Summary

В vitro Поколение мыши сердце поле конкретных сердечных клеток-прародителей

Published: July 03, 2019
doi:

Summary

Цель этого метода состоит в том, чтобы генерировать сердце поле конкретных клеток-прародителей в пробирке для того, чтобы изучить спецификации клеток-прародителей и функциональные свойства, а также для создания камерных конкретных сердечных клеток для моделирования сердечно-сосудистых заболеваний.

Abstract

Плюрипотентные стволовые клетки предлагают большой потенциал для понимания развития сердца и болезней и для регенеративной медицины. Хотя последние достижения в области развития кардиологии привели к генерации сердечных клеток из плюрипотентных стволовых клеток, неясно, если два сердечных полей – первое и второе сердце поля (FHF и SHF) – индуцируются в плюрипотентных стволовых клеток систем. Для решения этой проблемы мы создали протокол для спецификации in vitro и изоляции клеток сердечного полевого декабриста. Мы использовали эмбриональные линии стволовых клеток, несущие Hcn4-GFP и Tbx1-Cre; Роза-RFP репортеров FHF и SHF, соответственно, и живые клетки иммуно-сточки клеточного белка cxcr4, маркер SHF. При таком подходе мы создали клетки-прародители, которые переизбавляли функциональные свойства и транскриптом их аналогов in vivo. Наш протокол может быть использован для изучения ранней спецификации и сегрегации двух сердечных полей и для создания камерных клеток сердца для моделирования сердечных заболеваний. Так как это в пробирке органоидной системы, он не может обеспечить точную анатомическую информацию. Тем не менее, эта система преодолевает низкую доступность эмбрионов ступенчатой стадии и может быть высококлассным для высокопроизводительных экранов.

Introduction

Использование плюрипотентных стволовых клеток (PSCs) произвелреволюцию в области регенерации сердца и персонализированной медицины с конкретными миоцитами для пациентов для моделирования заболеваний и медикаментозной терапии1,2,3, 4. Совсем недавно, в пробирке протоколы для генерации предсердий против желудочков, а также кардиостимулятор, как PSC полученных кардиомиоцитов были разработаны5,6. Однако, может ли кардиогенез быть воссоздан в пробирке для изучения развития сердца и последующего создания желудочковых камер-специфических сердечных клеток до сих пор неясно.

Во время раннего эмбрионального развития, мезодермальные клетки под влиянием секретных морфогенов, таких как BMP4, Wnts и Activin A образуют примитивную полосу7. Сердечные мезодермальные клетки, отмеченные выражением Mesp1, мигрируют передним и в последнее время, чтобы сформировать сердечный полумесяц, а затем примитивную сердечную трубку7,8. Эта мигрированная группа клеток включает в себя две очень разные популяции клеток-прародителей сердца (КПК), а именно первое и второе поле сердца (FHF и SHF)9,10. Клетки из SHF являются высоко пролиферативными и мигрирующими и в первую очередь отвечают за удлинение и петлю сердечной трубки. Кроме того, SHF клетки дифференцируются к кардиомиоцитов, фибробластов, гладких мышц и эндотелиальных клеток, как они входят в сердечную трубку, чтобы сформировать правый желудочек, правый желудочковой оттока и большую часть обоих предсердий7,10. В отличие от этого, клетки FHF менее пролиферативной и мигрирующих и дифференцировать в основном кардиомиоцитов, поскольку они приводят к левому желудочку и меньшая часть предсердий11. Кроме того, shF прародители отмечены выражением Tbx1, FGF8, FGF10 и Six2 в то время как клетки FHF выражают Hcn4 и Tbx511,12,13,14,15.

PSCs может дифференцировать к всем 3 слоямзародыша и затем к любому типу клетки в теле 4,16. Таким образом, они предлагают огромный потенциал для понимания развития сердца и для моделирования конкретных дефектов развития, приводящих к врожденным порокам сердца, наиболее частой причиной врожденных дефектов17. Большая подгруппа врожденных пороков сердца включает камерно-специфические сердечные аномалии18,19. Тем не менее, до сих пор неясно, являются ли они происходят из аномальной разработки поля сердца. Кроме того, учитывая неспособность кардиомиоцитов размножаться после рождения, были предприняты значительные усилия посозданию сердечной ткани для регенерации сердца 1,7,20. Учитывая физиологические и морфологические различия между сердечными камерами, генерация камерной сердечной ткани с использованием ПСК имеет важное значение. Хотя последние достижения в области развития кардиологии привели к надежной генерации сердечных клеток из PSCs, до сих пор неясно, если два сердца поля могут быть индуцированы в системах PSC.

Для повторения кардиогенеза in vitro и изучения спецификации и свойств КПК, мы ранее использовали систему, основанную на дифференциации PSC полученных сердечных сфероидов21,22,23,24. Недавно мы создали эмбриональные стволовые клетки мыши (mESCs) с GFP и RFP репортеров под контролем гена FHF Hcn4 и гена SHF Tbx1, соответственно (mESCsTbx1-Cre; Роза-РФП; HCN4-GFP) 25. В пробирке дифференцированные mESCs образуются сердечные сфероиды, в которых GFP и RFP’ клетки появились из двух различных областей мезодермальных клеток и узорчатые в комплементарной манере. В результате клетки ГФПЗ и ПФР, проявляющие соответственно характеристики FHF и SHF, определяемые анализами РНК-секвенирования и клонального анализа. Важно отметить, что с помощью mESCs проведения Isl1-RFP репортер (mESCIsl1-RFP), мы обнаружили, что SHF клетки были точно отмечены клеточной поверхности белка CXCR4, и это может позволить изоляцию сердца поля конкретных клеток без трансгенов. В настоящем протоколе будет описано генерация и изоляция сердечных полевых КТК от МСК, которые могут служить ценным инструментом для изучения камерных сердечных заболеваний.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: В пробирке поколения сердца поле конкретных клеток сердца клеток-прародителей(Рисунок 1). 1. Обслуживание мыши ESCs Рост mESC (mESCsTbx1-Cre; Роза-РФП; HCN4-GFP, mESCIsl1-RFP)25 на 0,1% (w/v) желатина покрытием T25 колбы в 2i с…

Representative Results

После примерно 132 ч дифференциации, Tbx1-RFP и Hcn4-GFP CpCs могут быть обнаружены с помощью флуоресцентного микроскопа(рисунок 2). Как правило, ячейки GFP и RFP появляются примерно в одно и то же время. Две популяции КПК продолжают расширяться в непосредственной близости и, как правил…

Discussion

В нашем протоколе мы описываем методологию генерации сердечных сфероидов и изолированных сердечных полевых КПК. Они могут быть использованы для изучения механизмов спецификации КТК и их свойств, а также для моделирования сердечных камер ных заболеваний. Одна из ранее опубликованных ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

E. T. была поддержана Магией, которая имеет значение и AHA. К. К. получил поддержку грантов от NICHD/NIH (R01HD086026), AHA и MSCRF.

Materials

β-mercaptoethanol Sigma M6250
0.1% (w/v) Gelatin EMD Millipore ES-006-B
100mM Sodium Pyruvate Gibco 11360
100X Pen/Strep Gibco 15070-063
1X PBS w/o Calcium and Magnesium Thermo Fisher Scientific 21-040-CV
20% Paraformaldehyde Thermo Fisher Scientific 50-980-493
5 ml Polystyrene round-bottom tube with a 40μm cell strainer BD Falcon 35223
Activin A R & D Systems 338-AC-010
Ascorbic Acid Sigma A-4544
B27 minus vitamin A (50x) Thermo Fisher Scientific 12587010
BMP4 R & D Systems 314-BP
Bovine Serum Albumin Sigma A2153
Cell sorter Sony SH800 Sony or any other fluorescence-activated cell sorter
Cell strainer 70μm Thermo Fisher Scientific 08-771-2
Centrifuge Sorvall Legend XT Thermo Fisher Scientific 75004508
CHIR99021 Selleck chemicals S2924
CO2 Incubator Thermo Fisher Scientific 51030285
Corning Ultra Low Attachment T75 flask Corning 07-200-875
Countless II FL automated cell counter Thermo Fisher Scientific
Donkey anti-mouse IgG secondary antibody, Alexa Fluor 647 conjugate Thermo Fisher Scientific A-31571, Lot #1757130
Dulbecco's Modified Eagle's Medium high glucose (DMEM) Gibco 11965-092
EDTA Sigma E6758
ESGRO (LIF) Millipore ESG1106
EVOS FL microscope Thermo Fisher Scientific AMF4300
Fetal Bovine Serum Invitrogen SH30071.03
Glasgow’s MEM (GMEM) Gibco 11710035
GlutaMAX (100 x) Gibco 35050-061
Ham’s F12 Gibco 10-080-CV
HEPES Sigma H3375
IMDM Gibco 12440053
Monothioglycero (MTG) Sigma M-6145
Mouse anti-Troponin T antibody Thermo Fisher Scientific MS-295-P1
N2-SUPPLEMENT Gibco 17502-048
Non-essential amino acid solution (NEAA Invitrogen 11140-050
PD0325901 Selleckchem S1036
PerCP-efluor 710 conjugated anti-Cxcr4 antibody Thermo Fisher Scientific 46-9991-82
Suspension culture dish 150 mm x 25mm Corning 430597
T25 flasks Corning 353109
TrypLE (Trypsin) Gibco 12604
Y-27632 (ROCK inhibitor) Stem cell technologies 72304

References

  1. Laflamme, M. A., Murray, C. E. Heart regeneration. Nature. 473 (7347), 326-335 (2011).
  2. Spater, D., Hansson, E. M., Zangi, L., Chien, K. R. How to make a cardiomyocyte. Development. 141 (23), 4418-4431 (2014).
  3. Birket, M. J., Mummery, C. L. Pluripotent stem cell derived cardiovascular progenitors–a developmental perspective. Developmental Biology. 400 (2), 169-179 (2015).
  4. Bellin, M., Marchetto, M. C., Gage, F. H., Mummery, C. L. Induced pluripotent stem cells: the new patient. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 13 (11), 713-726 (2012).
  5. Lee, J. H., Protze, S. I., Laksman, Z., Backx, P. H., Keller, G. M. Human Pluripotent Stem Cell-Derived Atrial and Ventricular Cardiomyocytes Develop from Distinct Mesoderm Populations. Cell Stem Cell. 21 (2), 179-194 (2017).
  6. Protze, S. I., et al. Sinoatrial node cardiomyocytes derived from human pluripotent cells function as a biological pacemaker. Nature Biotechnology. 35 (1), 56-68 (2017).
  7. Galdos, F. X., et al. Cardiac Regeneration: Lessons From Development. Circulation Research. 120 (6), 941-959 (2017).
  8. Lescroart, F., et al. Early lineage restriction in temporally distinct populations of Mesp1 progenitors during mammalian heart development. Nature Cell Biology. 16 (9), 829-840 (2014).
  9. Bruneau, B. G. Signaling and transcriptional networks in heart development and regeneration. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5 (3), 008292 (2013).
  10. Kelly, R. G., Buckingham, M. E., Moorman, A. F. Heart fields and cardiac morphogenesis. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 4 (10), (2014).
  11. Bruneau, B. G., et al. Chamber-specific cardiac expression of Tbx5 and heart defects in Holt-Oram syndrome. Developmental Biology. 211 (1), 100-108 (1999).
  12. Watanabe, Y., et al. Fibroblast growth factor 10 gene regulation in the second heart field by Tbx1, Nkx2-5, and Islet1 reveals a genetic switch for down-regulation in the myocardium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (45), 18273-18280 (2012).
  13. Huynh, T., Chen, L., Terrell, P., Baldini, A. A fate map of Tbx1 expressing cells reveals heterogeneity in the second cardiac field. Genesis. 45 (7), 470-475 (2007).
  14. Zhou, Z., et al. Temporally Distinct Six2-Positive Second Heart Field Progenitors Regulate Mammalian Heart Development and Disease. Cell Reports. 18 (4), 1019-1032 (2017).
  15. Spater, D., et al. A HCN4+ cardiomyogenic progenitor derived from the first heart field and human pluripotent stem cells. Nature Cell Biology. 15 (9), 1098-1106 (2013).
  16. Cho, G. S., Tampakakis, E., Andersen, P., Kwon, C. Use of a neonatal rat system as a bioincubator to generate adult-like mature cardiomyocytes from human and mouse pluripotent stem cells. Nature Protocols. 12 (10), 2097-2109 (2017).
  17. Bruneau, B. G., Srivastava, D. Congenital heart disease: entering a new era of human genetics. Circulation Research. 114 (4), 598-599 (2014).
  18. Liu, X., et al. The complex genetics of hypoplastic left heart syndrome. Nature Genetics. 49 (7), 1152-1159 (2017).
  19. Li, L., et al. HAND1 loss-of-function mutation contributes to congenital double outlet right ventricle. International Journal of Molecular Medicine. 39 (3), 711-718 (2017).
  20. Garbern, J. C., Lee, R. T. Cardiac stem cell therapy and the promise of heart regeneration. Cell Stem Cell. 12 (6), 689-698 (2013).
  21. Uosaki, H., et al. Direct contact with endoderm-like cells efficiently induces cardiac progenitors from mouse and human pluripotent stem cells. PLoS One. 7 (10), 46413 (2012).
  22. Cheng, P., et al. Fibronectin mediates mesendodermal cell fate decisions. Development. 140 (12), 2587-2596 (2013).
  23. Shenje, L. T., et al. Precardiac deletion of Numb and Numblike reveals renewal of cardiac progenitors. Elife. 3, 02164 (2014).
  24. Morita, Y., et al. Sall1 transiently marks undifferentiated heart precursors and regulates their fate. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 92, 158-162 (2016).
  25. Andersen, P., et al. Precardiac organoids form two heart fields via Bmp/Wnt signaling. Nature Communications. 9 (1), 3140 (2018).
  26. Domian, I. J., et al. Generation of functional ventricular heart muscle from mouse ventricular progenitor cells. Science. 326 (5951), 426-429 (2009).

Play Video

Cite This Article
Tampakakis, E., Miyamoto, M., Kwon, C. In Vitro Generation of Heart Field-specific Cardiac Progenitor Cells. J. Vis. Exp. (149), e59826, doi:10.3791/59826 (2019).

View Video