Summary

כביסה-החוקה בסיוע מחדש של רקומביננטי דרוזולה אטלסטין ליפוזומים בשביל השומנים

Published: July 03, 2019
doi:

Summary

היתוך ממברנה ביולוגי מזרז על ידי חלבונים היתוך מיוחדים. מדידת תכונות fusogenic של חלבונים ניתן להשיג על ידי ערבוב שומנים בעלי. אנו מציגים שיטה לטיהור רקומביננטי דרוסוילה אטלסטין, חלבון המרפא הומוטיפקס של המיון, ממנה את המבנה ליפוזומים מראש ובדיקת קיבולת היתוך.

Abstract

פיוז’ן ממברנה הוא תהליך מכריע בתא איקריוטית. חלבונים מיוחדים נחוצים כדי לזרז את הפיוז. האצנים הם רשתית פלזמית (אר) חלבונים תושב מעורבים במיזוג הומוטיפקס של ER. אנו מפרטים כאן שיטה לטיהור של גלוטתיון S-transferase (GT) ו פולי היסטידין מתויג דרוסופילה אטלסטין על ידי שני סיבובים של כרומטוגרפיה של זיקה. לימוד תגובות היתוך בחוץ גופית דורש חלבונים היתוך מטוהרים להיות מוכנס bilayer ליפיד. ליפוזומים הם ממברנות מודל אידיאלי, כמו הרכב השומנים וגודל ניתן לכוונן. למטרה זו, אנו מתארים שיטת החוקה על ידי הסרת חומרי ניקוי עבור Drosophila ילה atlastin לתוך ליפוזומים טרום. בעוד כמה שיטות מחדש החוקה זמינים, החוקה על ידי הסרת חומרי ניקוי יש מספר יתרונות הופכים אותו מתאים עבור atins וחלבונים דומים אחרים. היתרון של שיטה זו כולל תשואה גבוהה לחוקה וכיוון נכון של חלבון מחדש. שיטה זו ניתן להרחיב חלבונים ממברנה אחרים עבור יישומים אחרים הדורשים פרוטאוליפוזומים. בנוסף, אנו מתארים שומנים בהתבסס על השומנים מבוסס ערבוב של פרוטאוליפוזומים המשמשים כמדידה של היתוך הממברנה.

Introduction

פיוז’ן ממברנה הוא תהליך קריטי בתגובות ביולוגיות רבות. בתנאים ביולוגיים, פיוז’ן ממברנה אינה ספונטנית ודורשת היתוך מיוחדים חלבונים כדי לזרז תגובות כאלה1. היתוך ממברנה הומוטיפקס מתווכת בעלי חיים על ידי הדינמיט הקשורים GTPase atlastin2. תפקידה של אטסטין במיזוג הומוטיפקס הינו יסוד לצמתים תלת-כלאליים ב-ER היקפית, המהווה רשת מחוברים באופן גדול של tubules הנמתחים ברחבי התא. Atins יש מורפולוגיה תחום שימור המורכב GTPase גדול, שלושה צרור סליל התחום האמצעי, עוגן ממברנה הידרופובי, וזנב קצר cytoplasmic C-טרמינל3. במחקרים בעלי מבחנה עם רקומביננטי דרוסופילה אטלסטין הראו שכאשר היוו ליפוזומים, הוא שומר על המאפיינים הפוגניים שלה. לא הצליחו ללכוד. את הפיוז במבחנה אנו מתארים כאן מתודולוגיה לטיהור GT ו-פולי היסטידין מתויג רקומביננטי דרוסוילה אטלסטין, ממנה אותו ליפוזומים, ואומר היתוך.

לימוד פיוז’ן ממברנה בחוץ גופית מציג אתגר כמו חלבונים fusogenic בדרך כלל יש עוגן קרום. כדי ללמוד אותם, יש צורך ליצור מחדש אותם למודל השומנים bilayers. Unilamellar שלפוחיות גדולות (אהובה) הם כלי שימושי כדי ללמוד אינטראקציות חלבון השומנים. אנו מציגים כאן מערכת כדי להפוך LUVs של קומפוזיציות השומנים שונים לחידוש חלבון והיתוך assays. החוקה של חלבונים אינטגרליים לתוך LUVs יכול להיות מושגת על ידי מגוון רחב של שיטות כולל, אורגני הממס בתיווך מחדש, מנגנונים מכניים, או חומרי ניקוי סיוע החוקה4. אנו מציגים כאן שיטה ליצור מחדש את דרוסופילה אטלסטין ליפוזומים מראש על ידי הסרת חומרי ניקוי. היתרונות של שיטת החוקה הזאת כוללים תשואות גבוהה לחוקה הכיוון הנכון של atlastin ב bilayer השומנים. בנוסף, באמצעות שיטה זו, החלבון אינו מיובש או חשוף ממיסים אורגניים ובכך שמירה על מבנה ותפקוד. בין החסרונות שלה, הנוכחות של דטרגנטים לא יכול להיות אידיאלי עבור כל החלבונים ואת פרוטאוליזומים הסופי יכול להיות כמה אבקת כביסה שולבו bilayer השומנים. דיאליזה נוספת ניתן להשתמש כדי לחסל יותר של כביסה. עם זאת, דיאליזה עשויה להימשך זמן רב ולכן יכול להוביל לאובדן פעילות החלבון.

הערכת פעילות היתוך של atlastin יכול להיקבע על ידי ערבוב שומנים בדם כפי שמתואר בעבר2. כאן, אנו להתוות שיטה עבור מדידת atlastin בתיווך פיוז’ן דרך N-(7-ניטרובנץ-2-oxa-1, 3-diazol-4-yl (NBD)/Lissamine rhodamine-B סולוניל (rhodamine) התווית שומנים. הסדר הזה דורש היתוך של התורם (מתויג) פרוטאוליפוזומים וקבלה (ללא תווית) פרוטאוליפוזומים. ניתן למדוד את השחרור במהלך התגובה כדילול של תורם – קבלה של זוג “שכותרתו” ליפוזומים “ליפוזומים” ללא תווית כתוצאה של ערבוב שומנים במהלך היתוך ממברנה (איור 1)5. בעוד שהוא משמש כפרוקסי לפיוז ממברנה, הוא מוגבל בהבחנה בין פיוז’ן ממברנה המיפיוז, מדינה שבה רק את העלונים החיצוניים לערבב. כדי לטפל בבעיה זו, חלופה היא מקופת העלעל החיצוני של NBD על ידי dithionite. בעקבות אותה מתודולוגיה כמו NBD/rhodamine ערבוב השומנים, לאחר העלעל העלון החיצוני כל שחרור הסריג NBD על ידי היתוך יהיה עקב העלון הפנימי ערבוב8.

היתוך אלטרנטיבי חלופי על ידי תוכן פנימי מימית ערבוב כתובת היתוך מלא רק5. דוגמאות לכך הם טרביום (Tb)/dipicolinic חומצה (dpa) בחני ו חומצה trisulfonic (נמלים)/pt-קסילן bis (pyridinium) ברומיד (dpa) בחני. בשחפת/DPA assays, בריכה של ליפוזומים עם שחפת מתחת למים מעורבבים והתמזגו עם ליפוזומים עם DPA שבאנקפסולציה; עם היתוך, הקרינה הפלואורסצנטית מוגברת באמצעות העברת אנרגיה פנימית מ DPA ל-Tb בתוך [Tb (DPA)3] קומפלקס3- כלציה6. לעומת זאת, עבור נמלים/DPX assays אומר, הנמלים פלואורסצנטי מוקף על ידי DPX7. בעוד מערכות אלה כתובת תוכן פנימי ערבוב, יותר מעמיק הכנה של ליפוזומים נדרש להסרת ריאגנטים שאינם מסופף, כמו גם אינטראקציה לא מכוונת של fluorophores.

Protocol

1. טיהור של GT-DAtl-His8 ביטוי חלבונים והכנה ליפוסט המרה BL21 (DE3) E. coli עם מבנה Gt-datl-His8 בpGEX4-T32 ובחר על צלחת אמפיצילין. בחר טרנספורנט בודד ו-האיחסן 5 מ ל של LB + אמפיצילין (5 μL של 100 mg/mL אמפיצילין) בצינור התרבות 14 מ ל ו-דגירה ב -25 ° צ’ עם טלטול ב 200 סל ד עבור 6-8 h.הערה:</str…

Representative Results

היעילות של החוקה החוזרת מוצגת באיור 2. . במעבר הדרגתי מקוטע חלבון בלתי משולב היה מימדי בשכבה התחתונה (ב) או בשכבה האמצעית (M). חלבון מחדש צף לשכבה העליונה (T). דגימות של מעבר הצבע נקצרו ונותחו על ידי כתמים של מערכות SDS-PAGE ו-Coomassie הקוונפיקציה של הג על ידי densi, try מראה יעילות גבוהה מאו…

Discussion

השיטה מתארת שיטה יעילה לטיהור, העצמה מחדש ומדידת פעילות היתוך של רקומביננטי atlastin. כדי להבטיח תשואה גבוהה של atlastin פונקציונלי כמה צעדים קריטיים יש לשקול. הביטוי של atlastin חייב להיעשות בטמפרטורות נמוכות (16 ° c) כדי למנוע צבירה ואחד צריך לכוון ריכוז סופי בין 0.4 – 1.5 mg/mL. מאוד חלבון מדלל לא יהיה מחדש…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לד ר מיכאל שטרן והמעבדה שלו על התובנות והמשוב שלהם על פרויקטים הקשורים באטלסטין. עבודה זו נתמכת על ידי המכון הלאומי של מדעי הרפואה הכללית [R01GM101377] ואת המכון הלאומי של הפרעות נוירולוגיות שבץ [R01NS102676].

Materials

10 mL poly-prep chromatography columns Biored 731-1550
10 x 75 mm Flint glass tubes VWR 608225-402
47 mm diameter, 0.45um pore whatman sterile membrane filters Whatman 7141 104
96 well white plate NUNC 437796
Anapoe X-100 Anatrace 9002-931-1
Cell disrupter Avestin Avestin Emulsiflex C3
DOPS (1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phospho-L-serine (sodium salt)) Avanti 840035P-10mg DOPS
EDTA Research organics inc. 6381-92-6 Ethylenediaminetetraacetic acid
EDTA-free protease inhibitor cocktail Roche 11873580001 Complete protease inhibitor
Extruder Sigma Aldrich Z373400  Liposofast Basic Extruder
GE Akta Prime liquid chromatography system GE Pharmacia 8149-30-0006
Glutathione agarose beads Sigma aldrich G4510-50ml
Glycerol EMD GX0185-5
GTP Sigma Aldrich 36051-31-7 Guanosine 5' triphosphate sodium salt hydrate
HEPES, acid free Omnipur 5330
Imidazole fluka 5670
Immobilized metal affinity chromatography (IMAC) resin column GE Healthcare 17040801 1 mL HiTrap Chelating HP immobilized metal affinity chromatography columns
Iohexol Accurate chemical and scientific corporation AN 7050 BLK Accudenz/Nycodenz
IPTG Research products international corp. I56000-100.0 IPTG, dioxane free
L-Glutathione reduced Sigma-Aldrich G4251-5g
Magnesium chloride Fisher 7791-18-6
Methanol Omnisolv MX0488-1
NBD-DPPE (1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-(7-nitro-2-1,3-benzoxadiazol-4-yl) (ammonium salt)) Avanti 236495 NBD-DPPE
n-Dodecyl β-D-maltoside Chem-Impex International 21950
Nonpolar polystyrene adsorbent beads BioRad 152-3920 SM2 Biobeads
Nuclepore track-etch polycarbonate 19 mm 0.1 um pore membrane Whatman 800309
Optima LE80K Ultra centrifuge Beckman Coulter
Phosphatidylcholine, L-α-dipalmitoyl [choline methyl-3H] ARC ART0284 Titriated lipids
Plate reader TECAN TECAN infinite M200 plate reader
POPC (1-palmitoyl-2-oleoyl-glycero-3-phosphocholine) Avanti 850457C-25mg POPC
Potassium chloride MP 151944
Rh-DPPE (1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-(lissamine rhodamine B sulfonyl) (ammonium salt)) Avanti 236495 Rh-DPPE
Scintillation Cocktail National Diagnostics LS-272 Ecoscint XR Scintillation solution for aqueous or non-aqueous samples
Scintillation vials Beckman 592928 Fast turn cap Mini Poly-Q Vial
Thrombin Sigma T1063-1kU Thrombin from human plasma
Triton X-100 Fisher BP151-500
Ultra-clear centrifuge tubes 5 x 41 mm Beckman 344090
Vortex 9 to 13mm Tube Holder VWR 58816-138 Insert for vortexing flint glass tubes
Vortex Insert Retainer VWR 58816-132 Retainer needed for vortex tube holder
Vortexer VWR 2.235074 Vortex Genie 2 model G560
β-mercaptoethanol molecular biology grade Calbiochem 444203

References

  1. Chernomordik, L. V., Kozlov, M. M. Mechanics of membrane fusion. Nature Structural and Molecular Biology. 15, 675-683 (2008).
  2. Orso, G., et al. Homotypic fusion of ER membranes requires the dynamin-like GTPase Atlastin. Nature. 460, 978-983 (2009).
  3. McNew, J. A., Sondermann, H., Lee, T., Stern, M., Brandizzi, F. GTP-dependent membrane fusion. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 29, 529-550 (2013).
  4. Rigaud, J. L., Pitard, B., Levy, D. Reconstitution of membrane proteins into liposomes: application to energy-transducing membrane proteins. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Bioenergetics. 1231, 223-246 (1995).
  5. Düzgüneş, N. Fluorescence Assays for Liposome Fusion. Methods in Enzymology. 372, 260-274 (2003).
  6. Wilschut, J., Duzgunes, N., Fraley, R., Papahadjopoulos, D. Studies on the mechanism of membrane fusion: kinetics of calcium ion induced fusion of phosphatidylserine vesicles followed by a new assay for mixing of aqueous vesicle contents. Biochemistry. 19, 6011-6021 (1980).
  7. Ellens, H., Bentz, J., Szoka, F. C. Proton- and calcium-induced fusion and destabilization of liposomes. Biochemistry. 24, 3099-3106 (1985).
  8. Meers, P., Ali, S., Erukulla, R., Janoff, A. S. Novel inner monolayer fusion assays reveal differential monolayer mixing associated with cation-dependent membrane fusion. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Biomembranes. 1467, 277-243 (2000).
  9. Schaffner, W., Weissmann, C. A rapid, sensitive, and specific method for the determination of protein in dilute solution. Analytical Biochemistry. 56, 502-514 (1973).
  10. MacDonald, R. C., et al. Small-volume extrusion apparatus for preparation of large, unilamellar vesicles. Biochimica Et Biophysica Acta. 1061, 297-303 (1991).
  11. Paternostre, M. T., Roux, M., Rigaud, J. L. Mechanisms of membrane protein insertion into liposomes during reconstitution procedures involving the use of detergents. 1. Solubilization of large unilamellar liposomes (prepared by reverse-phase evaporation) by Triton X-100, octyl glucoside, and sodium cholate. Biochemistry. 27, 2668-2677 (1988).
  12. Scott, B. L., et al. Liposome Fusion Assay to Monitor Intracellular Membrane Fusion Machines. Methods in Enzymology. 372, 274-300 (2003).
  13. Zhang, W., et al. Crystal structure of an orthomyxovirus matrix protein reveals mechanisms for self-polymerization and membrane association. PNAS. 114, 8550-8555 (2017).
  14. Parlati, F., et al. Rapid and efficient fusion of phospholipid vesicles by the α-helical core of a SNARE complex in the absence of an N-terminal regulatory domain. PNAS. 96, 12565-12570 (1999).
  15. Sugiura, S., Mima, J. Physiological lipid composition is vital for homotypic ER membrane fusion mediated by the dynamin-related GTPase Sey1p. Scientific Reports. 6, 20407 (2016).
  16. Powers, R. E., Wang, S., Liu, T. Y., Rapoport, T. A. Reconstitution of the tubular endoplasmic reticulum network with purified components. Nature. 543, 257-260 (2017).
  17. Betancourt-Solis, M. A., Desai, T., McNew, J. A. The atlastin membrane anchor forms an intramembrane hairpin that does not span the phospholipid bilayer. Journal of Biological Chemistry. 293, 18514-18524 (2018).

Play Video

Cite This Article
Betancourt-Solis, M. A., McNew, J. A. Detergent-assisted Reconstitution of Recombinant Drosophila Atlastin into Liposomes for Lipid-mixing Assays. J. Vis. Exp. (149), e59867, doi:10.3791/59867 (2019).

View Video