infrared focus check |