Wir stellen ein Protokoll vor, um dynamische Messungen der Atemwegsflüssigkeit pH unter Dünnschichtbedingungen mit einem Plattenleser zu machen.
In den letzten Jahren wurde die Bedeutung der Schleimhautoberfläche pH-Wert in den Atemwegen durch ihre Fähigkeit, die Flüssigkeit (ASL) der Atemwege zu regulieren, die Flüssigkeit, die Viskosität und die Aktivität der antimikrobiellen Peptide, Schlüsselparameter, die bei der angeborenen Verteidigung der Lunge. Dies ist von primärer Relevanz im Bereich chronischer Atemwegserkrankungen wie der zystischen Fibrose (CF), wo diese Parameter dysreguliert sind. Während verschiedene Gruppen ASL pH sowohl in vivo als auch in vitro untersucht haben, berichten ihre Methoden von einer relativ breiten Palette von ASL-pH-Werten und sogar widersprüchlichen Befunden über etwaige pH-Unterschiede zwischen NichtCF und CF-Zellen. Darüber hinaus liefern ihre Protokolle nicht immer genügend Details, um die Reproduzierbarkeit zu gewährleisten, die meisten sind niedriger Durchsatz und erfordern teure Geräte oder Fachwissen, um sie umzusetzen, was sie in den meisten Labors schwierig zu etablieren macht. Hier beschreiben wir einen halbautomatisierten Leuchtstoffplattenleser-Assay, der die Echtzeitmessung von ASL pH unter Dünnschichtbedingungen ermöglicht, die der In-vivo-Situation näher kommen. Diese Technik ermöglicht stabile Messungen für viele Stunden von mehreren Atemwegskulturen gleichzeitig und, was wichtig ist, können dynamische Veränderungen im ASL-pH-Wert als Reaktion auf Agonisten und Inhibitoren überwacht werden. Um dies zu erreichen, werden die ASL der vollständig differenzierten primären menschlichen Atemwegepithelzellen (hAECs) über Nacht mit einem pH-empfindlichen Farbstoff befleckt, um die Rücknahme der überschüssigen Flüssigkeit zu ermöglichen, um dünne Folienbedingungen zu gewährleisten. Nachdem die Fluoreszenz in Anwesenheit oder Abwesenheit von Agonisten überwacht wird, wird die pH-Kalibrierung vor Ort durchgeführt, um die Volumen-und Farbstoffkonzentration zu korrigieren. Die beschriebene Methode bietet die erforderlichen Kontrollen, um stabile und reproduzierbare ASL-pH-Messungen zu machen, die letztlich als Medikamentenentdeckungsplattform für die personalisierte Medizin verwendet werden könnten, sowie an andere epitheliale Gewebe und experimentelle Zustände, wie entzündliche and/oder Wirt-Erreger-Modelle.
Das Ufay-Epithel wird von einer dünnen (~ 10 μm) Flüssigkeitsschicht bedeckt, die als Luftwegoberflächenflüssigkeit (ASL) bezeichnet wird. Die Zusammensetzung und Tiefe (Hydration) dieser ASL ist streng reguliert und kontrolliert die Effizienz der Atemwege durch die Mucociliary Rolltreppe1,2,3,4. In den letzten Jahren wurde die Bedeutung des ASLH +/HCO3– Inhalt von verschiedenen Gruppen aufgrund seiner Fähigkeit, ASL-Hydratation5, Atemwegentzündung 6 und Infektion 7 zu regulieren,nachgewiesen, 8 sowie Schleimviskosität8,9. Wichtig ist, obwohl es einige Kontroversen gibt, viele Studien berichteten von einer Dysregulation des pH-Wertes bei chronischen Atemwegserkrankungen wie Asthma10, 11, 12,COPD11, Bronchiectasis11, chronische Rhinosinusitis13,14 und zystische Fibrose (CF)5, 9,15,16, 17,die Andeuten, dass Therapien, die ASL-pH-Wert wiederherstellen, nützlich sein könnten, um mehrere Arten von chronischen Atemwegserkrankungen zu behandeln. CF ist die häufigste autosomal-rezessive genezessive Erbkrankheit in kaukasischen Populationen und ist auf Mutationen im CF Transmembran-Leitungshandlungsregler (CFTR) zurückzuführen. Dieses Gen kodiert einen Anionkanal (HCO3– und Cl–), der eine entscheidende Rolle im Ionen-und Flüssigkeitstransport und bei der HomöostaseüberEpithelia 18 spielt. Obwohl CF eine Multiorganerkrankung ist, ist die Lungenpathologie die Hauptursache für MorbiditätundMortalität 19,20und wenn man bedenkt, dass der primäre Defekt in CFein beeinträchtigter Transport von Cl-und HCO3–ist, Man kann vermuten, dass extrazelluläre Flüssigkeit pH bei Menschen mit CF wird dysreguliert im Vergleich zu Menschen, die nicht CF haben. So ist die Messung von ASL pH ein aktueller Bereich der CF-Forschung und verschiedene Gruppen haben Techniken entwickelt, um ASL pH in CF zu messen Airways.
In vivo wurde der pH-Wert der Luftfahrt mit verschiedenen Techniken gemessen, von Mikrosonden (Glasfaser-, Gold-oder Mobidiumsonden)5,21,22, 23,24 biszu pH-Messungen von Erwartbares Material oder ausgeatmete Atemkondensat (EBC)10,11,12,25,26,27. Im Forschungsbereich CF wird der pH-Wert aufgrund seiner möglichen klinischen Implikationen umfassend untersucht. Theoretisch könnte eine alkalische Verbesserung der Atemwege die bakterielle Tötung erhöhen und die Homöostase der Schleimhaut und der Atemwege insgesamt verbessern. In vivo/ex-vivo-Studien wird jedoch von einer breiten Palette von pH-Werten berichtet, und bis heute sind die Ergebnisse nicht schlüssig, was das Vorhandensein eines Unterschieds im pH-Wert zwischen Nicht-CF-und CF-Luftwegen betrifft. Anfang der 2000er Jahre meldeten verschiedene Gruppen den pH-Wert der EBC. In nicht erkrankten Gruppen lagen die pH-Werte zwischen 4,6 und 8,5, aber interessanterweise wurde EBC pH bei Verschärfungen bei Menschen mit CF12,27saurergefunden. In jüngerer Zeit haben in vivo Messungen der ASL in Mensch und Tier Modelle der CF berichtet widersprüchliche Ergebnisse 16,17, 21,22,23 , 24 und es ist immer noch unklar, ob CF-Atemwege saurer sind als nicht-CF-Luftwege.
Da sich in vivo die Messung des unteren ASL-pH-Wertes als schwierig erwiesen hat, da die Atemwege sehr gering sind und das Vorhandensein von Schleimhautstecker bei Krankheiten besteht, haben sich viele Gruppen an In-vitro-Experimente gewandt, um ASL-pH-Maßnahmen zu messen, vor allem mit drei verschiedenen Methoden. Der erste Ansatz verwendet dextrangekoppelte zell-impernbare pH-empfindliche Fluoreszenzfarbstoffe,die als Trockenpulver hinzugefügt werden, entweder direkt in die ASL oder durch die Verwendung einer Inertflüssigkeit namens Perfluorkohle (PFC)5,8,16 , 17 , 28 , 29 , 30 , 31 , 32. Diese Technik bietet jedoch wenig Kontrolle über die genaue Menge des Farbstoffs, der den Kulturen zugesetzt wird, und birgt die Gefahr von Farbstoffaggregaten und großen Konzentrationsunterschieden zwischen Proben und/oder Experimenten und sogar innerhalb derselben Probe. . Es wurde auch in der Regel mit einem konfokalen Mikroskop durchgeführt, das seine Anwendbarkeit einschränkt und in vielen Fällen eine detaillierte Überwachung mehrerer Proben und Veränderungen der Aufzeichnungsbedingungen verhindert. Die zweite Methode zur Messung von ASL pH ist der Einsatz von pH-empfindlichen Mikroelektroden5,15. ASL-pH-Messungen sind daher nicht von der fluoreszierenden Farbstoffkonzentration abhängig und sollten robustere und reproduzierbare Ergebnisse liefern. Diese Methode erlaubt jedoch keine dynamischen Echtzeitmessungen des ASL-pH-Wertes und ist auch nicht einfach, mehrere Messwerte unter verschiedenen Bedingungen durchzuführen. Es handelt sich auch um ein arbeitsintensives, komplexes Verfahren, das eine spezielle Ausrüstung (Mikroelektrodenfabrikation/elektrophysiologische Aufzeichnungsgeräte) und eine Schulung für die Sammlung der Proben für die anschließende pH-Messung und-Kalibrierung erfordert. Darüber hinaus haben diese beiden Techniken auch einige Ungereimtheiten in der Fähigkeit gezeigt, reproduzierbare Ergebnisse zu erzielen: Mit der pH-empfindlichen Leuchtstofffarbstoffmethode, Tang et al. berichtete Werte von 7,35 für Nicht-CF ASL und 7.0für CF ASL 8, während in einem mehr Zuletzt wurde der ASL pH von der gleichen Gruppe mit 6,9 und 6,4 für Nicht-CF und CF,jeweils 17, bewertet. In ähnlicher Weise gaben Mikroelektrodenmessungen in einer Studie von 2003 15 Werte von 6,4 in non-CF ASL und 6,1 in CF ASL, während die gleiche Gruppe in einer Studie von 20135Werte von 6,7 für Nicht-CF ASL und 6,45 für CF ASL meldete. Schließlich fügen die Forscher im dritten Ansatz eine relativ große Menge schwach gepufferter Lösungen auf die apische (Schleimhaut) Oberfläche der Kulturen hinzu, wodurch dünne Filmbedingungen zerstört werden und die ASL-Zusammensetzung verändert wird, und möglicherweise auch ihre Regulierung. Der pH-Wert wird dann entweder mit pH-empfindlichen Fluoreszenzfarbstoffen 33, durch eine pH-stat-Tittrationsmethode in einer Ussing-Kammer13, 14,gemessenoder erfordert, dass der verdünnte ASL aus den Kulturen entfernt und pH mit einem pH gemessen wird. Elektrode,Analysator oder Lackmu-Streifen 34. Eine weitere Schwierigkeit bei der genauen Messung des ASL-pH-Wertes ist die Etablierung einer möglichst genauen Standardkurve. In der Tat, ob die Messwerte mit einer Elektrode durchgeführt werden, die den Unterschied des elektrischen Potenzials über ein Harz oder mit pH-empfindlichen Leuchtstofffarben messen wird, werden beide Ansätze durch die lokale Mikroumgebung der Proben beeinflusst werden. gemessen. Genauer gesagt kann die Dissoziationskonstante (Kd) der Farbstoffe je nach Temperatur, ionischer Stärke, Viskosität sowie möglichen Wechselwirkungen des Farbstoffs mit zellulären Bestandteilen wie Proteinen und potentiellem Schleim erheblich variieren.
Um zu versuchen, viele dieser technischen Probleme zu überwinden und eine dynamischere, einfachere und höhere Durchsatzmethode zu entwickeln, haben wir eine In-vitro-Technik entwickelt, die ASL pH in primären hAEC-Kulturen mit einem zellimpernlichen pH-sensiblen Leuchtstofffarbstoff in einem handelsüblichen Plattenleser. Die Methode erzeugt reproduzierbare, dynamische, halbautomatische Echtzeitmessungen des ASL pH voll differenzierter 3D-Zellkulturen unter Dünnschichtbedingungen. Durch den Einsatz eines mehrwell-Plattenlesers kann dieser halbautomatische Test nahezu gleichzeitige pH-Messungen für bis zu 24 Bedingungen über 12 h durchführen und die Wirkung verschiedener Agonisten oder Inhibitoren überwachen. In diesem Beitrag beschreiben wir die Methodik im Detail und berichten repräsentative Ergebnisse unter positiven und negativen Kontrollbedingungen, die die Technik bestätigen.
Hier stellen wir ein detailliertes Protokoll für die dynamische Messung von ASL pH in primären menschlichen Atemweg-Epithelzellen zur Verfügung. Zu den kritischen Schritten gehören das Abwaschen des Schleims von der apischen Oberfläche der Zellen, die Messung und Subtraktion des Hintergrundes mit den gleichen Parametern wie im Experiment, die Optimierung der z-Position sowie der Gewinn und die Durchführung einer pH-Kalibrierung vor Ort.
Der erste Schritt des Waschen der Zellen ist entscheidend, da eine dicke Schleimschicht (i) verhindern kann, dass die Farbstoffe die Perimisilismisere (PCL) erreichen und (ii) die Erkennung von Veränderungen der Fluoreszenz als Reaktion auf Agonists/Inhibitoren verzögern oder verhindern. Unsere Methode wurde entwickelt, um zu untersuchen, wie primäre hAECs die Aktivität von HCO3– und H+ Transportern als Reaktion auf Agonisten moduliert. Während es interessant sein wird zu untersuchen, wie sich Veränderungen im PCL-pH-Wert auf Veränderungen im SchleimpH-Wert beziehen, ist eine Weiterentwicklung dieses Protokolls notwendig, einschließlich der Verwendung verschiedener molekularer Gewichtsdextrans, um die 2 Schichten und Z-Scans durch die Ganz ASL.
Die Hintergrundmessung ist ein weiterer wichtiger Schritt dieses Protokolls. Die apische Oberfläche der vollständig differenzierten Primärluftwege-Epithelia ist selten völlig flach, was den Lichtweg und damit den Hintergrund beeinflussen wird. Die Sicherstellung, dass die Hintergrundwerte in den gleichen lokalen Punkten der Brunnen durchgeführt werden wie während des Experiments, ist entscheidend für die Reproduzierbarkeit und Stabilität der Aufnahmen.
Die Optimierung der z-Position und des Gewinns sind notwendige Schritte, die für jede unterschiedliche Konzentration von fluoreszierenden Farbstoffen, die verwendet werden, eingerichtet werden müssen. Dadurch wird eine hohe Experimentiervariabilität verhindert. Sobald wir eingerichtet sind, liefert unser Test stabile und reproduzierbare Ergebnisse. Einer der Gründe dafür ist, dass die Farbstoffe auf der apischen Oberfläche auf den Zellen in einem kleinen Flüssigkeitsvolumen, das leicht vom Epithel wieder aufgenommen wird, zugesetzt werden, so dass ein homogen beschriftetes ASL entsteht. Eine andere Methode, um die ASL zu beflecken, die ebenso erfolgreich sein kann, verwendet trockenes Pulver oder eine “Suspendierung” in PFC. Obwohl dies zeitsparend sein könnte (da die Experimente in der Regel innerhalb von 2 Stunden durchgeführt werden), ist es unwahrscheinlich, dass die trockenen Farbstoffe vollständig in der ASL lösen und somit könnten Form Klumpen. So werden unterschiedliche Konzentrationen von pH-empfindlichen Farbstoffen über der Oberfläche der epithelialen Zellen gefunden.
Die pH-Kalibrierung in situ ist ein wichtiger Schritt, um genaue, reproduzierbare Ergebnisse zu erzielen. Wie im Ergebnisabschnitt gezeigt und erläutert, werden sich die Unterschiede in den ASL-Volumina auf die Fluoreszenzzahlen und damit auf die interpolierten pH-Werte (Abbildung 2 und Abbildung3) auswirken. Während verschiedene Gruppen bisher ASL-pH-Messungen veröffentlicht haben, wurde auch zwischen verschiedenen Studien, die von der gleichen Gruppe8,17veröffentlicht wurden, ein breites Spektrum an Werten erreicht. Wir glauben, dass die Ergebnisse reproduzierbarer werden, wenn sie vor Ort kalibrieren. Im Vergleich zu anderen pH-Kalibrierungstechniken, die die hohe K+/nigericin-Methode(oder mehrere Ionophoren) verwenden, um die Standardkurve 28,29, 30zuerzeugen,hatder hier vorgestellte Test den Vorteil, dass Solange jeder Schritt in einem Sicherheitsschrank durchgeführt wird, können die Zellen, die für ASL pH verwendet werden, gewaschen, aufbewahrt und für andere Experimente wiederverwendet werden, sofern die durchgeführten Behandlungen die Epithelzellen nicht irreversibel beeinflussen.
Die Entwicklung und Optimierung dieses Tests hat reproduzierbare Ergebnisse geliefert, und wir glauben, dass diese Methode anderen Gruppen mit ihrer ASL-pH-Messung helfen wird. Diese Technik hat aber auch einige Einschränkungen durch die Einrichtung und die Art der Zellen, die verwendet werden. Die Überwachung des pH-pH-Wertes über einen längeren Zeitraum als der hier vorgestellte (& gt;8-10 h) könnte sich als schwierig erweisen, da eine langfristig hohe Luftfeuchtigkeit die Geräte beschädigen könnte und die Tatsache, dass die meisten Plattenleser nur die Möglichkeit bieten, kinetische Messwerte über eine Bestimmte Zeit (typischerweise 24 Stunden). Der Einsatz von vollständig differenzierten primären hAECs ist von entscheidender Bedeutung, da verschiedene Differenzierungsstufen den Ausdruck von HCO3– und H+-Transportern beeinflussen. Es gibt jedoch praktisch keine Möglichkeit, das Volumen von ASL in Zellen, die unter Dünnschichtbedingungen gewachsen sind, genau zu kontrollieren. Wie in den Protokoll-und Ergebnisabschnitten angegeben, werden sich die Volumenänderungen auf das Fluoreszenzverhältnis auswirken, und es ist leider davon auszugehen, dass in Zellen, die aus einer einzigen Person stammen, am selben Tag auf verschiedenen halbdurchlässigen Stützen, ASL-Volumina, gesät werden. Wird gleich sein. Ausgenommen aus dieser Einschränkung, wird jeder Agonist oder Inhibitor, der die Flüssigkeitssekretion oder-absorption beeinflussen wird, das ASL-Volumen und vermutlich die Fluoreszenzverhältnisse beeinflussen. In unserem Test wird die Kalibrierkurve jedoch am Ende des Experiments durchgeführt, so dass wir davon ausgehen können, dass diese Volumenänderungen die Kalibrierungsverhältnisse in der gleichen Weise beeinflussen werden wie während des kinetischen Experiments. Aus diesem Grund raten wir Gruppen, die an der Entwicklung dieses Tests interessiert wären, mindestens 2-3 Replikate pro geprüfter Bedingung zu verwenden, da dies die Einrichtung einer Standardkurve für jede Bedingung ermöglichen wird.
Hier stellen wir einen einfachen, halbautomatisierten Test vor, der eine Echtzeitmessung des pH-pH-pH-pH-Wermuttes unter Dünnschichtbedingungen ermöglicht. Sie hat die Fähigkeit, dynamische pH-Reaktionen in vielen Kulturen nahezu zeitgleich zu untersuchen, die einen Vergleich zwischen und innerhalb der Spender ermöglichen. Eine Aufwertung dieser Methode auf ein 96-Brunnenplatten-Format mit polarisiertem System (HTS 96 well plates)38 würde als Medikamentenentdeckungsuntergang noch einen noch höheren Durchsatz bieten. Darüber hinaus haben wir gezeigt, wie diese Technik verwendet werden kann, um die akute Wirkung von Agonisten auf ASLpH zuuntersuchen, und wir haben bereits veröffentlicht, dass diese Methode verwendet werden kann, um die langfristige Wirkung eines apischen Protonenpumpenhemmern auf CF hAECs ASL 39 zu untersuchen. Da sich gezeigt hat, dass pH-Wert Infektionen, Entzündungen, Schleimviskosität und Ionentransport regulieren, wird die Identifizierung molekularer Ziele, die pH-Wert erhöhen können, in den Forschungsbereichen chronischer Lungenerkrankungen wertvoll sein, und diese Technik wird potenziell die Entwicklung des Arzneimittelscreening in der personalisierten Medizin. Da die Dysregulation in der Säure-Base-Homöostase bei anderen Krankheiten eine große Rolle spielt, kann dieses Protokoll mit Optimierungsschritten an verschiedene Geräte (Plattenleser) und Zelltypen, wie andere Epithelzellen, angepasst werden. Extrakelluläre Säure ist ein Merkmal vonKrebs 40,41,42 und dieser Test könnte dabei helfen, festzustellen, wie feste Tumoren einen niedrigen pH-Wert produzieren oder als Test für ein niedrig durchlässiges Arzneimittelscreening verwendet werden könnten. Wiederherstellung der pH-Homöostase. Ebenso wie bei chronischen Atemwegserkrankungen könnte sie auch eine Plattform für die Entwicklung eines personalisierten medizinischen Ansatzes bieten.
The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde unterstützt durch zwei Stipendien des CF Trust Strategic Research Centre (SRC003 und SRC013) und ein Stipendium des Medical Research Council (MRC) Confidence in Concept (MC_PC_15030). Unterstützt wurde JG durch ein Stipendium der Medical Research Foundation (MRF-091-0001-RG-GARNE). MB wurde unterstützt von einem Medizinischen Forschungsrat Clinician Scientist Fellowship (MR/M008797/1). IH wurde unterstützt von einem Wellcome Trust Clinical Training Fellowship (203520/Z/16/Z). Die Forschung wurde vom National Institute for Health Research Newcastle Biomedical Research Centre mit Sitz in Newcastle Hospitals NHS Foundation Trust und Newcastle University unterstützt. Die geäußerten Ansichten sind die der Autoren und nicht unbedingt die des NHS, des NIHR oder des Gesundheitsministeriums. Die Primärzellen von Dr. Randell wurden durch das Stipendium der Cystic Fibrosis Foundation (BOUCHE15R0) und das NIH-Stipendium (P30DK065988) unterstützt.
0.2 µm syringe filter | Starlab | E4780-1226 | |
6.5 mm Transwell with 0.4 µm Pore Polyester Membrane Insert | Corning | 3470 | |
CaCl2 | Sigma Aldrich | 21115 | |
CFTRInh172 | RnD Systems (Tocris) | 3430 | Stock Concentration: 50 mM; Final Concentration: 20 µM |
Costar 24-well Clear TC-treated Multiple Well Plates | Corning | 3524 | |
dextran-coupled pH-insensitive fluorescent dye: AlexaFluor488-dextran | ThermoFisher | D22910 | Stock Concentration: 1 mg/mL; Final Concentration: 0.67 mg/mL |
dextran-coupled pH-sensitive fluorescent dye: pHrodo-dextran | ThermoFisher | P10361 | Stock Concentration: 1 mg/mL; Final Concentration: 0.67 mg/mL |
D-glucose | Sigma Aldrich | G5767 | |
Forskolin | RnD Systems (Tocris) | 1099 | Stock Concentration: 50 mM; Final Concentration: 10 µM |
Greiner CELLSTAR 96 well plates | Cellstar | 655180 | |
Humidity cassette | TECAN | 30090495 | |
KCl | Sigma Aldrich | P9541 | |
MES | Sigma Aldrich | M3885 | |
MgCl2 | Sigma Aldrich | M1028 | |
NaCl | Sigma Aldrich | S9888 | |
NaHCO3 | Sigma Aldrich | S5761 | |
NaHepes | Sigma Aldrich | H3784 | |
Plate reader: TECAN SPARK 10M | TECAN | 30086375 | |
Tris | Sigma Aldrich | T1503 | |
Universal pH electrodes DJ 113 | VWR | 662-1385 |