Summary

狂犬病ワクチンの効力を評価するインビトロELISA試験

Published: May 11, 2020
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Summary

ここでは、狂犬病ワクチンにおける免疫原性糖タンパク質の内容を決定するための間接的ELISAサンドイッチ免疫キャプチャについて説明する。この試験は、中和モノクローナル抗体(mAb-D1)を使用して、糖タンパク質三量体を認識します。生産中のワクチン効力の一貫性に従うin vivo NIH試験の代替手段である。

Abstract

動物福祉に対する世界的な懸念の高まりは、製造業者と国立管理研究所(OMCLs)が、実験動物実験の交換、削減、改良のための3R戦略に従うことを奨励しています。狂犬病ワクチンの効力を評価するためのNIHテストの代替として、IN vitroアプローチの開発はWHOおよびヨーロッパレベルで推奨されています。狂犬病ウイルス(RABV)粒子の表面では、糖タンパク質の三量体は、ウイルス中和抗体(VNAbs)を誘導する主要な免疫原を構成する。中和モノクローナル抗体(mAb-D1)が糖タンパク質の三量体形態を認識するELISA試験は、ワクチンバッチの産生と共に天然の折り畳まれた三量体糖タンパク質の内容物を決定するために開発された。このインビトロ効力試験は、NIH試験との良好な適合性を示し、RABVワクチンメーカーおよびOMCLによる共同試験に適していることが判明した。動物の使用の回避は、近い将来に達成可能な目的です。

提示される方法は、トリメリックRABV糖タンパク質のIII(aa330〜338)の抗原部位を認識するmAb-D1を用いた間接的ELISAサンドイッチ免疫キャプチャ、すなわち免疫原性RABV抗原に基づいている。mAb-D1はワクチンバッチに存在する糖タンパク質三量体のコーティングおよび検出の両方に使用される。エピトープは、その立体構造特性のために認識されるため、潜在的に変性糖タンパク質(免疫原性が低い)をmAb-D1で捕捉して検出することはできません。試験されるワクチンをmAb-D1で感作したプレートでインキュベートする。結合した三量体RABV糖タンパク質は、再びmAb-D1を添加することによって同定され、ペルオキシダーゼで標識され、次いで基質およびクロモゲンの存在下で明らかにされる。試験ワクチンと基準ワクチンについて測定した吸光度の比較により、免疫原性糖タンパク質含有量の測定が可能になります。

Introduction

50年以上にわたり、NIH試験1は、バッチ放出前に狂犬病ワクチンの効力を評価するための金標準法として使用される。この検査は、ワクチンを用いたマウス群の腹腔内免疫を含み、その後14日後に狂犬病ウイルス(CVS)株のチャレンジウイルスウイルス(RABV)で脳内(IC)チャレンジが行われる。効力は、ICチャレンジを生き残ったマウスの割合から評価されます。WHO2および欧州薬局方3はワクチンの効力を評価するためにNIH試験を必要としますが、このテストはいくつかのハードルに苦しんでいます:結果は非常に可変的です。感染性RABVは挑戦の間に使用され、これは技術的なスキルと厳格なバイオセーフティ対策の両方を必要とします。多数の動物が使用され、挑戦の重大度は深刻な倫理的懸念を提起する5.この検査のあまり深刻なバリエーションが開発されました:腹膜内免疫の2週間後、マウスはICによって挑戦されるのではなく、リンビトロ中和試験を使用して血清中の特定のRABV中和抗体(VNAbs)の存在について血を流し、テストされます。しかし、この試験では、既に獣医ワクチン6,7に使用されており、ヒトワクチン8に対して検討されているが7多くの実験用マウスを犠牲にする必要がある

現在、インターナショナル9とヨーロッパの両方の勧告は、3R戦略と呼ばれる実験室動物実験の交換、削減、および改良を実施するためにメーカーと国立管理研究所(公式医学管理研究所 – OMCLs)を奨励しています。動物の保護と福祉に関連する欧州指令2010/63/EU(2013/01/01以降有効)は、狂犬病ワクチンの品質管理および狂犬病研究11に関与するワクチンメーカーおよび研究所の制約も強化している。その結果、代替インビトロアプローチの開発、検証、使用が優先事項となっています。これらは倫理的に健全であるだけでなく、バッチテストのコストを削減し、結果の時間を週3ではなく数時間に短縮することもできます。

RABV粒子の表面において、糖タンパク質は、トリマリック形態12、13、14、15、1614,15採用12,13する。狂犬病ワクチンにおいて、この天然三量体形態はVNAbs17を誘導する主要な免疫原を構成し、一方、単量体、可溶性または変性糖タンパク質は免疫原性18,19,19が不十分である。したがって、ワクチン産生過程に沿った糖タンパク質の三量体の保存は、最適な免疫原性ポテンシャルの保存のための良い指標である。3抗体結合検査20、21、21単一ラジアル20免疫拡散(SRD)試験22およびELISA試験222323、24、25、26、27などのいくつかの免疫化学的方法は、WHO技術報告シリーズ2および欧州モノグラフ3によって、狂犬病ワクチン中の抗原含有量を定量化することを推奨する。,24,25,26,27これらは、ワクチン産生の一貫性を監視するために製造業者によって使用され、NIH試験がまだ効力について考慮されている場合でもヒトワクチン28のバッチの一貫した製剤を評価するためにOMCLによって使用される。

しかしながら、これらの免疫化学的方法はすべて同等ではない。SRD試験では、膜固定三量体を改変し、可溶性または変性型の糖タンパク質22,29,をもたらす前処理が必要です。したがって、SRDは免疫原性と非免疫原性の糖タンパク質の判別においてあまり効率的ではなく、ワクチンロットの免疫原性の不完全な評価をもたらす。対照的に、ELISA試験は、より敏感な22であり、糖タンパク質の天然構造を保存し、そして糖タンパク質の天然に折り畳まれた三量体の含有量を決定するためにより適切である。ELISA試験では、ウサギポリクローナルまたはマウスモノクローナル抗糖タンパク質抗体を精製または硫酸アンモニウムで濃縮して使用できます。研究は、ワクチンでELISAによって評価されたNIH試験と抗原含有量との間の良好な一体性を実証し、ELISA法がインビトロ効力試験に適していると結論付けた。これは、ELISAテストが少なくとも,NIHテスト,,,44、26、27、30、31、32、3326,を補完するか、または置き換えるかもしれないと提唱しています。2730313233今日、欧州薬局方は、NIH試験3の代替として検証された血清学的または免疫化学アッセイの使用を推奨しています。ワクチンの効力のための動物の使用の完全な回避は現実的な視点となっています。

以下に提示される方法は、トリメリックRABV糖タンパク質15,34,34の抗原部位III(aa330〜338)を認識するマウスモノクローナル抗体クローン(mAb-D1)を用いた間接的ELISAサンドイッチ免疫キャプチャに基づいている。この方法は、最初にインスティトゥート・パスツール26開発されました,30その後、アサート・ナショナル・ド・セクリテ・デュ・メディカメント・エ・デ・プロデュース・ド・サンテ(ANSM)研究所、すなわちフランスOMCL4、3333によって最適化され、検証されました。4mAb-D1は、プレートを感作し、その後捕捉した抗原を検出するために使用される。これにより、糖タンパク質三量体、すなわち免疫原性RABV抗原の特異的定量が可能となる。検出に使用されるmAb-D1は、ペルオキシダーゼで標識され、これは基質およびクロモゲンの存在下で明らかにされる。試験ワクチンと基準ワクチンについて測定した吸光度の比較により、免疫原性糖タンパク質含有量の測定が可能になります。同じタイプのアッセイを、RABV糖タンパク質35の異なる抗原部位を認識する異なるmAbsに適用できることに注意する。硫酸アンモニウムポリクローナルウサギ免疫グロブリンG(IgG)またはモノクローナルマウスグロブリンを得、精製または濃縮する方法は、ペルオキシダーゼ37と共に抗体をコンジュゲートする方法とともに、これまでに36を広範囲に説明してきた

Protocol

1. セキュリティ対策 注:この方法は、ライブRABVと不活性化ワクチンの両方に適用可能です。 良い実験室の練習と安全手順を使用してください。 使い捨てコート、手袋、マスク、眼鏡など、適切な個人保護具(PPE)を着用してください。 生きたウイルスが滴定される場合は、クラスIIの生物学的安全キャビネットを使用してください。 サンプル?…

Representative Results

以下の例では、参照ワクチンLot 09は、ウイルス粒子(PVワクチン株)の精製不活性化狂犬病からなる、使用されている。この中の糖タンパク質三量体(10 μg/mL)含有量は、ウイルスタンパク質の全量の測定(BCA試験)およびSDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動による糖タンパク質の割合の評価の後に確立されました。あるいは、校正された基準ワクチン、例えば、WHO第6国?…

Discussion

mAb-D1によって認識されるエピトープは、VNAbsの誘導に対して免疫性だけでなく、神経の活性化にも関与するRABV糖タンパク質の抗原部位IIIに位置するが、病原性40、41,41および受容体認識42にも関与する。糖タンパク質に沿って別の重要な抗原部位があり、部位II43は、mAb-WI-111235など、いくつかのMAb…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

シルヴィ・モルゲオー博士とジャン=ミシェル・チャップサル博士は、ワクチンバッチに関するELISAアッセイを確立し、国際的なワークショップや共同研究を組織するために、彼らの主要な参加を認められなければなりません。原稿を批判的に読んでくださったサブリナ・カリに感謝します。ピエール・ペラン博士は、mAb-D1の分離と特性評価を担当しました。この作品は、主にパスツール研究所の資金調達によって支援されています。

Materials

Class II Biological Safety Cabinet ThermoFisher Scientific 10445753 if titrating live virus
Clear Flat-Bottom Immuno Nonsterile 96-Well Plates, 400 µL, MAXISORP ThermoFisher Scientific 439454 good for binding to the loaded antibody
Equip Labo Polypropylene Laboratory Fume Hood ThermoFisher Scientific 12576606 for the preparation of sulfuric acid
Immunology Plate Strong
Adsorption MAXISORP Flat Bottom
Well F96
Dutscher 55303 good for binding to the loaded antibody
Microplate Sealing Tape(100 sheets) ThermoFisher Scientific 15036
Microplate  single mode reader Sunrise TECAN
Microplate shaker-incubator Dutscher 441504
Microplate washer Wellwash ThermoFisher Scientific 5165000
Multichannel pipette (30-300 µL) 12 channels ThermoFisher Scientific 4661180N
Single Channel pipettes (Kit 2 : Finnpipettes F2 0.2-2 μL micro, 2-20 μL, 20-200 μL & 100-1000 μL) ThermoFisher Scientific 4700880

References

  1. Seligmann, E. B. The NIH test for potency. Laboratory Techniques in Rabies. , 279-286 (1973).
  2. Annex 2. Recommendations for inactivated rabies vaccine for human use produced in cell substrates and embryonated eggs. WHO Technical Report Series. 941, 83-132 (2007).
  3. . Rabies vaccine for human use prepared in cell cultures. European Pharmacopoeia. , (2008).
  4. Gibert, R., Alberti, M., Poirier, B., Jallet, C., Tordo, N., Morgeaux, S. A relevant in vitro ELISA test in alternative to the in vivo NIH test for human rabies vaccine batch release. Vaccine. 31, 6022-6029 (2013).
  5. Stokes, W., et al. Report on the international workshop on alternative methods for human and veterinary rabies vaccine testing: state of the science and planning the way forward. Biologicals. 40 (5), 369-381 (2012).
  6. Krämer, B., Bruckner, L., Daas, A., Milne, C. Collaborative study for validation of a serological potency assay for rabies vaccine (inactivated) for veterinary use. Pharmeuropa Bio & Scientific Notes. 2, 37-55 (2010).
  7. Krämer, B., Kamphuis, E., Hanschmann, K. M., Milne, C., Daas, A., Duchow, K. A multi-dose serological assay suitable to quantify the potency of inactivated rabies vaccines for veterinary use. Biologicals. 41, 400-406 (2013).
  8. Fitzgerald, E. A., Gallagher, M., Hunter, W. S., Seligmann, E. B. Use of the antibody assay in immunized mice for the determination of rabies vaccine potency. Developments in Biological Standardization. 40, 183-186 (1978).
  9. Milstien, J., Grachev, V., Padilla, A., Griffiths, E., Brown, F., Cussler, K., Hendriksen, C. WHO activities towards the three Rs in the development and control of biological products. Replacement, reduction and refinement of animal experiments in the development and control of biological products. , 31-39 (1996).
  10. Behr-Gross, M. E., Spieser, J. M. Contributions of the European OMCL Network and Biological Standardisation Programme to animal Welfare. ALTEX-Alternatives to Animal Experimentation. 23, 21-28 (2006).
  11. . Directive 2010/63/EU of the European Parliament and the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Official Journal of European Union. L276, 33-79 (2010).
  12. Whitt, M. A., Buonocore, L., Prehaud, C., Rose, J. K. Membrane fusion activity, oligomerization and assembly of the rabies virus glycoprotein. Virology. 185 (2), 681-688 (1991).
  13. Gaudin, Y., Ruigrok, R. W., Tuffereau, C., Knossow, M., Flamand, A. Rabies virus glycoprotein is a trimer. Virology. 187, 627-632 (1992).
  14. Roche, S., Gaudin, Y. Characterization of the equilibrium between the native and fusion-inactive conformation of rabies virus glycoprotein indicates that the fusion complex is made of several trimers. Virology. 297 (1), 128-135 (2002).
  15. Desmézières, E., Maillard, A. P., Gaudin, Y., Tordo, N., Perrin, P. Differential stability and fusion activity of Lyssavirus glycoprotein trimers. Virus Research. 91 (2), 181-187 (2003).
  16. Koraka, P., et al. A recombinant rabies vaccine expressing the trimeric form of the glycoprotein confers enhanced immunogenicity and protection in outbred mice. Vaccine. 32 (36), 4644-4650 (2014).
  17. Wiktor, T., Gyorgy, E., Schlumberger, D., Sokol, F., Koprowski, H. Antigenic properties of rabies virus components. Journal of Immunology. 110, 269-276 (1973).
  18. Gamoh, K., Senda, M., Itoh, O., Muramatsu, M., Hirayama, N., Koike, R., et al. Use of ELISA for in vitro potency test of rabies vaccines for animal use. Biologicals. 24, 95-101 (1996).
  19. Dietzschold, B., Wiktor, T., Wunner, W., Varrichio, A. Chemical and immunological analysis of the rabies soluble glycoprotein. Virology. 124, 330-337 (1983).
  20. Fitzgerald, E., Green, O., Seligmann, E. Rabies vaccine potency testing: a comparison between the antibody-binding test and the NIH test. Symposia Series in Immunobiological Standard. 21, 300-307 (1974).
  21. Barth, R., Groβ-Albenhausen, E., Jaeger, O., Milcke, L. The antibody-binding test, a useful method for quantitative determination of inactivated rabies virus antigen. Journal of Biological Standardization. 9, 81-89 (1981).
  22. Ferguson, M., Schild, G. A single-radial-immunodiffusion technique for the assay of rabies glycoprotein antigen: application for the potency tests of vaccines against rabies. Journal of General Virology. 59, 197-201 (1982).
  23. Atanasiu, P., Perrin, P., Delagneau, J. F. Use of an enzyme immunoassay with protein A for rabies antigen and antibody determination. Developments in Biological Standardization. 46, 207-215 (1980).
  24. van der Marel, P., van Wezel, A. Quantitative determination of rabies antigen by ELISA. Developments in Biological Standardization. 50, 267-275 (1981).
  25. Adamovicz, P., Aguillon, F., David, A., Le Fur, R., Mazert, M. C., Perrin, P., et al. The use of various immunochemical, biochemical and biological methods for the analysis of rabies virus production in tissue cultures. Developments in Biological Standardization. 55, 191-197 (1984).
  26. Lafon, M., Perrin, P., Versmisse, P., Sureau, P. Use of monoclonal antibody for quantification of rabies vaccine glycoprotein by enzyme immunoassay. Journal of Biological Standardization. 13, 295-301 (1985).
  27. Thraenhart, O., Ramakrishnan, K. Standardization of an enzyme immunoassay for the in vitro potency assay of inactivated tissue culture rabies vaccines: determination of the rabies virus glycoprotein with polyclonal antisera. Journal of Biological Standardization. 17, 291-309 (1989).
  28. Council of Europe. . Official Authority Batch release of Rabies vaccines Guideline. , (2019).
  29. Ferguson, M., Seagroatt, V., Schild, G. A collaborative study on the use of single radial immunodiffusion for the assay of rabies virus glycoprotein. Developments in Biological Standards. 12, 283-294 (1984).
  30. Perrin, P., Morgeaux, S., Sureau, P. In vitro rabies vaccine potency appraisal by ELISA: advantages of the immunocapture method with a neutralizing anti-glycoprotein monoclonal antibody. Biologicals. 18, 321-330 (1990).
  31. Rooijakkers, E. J., Uittenbogaard, J. P., Groen, J., Osterhaus, A. D. Rabies vaccine potency control: comparison of ELISA systems for antigenicity testing. Journal of Virological Methods. 58, 111-119 (1996).
  32. Rooijakkers, E. J., Uittenbogaard, J. P., Groen, J., van Herwijnen, J., Osterhaus, A. D., Brown, F., Cussler, K., Hendriksen, C. . Development and evaluation of alternative testing methods for the in vivo NIH potency test used for the quality control of inactivated rabies vaccines. , 137-145 (1996).
  33. Fournier-Caruana, J., et al. Inactivated rabies vaccine control and release: use of an ELISA method. Biologicals. 31, 9-16 (2003).
  34. Sissoëff, L., Mousli, M., England, P., Tuffereau, C. Stable trimerization of recombinant rabies virus glycoprotein ectodomain is required for interaction with the p75NTR receptor. Journal of General Virology. 86, 2543-2552 (2005).
  35. Morgeaux, S., et al. Replacement of in vivo human rabies vaccine potency testing by in vitro glycoprotein quantification using ELISA – Results of an international collaborative study. Vaccine. 35 (6), 966-971 (2017).
  36. Lafon, M., Meslin, F. X., Kaplan, M. N., Kopowski, H. Techniques for the production, screening and characterisation of monoclonal antibodies. Laboratory techniques in rabies, 4th Edition. , 133-144 (1996).
  37. Perrin, P., Meslin, F. X., Kaplan, M. N., Kopowski, H. Techniques for the preparation of rabies confugates. Laboratory techniques in rabies, 4th Edition. , 433-444 (1996).
  38. Barth, R., Diderrich, G., Weinmann, E. NIH test, a problematic method for testing potency of inactivated rabies vaccine. Vaccine. 6, 369-377 (1988).
  39. Jallet, C., et al. Chimeric lyssavirus glycoproteins with increased immunological potential. Journal of Virology. 73, 225-233 (1999).
  40. Dietzschold, B., et al. Characterization of an antigenic determinant of the glycoprotein that correlates with pathogenicity of rabies virus. Proceedings of the National Academy of Science U.S.A. 80, 70-74 (1983).
  41. Seif, L., Coulon, P., Rollin, P., Flamand, A. Rabies virulence: effect on pathogenicity and sequence characterization of rabies virus mutations affecting antigenic site III of the glycoprotein. Journal of Virology. 53, 926-934 (1985).
  42. Lafon, M. Rabies virus receptors. Journal of Neurovirology. 11, 82-87 (2005).
  43. Benmansour, A., Leblois, H., Coulon, P., Tuffereau, C., Gaudin, Y., Flamand, Y., Lafay, A. Antigenicity of the rabies virus glycoprotein. Journal of Virology. 65, 4198-4203 (1991).
  44. . . Rabies Vaccine Workshop Summary. , (2011).
  45. De Mattia, F., et al. The Vaccines Consistency Approach Project: an EPAA initiative. Pharmeuropa Bio & Scientific Notes. 2015, 30-56 (2015).

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Cite This Article
Jallet, C., Tordo, N. In Vitro ELISA Test to Evaluate Rabies Vaccine Potency. J. Vis. Exp. (159), e59641, doi:10.3791/59641 (2020).

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