Этот протокол описывает подход к производству гепатосфер из человеческих плюрипотентных стволовых клеток с использованием определенной системы культуры и самосборки клеток. Этот протокол воспроизводим в ряде клеточных линий, экономически эффективен и позволяет производство стабильных гепатосфер ов для биомедицинского применения.
Развитие возобновляемых источников тканей печени необходимо для улучшения клеточного моделирования и развития тканей человека для трансплантации. Эмбриональные стволовые клетки человека (HESCs) и индуцированные человеком плюрипотентные стволовые клетки (hiPSCs) представляют перспективные источники человеческих сфер печени. Мы разработали свободный от сыворотки и определенный метод клеточной дифференциации для генерации трехмерных сфер печени человека, образованных из плюрипотентных стволовых клеток человека. Потенциальным ограничением технологии является производство плотных сфер с мертвым материалом внутри. Для того, чтобы обойти это, мы использовали технологию микроколодца агарозы при определенных плотности клеток для контроля размера 3D-сфер, предотвращая генерацию апоптотичных и/или некротических ядер. Примечательно, что сферы, генерируемые нашим подходом, отображают функцию печени и стабильный фенотип, представляющий собой ценный ресурс для фундаментальных и прикладных научных исследований. Мы считаем, что наш подход может быть использован в качестве платформы технологии для разработки дальнейших тканей для моделирования и лечения заболеваний человека и в будущем может позволить генерации человеческих тканей со сложной архитектурой тканей.
Способность человека плюрипотентных стволовых клеток (HPSCs) к самообновлению, сохраняя при этом плюрипотентность, дает возможность производить типы клеток человека и тканей по требованию. hPSCs были эффективно дифференцированы в гепатоцитов, как клетки (HLCs) с использованием двумерных (2D) адепт системы культуры1,2,3,4,5,6 ,7,8,9,10. Эти системы были использованы для успешной модели моногенной болезни, вирусного жизненного цикла, медикаментозной индуцированной травмы печени (DILI), воздействия токсинов плода и безалкогольных жировых заболеваний печени (NAFLD)11,12,13 ,14,15. Тем не менее, эти модели обладают некоторыми недостатками, которые ограничивают их регулярное использование. К ним относятся выражение маркера плода, нестабильный фенотип и плохая архитектура тканей16,17,18,19, которые также могут ограничить экстраполяцию функции органа in vivo.
Чтобы преодолеть эти ограничения, были разработаны трехмерные (3D) дифференциации платформ для имитации архитектуры тканей vivo. Хотя это позволяет, эти подходы опираются на использование животных производных продуктов и матриц для привода генезиса тканей20,21,22, ограничивая масштабирование и широкое применение.
Здесь мы подробно процедуры для создания больших количеств 3D гепатосферы из hPSCs с использованием определенных материалов и клеточной самосборки. Примечательно, что ткани, генерируемые нашей процедурой остается функциональным в течение более одного года в клеточной культуре и способен поддерживать функцию печени in vivo23.
Таким образом, наш определенный подход к дифференциации позволяет выражать стабильные гепатосферы человека как из эмбриональных стволовых клеток человека (HESCs), так и из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSCs). Мы считаем, что описанная процедура представляет собой значительный прорыв в генерации 3D гепатосфер для фундаментальных и прикладных научных исследований.
Разработка определенных и ксено-свободных систем для производства гепатосфер в 3D требуется как для in vitro, так и для in vivo. В настоящее время большинство подходов к дифференциации гепатоцитов из пурипотентных стволовых клеток человека выполняются в двухмерных культурах адептов. Эти среды отсутствие многих экологических сигналов, участвующих в генезис тканей и гомеостаза, которые включают в себя; гетеротипические взаимодействия клеток, производство матрицы и ремоделирование, в результате плохого перевода в in vivo биологии18,19.
В результате, исследования были сосредоточены на альтернативных подходах к генерации гепатосфер из плюрипотентных стволовых клеток. Ряд 3D-исследований продвинулись области, но те зависят от продуктов животного происхождения20,22,24 для обеспечения поддержки и / или требуют использования человеческих тканей21,22, что усложняет масштабирование технологий и компрометирует экспериментальную воспроизводимость и применение.
Процедура, описанная в нашей статье(Рисунок 1) определена, эффективна, высоко воспроизводима и экономически эффективна, что позволяет производство функциональных сфер печени, которые остаются функциональными в течение года в пробирке и обеспечивают критическую поддержку печени в vivo14. Важно отметить, что эта платформа позволяет пользователю контролировать размер 3D печенок, ограничивая образование плотных некротических центров и потерю фенотипа.
Передача 3D гепатосфер в поли-HEMA покрытием пластин представляет собой критический шаг в этом протоколе. Важно, чтобы пипетка мягко на данном этапе в процедуре, чтобы избежать повреждения сферы. Кроме того, изменения мультимедиа должны быть выполнены тщательно, чтобы избежать напряжения сдвига и искажения структуры сферы.
В этих исследованиях, 3D гепатосферы отображается организованная структура(Рисунок 2 и Рисунок 3), цитохром P450 функции (Рисунок4) и выделяется печени белков, в том числе альбумин и альфа-фетопротеин (Рисунок 5). Эта процедура была успешно выполнена в четырех плюрипотентных линий стволовых клеток с сопоставимыми исходами. Заглядывая в будущее, эта технология может быть использована в качестве платформы для разработки дальнейших эндодермальных и мезенхимальных тканей со сложными архитектурами.
The authors have nothing to disclose.
Это исследование было поддержано наградами от Платформы регенеративной медицины Великобритании (MRC MR/L022974/1) и Главного научного управления (TCS/16/37).
Cell Culture and functional assays | |||
Agarose | Fisher Bioreagents | 10766834 | |
B27 supplement | Life Technologies | 12587-010 | |
beta-mercaptoethanol | Life Technologies | 31350 | |
Bovine Serum Albumin | Sigma-Aldrich | A2058 | |
DAPI | Invitrogen | D1306 | |
DMSO | Sigma-Aldrich | D5879 | |
DPBS, no calcium, no magnesium | ThermoFisher | 14190250 | |
DPBS with Calcium and Magnesium | ThermoFisher | 14040133 | |
Gentle cell dissociation reagent | STEMCELL Technologies | 7174 | |
GlutaMax | Life Technologies | 35050 | |
HepatoZYME-SFM | Life Technologies | 17705021 | |
Human Activin A | Peprotech | 120-14E | |
Human Alpha Fetoprotein ELISA | Alpha Diagnostics | 500 | |
Human Basic Fibrobaslt Growth Factor | Peprotech | 100-18B | |
Human Epithelial Gropwth Factor | Peprotech | 236-EG | |
Human Hepatocyte Growth Factor | Peprotech | 100-39 | |
Human Oncostatin M | Peprotech | 300-10 | |
Human Recombinant Laminin 521 | BioLamina | LN521-02 | |
Human Serum Albumin ELISA | Alpha Diagnostics | 1190 | |
Human Vascular Growth Factor | Bio-techne | 293-VE | |
Hydrocortisone 21-hemisuccinate sodium salt | Sigma-Aldrich | H4881 | |
Knockout DMEM | Life Technologies | 10829 | |
Knockout Serum Replacement | Life Technologies | 10828 | |
Micro-mold spheroids | Sigma-Aldrich | Z764000 | |
mTeSR1 medium | STEMCELL Technologies | 5850 | |
Non-essential amino acids | Life Technologies | 11140 | |
P450-Glo CYP1A2 Assay and Screening System | Promega | V8771 | |
P450-Glo CYP3A4 Assay and Screening System | Promega | V8801 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Life Technologies | 15140122 | |
poly-HEMA (Poly 2-hydorxyethyl methacrylate) | Sigma-Aldrich | P3932 | |
Recombinant mouse Wnt3a | Bio-techne | 1324-WN-500/CF | |
RPMI 1640 | Life Technologies | 21875 | |
Equipment | |||
Microwave | Bosch | ||
Microtome | Leika | RM2125RT | |
Oven | Thermoscientific | ||
Antibodies | |||
Primary antibodies | |||
Albumin | Sigma-Aldrich | A6684 | 1:100 (mouse) |
CYP3A4 | University of Dundee | University of Dundee | 1:200 (sheep) |
E-cadherin | Abcam | ab76055 | 1:200 (mouse) |
HNF-4α | Santa Cruz | sc-8987 | 1:100 (rabbit) |
IgG | DAKO | X0943 | 1:400 |
Vimentin | DAKO | M0725 | 1:100 (sheep) |