Summary

Un ensayo mejorado basado en proteínas de fluorescencia verde para el estudio del crecimiento de neurita en las neuronas primarias

Published: October 19, 2019
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Summary

En este informe, describimos un protocolo simple para estudiar el crecimiento de neurita en neuronas corticales de rata embrionaria mediante la co-transfección con EGFP y la proteína de interés.

Abstract

El crecimiento de neurita es un evento fundamental en la formación de los circuitos neuronales durante el desarrollo del sistema nervioso. El daño grave a la neurita y la disfunción sináptica ocurren en diversas enfermedades neurodegenerativas y en la degeneración relacionada con la edad. La investigación de los mecanismos que regulan el crecimiento de las neuritas no sólo arrojaría una valiosa luz sobre los procesos de desarrollo cerebral, sino también sobre estos trastornos neurológicos. Debido a la baja eficiencia de transfección, actualmente es difícil estudiar el efecto de una proteína específica en el crecimiento de neurita en las neuronas primarias de mamíferos. Aquí, describimos un método simple para la investigación del crecimiento de neurita por la co-transfección de neuronas corticales de rata primaria con EGFP y una proteína de interés (POI). Este método permite la identificación de las neuronas transfectó el PDI a través de la señal EGFP, y por lo tanto el efecto del PDI en el crecimiento de neurita se puede determinar con precisión. Este ensayo basado en el EGFP proporciona un enfoque conveniente para la investigación de vías que regulan el crecimiento de las neuritas.

Introduction

Los neuritas, incluyendo axones y dendritas, son las proyecciones de las neuronas implicadas en el establecimiento de las redes neuronales. El crecimiento dinámico de los neurótesis es esencial para el neurodesarrollo. Sin embargo, los mecanismos reglamentarios subyacentes que hay debajo siguen sin estar claros. En particular, el daño de neurita se observa a menudo en varias enfermedades neurodegenerativas y después de lesiones cerebrales1. Por lo tanto, la investigación de los roles de las moléculas putativas en varias vías reguladoras de crecimiento de neurita mejoraría nuestra comprensión del proceso. Por otra parte, puede revelar nuevas dianas terapéuticas para diversos trastornos neurológicos. Las líneas celulares neuronales son modelos valiosos para estudiar los procesos neuronales, incluido el crecimiento de neurita, ya que son fáciles de manipular y transfectar2,3. Sin embargo, se ha informado que la deriva genética ocurre en algunas líneas celulares de uso común, lo que podría conducir a variaciones en sus respuestas fisiológicas4. Además, se ha demostrado la expresión diferencial de proteínas entre las líneas celulares neuronales y las neuronas primarias. Por ejemplo, PC12, una línea celular neuronal derivada de la glándula suprarrenal de rata que se utiliza ampliamente para el estudio de crecimiento de neurita2,3, no expresa los receptores NMDA5. Además, se ha propuesto que la menor capacidad de respuesta de la línea de neuroblastoma de ratón neuro-2a a las neurotoxinas en comparación con las neuronas primarias se debe a la falta de expresión de ciertos receptores de membrana y canales iónicos6. Por lo tanto, las neuronas primarias son un modelo más deseable y representativo para la investigación del crecimiento de neurita. Sin embargo, el uso de neuronas primarias se ve obstaculizado por su baja eficiencia de transfección7.

Aquí, describimos un método que implica la co-transfección de la proteína de interés (POI) y EGFP a las neuronas corticales de rata primarias. El EGFP actúa como un marcador morfológico para la identificación de las neuronas transpiradas con éxito y permite la medición de neurítos. Validamos este método mediante el uso de compuestos/moléculas que se han informado para modular el crecimiento de neurita. Además, FE65, una proteína adaptadora neuronal que se ha demostrado para estimular el crecimiento de neurita, se utilizó para ilustrar este enfoque8,9. Este protocolo implica (1) el aislamiento de las neuronas corticales primarias de embriones embrionarios embrionarios embrionarios embrionarios del día 18 (E18), (2) la co-transfección de neuronas con EGFP y el PDI (FE65 en este estudio) y (3) la toma de imágenes y el análisis de las neuronas mediante el procesamiento de imágenes software ImageJ con el plugin NeuronJ10,11.

Protocol

Todos los procedimientos seguidos se ajustaron a las normas éticas del comité de ética de experimentación animal de la Universidad China de Hong Kong. 1. Preparación de Coverslips Coloque un cubreobjetos circular escorazado de 18 mm en cada pocal de una placa de cultivo de tejido de 12 pocillos. Cubra el cubreobjetos con una solución de poli-D-lisina de 5 g/ml en una incubadora humidificada de 37 oC durante al menos 1 h. Aspirar la solución de poli-D-lisina…

Representative Results

Para probar esta metodología, utilizamos Cyto D y factor de crecimiento nervioso NGF, que se ha demostrado para inhibir y estimular el crecimiento de neurita respectivamente14,15,16. La longitud de neurita de las neuronas transtrófilos o infectadas por la EFP se midió después del tratamiento con Cito D o NGF. La eficiencia de transfección de EGFP a las neuronas fue del 2,7% (1.068 neuronas c…

Discussion

Como se ha dicho antes, PC12 y sus subclones son ampliamente empleados para el estudio de la extensión de neurita porque tienen una excelente eficiencia de transfección2,3. Por el contrario, las neuronas primarias tienen una baja tasa de transfección, que es un obstáculo importante para el estudio de los reguladores de crecimiento de neurita por transfección7. Aquí, describimos un protocolo conveniente para cuantificar el crecimiento…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por fondos del Consejo de Becas de Investigación Hong Kong, Health and Medical Research Fund (Hong Kong), el esquema de subvenciones directas CUHK, el fondo de dotación de United College y el TUYF Charitable Trust.

Materials

#5 tweezers Regine 5-COB
18 mm Circle Cover Slips Thermo Scientific CB00180RA Sterilize before use.
B27 Supplement Gibco 17504044
Cytochalasin D Invitrogen PHZ1063 Dissolved in DMSO.
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G8270
Dimethyl Sulfoxide Sigma-Aldrich D2650
Dissecting Scissors, 10 cm World Precision Instruments 14393
Dissecting Scissors, 12.5 cm World Precision Instruments 15922
EndoFree Plasmid Maxi Kit QIAGEN 12362
Fluorescence Mounting Medium Dako S302380
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent Invitrogen 11668019
Neurobasal Medium Gibco 21103049
NGF 2.5S Native Mouse Protein Gibco 13257019
Nugent Utility Forceps, 10mm, Straight Tip World Precision Instruments 504489
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
pEGFP-C1 Clontech #6084-1
pCI FE65 Please see references 8 and 15
PBS Tablets Gibco 18912014
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122
Poly-D-lysine hydrobromide Sigma-Aldrich P7280
Spatula Sigma-Aldrich S4147
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red Gibco 25300062
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061

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Cite This Article
Chan, W. W. R., Li, W., Chau, D. L. D., Lau, K. An Enhanced Green Fluorescence Protein-based Assay for Studying Neurite Outgrowth in Primary Neurons. J. Vis. Exp. (152), e60031, doi:10.3791/60031 (2019).

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