このプロトコルは、胚から成人まで、あらゆる発達段階でのショウジョウバエの生存率を評価するように設計されています。この方法は、異なる種型または成長条件の生存率を決定し、比較するために使用することができる。
ショウジョウバエメラノガスターでは、生存率アッセイは、特定の遺伝的背景の適合性を決定するために使用されます。アジェリックバリエーションは、開発のさまざまな段階で生存率の部分的または完全な損失をもたらす可能性があります。私たちの研究室は、胚から完全に成熟した成人にショウジョウバエの生存率を評価する方法を開発しました。この方法は、孵化した胚から始まり、発達中に異なる段階で存在する子孫の数を定量化することに依存する。胚を定量した後、L1/L2、子犬、成熟した成人を含む追加の段階がカウントされます。すべての段階を調べた後、カイ二乗試験などの統計分析を用いて、子孫の開始数(孵化胚)と後の段階との間に有意な差があるかどうかを判定し、観察された成人数で終わる。したがって、帰無仮説を拒絶または受け入れる(孵化した胚の数は、発達の段階を通じて記録された幼虫、子犬、および成人の数と等しくなる)。このアッセイの主な利点は、技術的なエラーによる損失を回避し、食品バイアルにそれらを転送するために胚のすすりを必要としないため、そのシンプルさと正確さです。ここで説明するプロトコルはL2/L3幼虫を直接調べるものではありませんが、これらを考慮して追加の手順を追加することができます。孵化した胚、L1、子犬、および成人の数を比較すると、さらなる研究のためにL2/L3段階で生存率が損なわれたかどうかを判断するのに役立ちます(着色食品の使用は幼虫の視覚的同定に役立ちます)。全体的に,この方法はショウジョウバエの研究者や教育者がフライライフサイクル中に生存率が損なわれる時期を判断するのに役立ちます。このアッセイを用いた株式の定期的な評価は、特に元の突然変異がフィットネスに影響を与える場合に、元の単離変異の表現型に影響を与える可能性のある二次変異の蓄積を防ぐことができます。このため、私たちの研究室は、Dm ime4対立の各コピーを複数保持し、他の分子解析に加えて、この方法で各ストックの純度を定期的にチェックします。
寿命は遺伝的および非遺伝的要因の影響を受ける。室温での標準的なラボの成長条件では、私たちの研究室は、同一の条件下で成長した異なるDm ime4アレンゲレの間でフィットネスと生存率の有意な変動を観察しました(図1および補足図)。生存率研究は、集団遺伝学的研究1、2、3、4における特定の対立遺伝子の組み合わせまたは成長状態の影響を調査するために頻繁に行われる。しかし、非相補的な突然変異群内での生存率の詳細な分析は、科学文献では見つけるのが難しい。研究者がバランスストック5、6を収容する食品バイアル内のその対立遺伝子について少数の個人のホモ接合性を見つけた場合、対立遺伝子は通常「必須ではない」とラベル付けされます。しかし、これらのホモ接合性が予想されるメンデリアン比で生じるかどうかを評価するための正確なカイ二乗分析は、5、6と報告されていない。任意のショウジョウバエストックの最も寛容な温度は室温(22-23 °C)であり、適切な栄養素で、野生型ハエのライフサイクルは7、8を完了するのに約12日かかります。野生型ショウジョウバエの各発達段階の持続時間が7,8として知られているように、このレポートに記載されている方法は、研究中のショウジョウバエ株が各段階に適合しているかどうかを調べるために使用することができるテストされた遺伝的背景に適したコントロールと比較して。開発9の1つの特定の側面に焦点を当てた研究とは対照的に、このプロトコルは、異なる発達段階での生存率を評価する実用的な方法を提供する。
私たちの研究室では、このプロトコルは、Meiosis 4(Dm ime4)のショウジョウバエ誘導剤に欠乏している株式の生存率を評価するために使用されます。Dm ime4は、ショウジョウバエおよび他の多細胞生物におけるRNA代謝に重要な役割を持つRNAメチルトランスフェラーゼをコードする必須遺伝子10であり、5,6,10,11歳,12歳,13歳,14歳.CRISPR/Cas9(補足図)を介して生成されたDm ime4の新規アレルを迅速に評価するために、バランス株のバイアル内で産生された成人の子孫のみをカウントするエンドポイント生存率アッセイが行われました(図1)。使用された株式の一部は、以前のDm ime4レポート5、6に記載されていました。ホモ接性変異体は、カイ二乗分析によって決定されるサブメンデリアンレベルで出現した(図1および補足材料)。これらの予想より低い数は、敷設された胚の数が少ないか、孵化した胚が少ないか、L1/L2または子犬の生存率の喪失によるものかを評価するために、これらの発達段階のそれぞれでカウントを含むように追跡を拡大しました(図2、 図3、図4、図5、図6、図6、図7、図8、図9)。
ここでは、野生型(OreR)ハエを用いた方法について説明する。他の遺伝的背景またはショウジョウバエ種との使用のためにこの方法を経験的にテストするために、我々は参照としてOreRを使用し、実験生物に応じてタイムポイントを調整することをお勧めします。 このプロトコルはさらに評価され、異種Dm ime4変異株5,6(図4)から雄と処女野生型雌を交渡すことによって生成された子孫の生存率を評価した。
要約すると、この方法は、ショウジョウバエにおける生存率の正確かつ簡単な評価を提供する。プロトコル全体の完了には約 14 日かかります。この手順には、専門的な技術的なスキルは必要ありません。しかし、正確性と再現性を高めるには、適切なタイミング、日常的な観測のスケジュール、注意深い寒天の移動が重要です。
ブドウ寒天椎胚側を食物バイアルに配置することに加えて、この手順のもう一つの重要なステップは、胚採取ミニケージからブドウ寒天プレートを取り除いた後、遅くとも48時間以内に寒天ディスクを食品バイアルに移す。48時間後に寒天を転写すると、寒天ディスクの脱水に起因する可能性が高い胚および幼虫の損失をもたらした。L2/L3遷移をカウントするには、プレートを72時間インキュベートする必要があります。この段階が重要である場合は、ブドウ寒天プレートを厚く注ぎ、湿気の多い部屋は乾燥を防ぐために使用する必要があります。十字架は35のmm版を収容する胚のコレクションケージで設定された;しかし、この手順は、60 mm または 100 mm ペトリプレートを収容する例など、より大きな胚採取ケージを使用して実行することもできます。 食品ボトルは、それらのサイズを収容するのに十分な大きさでなければなりません。
このプロトコルに追加できる手順があります。前述のように、L2/L3遷移は、必要な時間と寒天の潜在的な脱水のためにプレート上で定量化することは困難です。さらに、幼虫は寒天の表面で非常に移動性になり、それらを正確に数えるのが難しくなります。L2/L3幼虫を数える前に寒天の表面に軽度の麻酔薬(リドカイン溶液)を数滴入れるか、冷蔵庫にプレートを置くか、より正確に数えるために彼らの動きを遅くするのに役立ちます。 これらの変更に対する注意点は、変数(冷たい感度、麻酔感度)を導入し、生存率の結果を混乱させる可能性があることである。 これらのステップがなくても、着色食品を使用することで、研究者は、彼らが子犬を開始するために食品バイアルの側に落ち着くように放浪L3s/準備を定量化することができます。この方法の制限は、胚コレクションケージ内の十字架を設定するために、表現型のためにCO2で麻酔されて生き残るために十字架で使用される大人を必要とすることです。Dm ime4ホモ接質変異体オスは、CO2治療から目を覚ます数時間後によく回復し、死亡する。 大人を仕分けのために固定する他の方法は、数分間冷蔵庫にバイアルを置き、その後、動きを遅くし、迅速かつ効率的にソートするために砕いた氷にバイアルを転送するなど、探索することができます。
アレーラの強さと生存率への影響を比較する以外に、この方法は、定義された医薬品化合物に対する感度または耐性をスクリーニングするために使用することができます。細胞培養15、16、17、18における化合物毒性をスクリーニングする他の方法とは異なり、この方法は全生物を使用し、発達効果の評価を分析しやすくする。要するに、このプロトコルとそれに加えて、腐血強度だけでなく、環境因子および化学化合物がショウジョウバエの生存率、生殖能力、生殖能力、寿命、および持続時間に及ぼす影響を測定することができます。発達サイクル。
The authors have nothing to disclose.
私たちの仕事は、CFHとNIH PA -12-149 TO CFHにNIH 1R15GM1131-01によって資金提供されています。
Antimold additive | Carolina | ||
Beaker | Fisher Scentific | S76100J | Beaker |
Benchmark scientific digital hotplate | The Lab Depot | H3760H | Hot plate |
Britta-filtered tap water to prepare grape agar and instant fly food | Any tap water filtration system | ||
CO2 pistol or FlyNap | Carolina | Anesthetic to sort/count adult flies | |
Dissecting microscope/stereoscope | Amscope | SM-1TSZ-V203 | Dissecting microscope |
Drosophila culture vials and stoppers | Carolina | 173120 | Food vials for growing Drosophila |
Embryo collection mini cage | Genesee Scientific | 59-105 | chamber used to gather embryos |
Erlenmeyer flask | Sigma-Aldrich | 70980 | Erlenmeyer flask |
Formula 4-24 Instant Drosophila Medium, Blue | Carolina | https://www.carolina.com/drosophila-fruit-fly-genetics/formula-4-24-drosophila-medium-blue/FAM_173210.pr | |
Grape agar | Genesee Scientific | 47-102 | Media used for agar plates |
Instant fly flood | Carolina | 173210 | Blue media for food vials |
Large Petri dish or any clear container to be used as a humid chamber by placing wet paper towels to keep the grape-agar plates moist during incubation/pre and post microscopic observation | |||
Metal spatula (small) | Carolina | ||
Microwave | Any | To cook grape agar | |
Petri dish | Kord-Valmark | 2901 | Petri dish for grape agar |
Stir bar | The Lab Depot | 58948-981-EA | Magnetic stir bar |