Summary

דיגיטלי PCR מבוססי אינדקס תחרותי עבור ניתוח תפוקה גבוהה של כושר בסלמונלה

Published: May 13, 2019
doi:

Summary

זו גישה מולקולרית מבוסס לקביעת כושר חיידקי מאפשר זיהוי מדויק ומדויק של מיקרואורגניזמים באמצעות ברקודים ייחודי DNA גנומית כי הם כימות דרך ה-PCR הדיגיטלי. הפרוטוקול מתאר חישוב המדד תחרותי עבור זני סלמונלה ; עם זאת, הטכנולוגיה ניתנת להתאמה בקלות לפרוטוקולים הדורשים קוונפיקציה מוחלטת של אורגניזם גנטית מחושל.

Abstract

אינדקס תחרותי הוא שיטה נפוצה המשמשת להערכת כושר בקטריאלי ו/או התקפה אלימה. השירות של גישה זו הוא לידי ביטוי בקלות שלה לבצע את יכולתה לתקנן את הכושר של זנים רבים לאורגניזם פראי. הטכניקה מוגבלת, עם זאת, על-ידי סמנים פנוטיפי זמינים ומספר זנים שניתן להעריך בו, יצירת הצורך מספר רב של ניסויים לשכפל. במקביל עם מספר רב של ניסויים, עלויות העבודה והחומר לכימות חיידקים המבוססים על סמנים פנוטימית אינם משמעותיים. כדי להתגבר על היבטים שליליים אלה תוך שמירה על היבטים חיוביים, פיתחנו גישה מולקולרית מבוסס לכמת מיקרואורגניזמים ישירות לאחר סמנים גנטיים הנדסה על כרומוזומים חיידקיים. ייחודי, 25 ברקוד DNA צמד ברקודים נוספו בתוך לוקוס מזיק על כרומוזום של מסוג פראי ומוטציה זנים של סלמונלה. ניסויים בתחרויות חוץ-גופית בוצעו. באמצעות אינוימדוזה המורכבת מזנים במאגר בעקבות התחרות, המספרים המוחלט של כל זן היו מקוונטים באמצעות ה-PCR הדיגיטלי והמדדים התחרותיים לכל זן חושבו מערכים אלה. הנתונים שלנו עולה כי גישה זו לכמת סלמונלה הוא רגיש מאוד, מדויק, ומדויק לגילוי הן בשפע מאוד (כושר גבוה) נדיר (כושר נמוך) מיקרואורגניזמים. בנוסף, טכניקה זו ניתנת להתאמה בקלות כמעט כל אורגניזם עם כרומוזומים מסוגל לשנות, כמו גם עיצובים ניסיוניים שונים הדורשים קוונפיקציה מוחלטת של מיקרואורגניזמים.

Introduction

הערכת כושר והתקפה של אורגניזמים פתוגניים הוא היבט בסיסי של מחקר המיקרוביולוגיה. היא מאפשרת השוואות להתבצע בין זנים או בין אורגניזמים מוטציה, אשר מאפשר לחוקרים לקבוע את החשיבות של גנים מסוימים בתנאים ספציפיים. באופן מסורתי, הערכה אלימה משתמשת במודל החי של זיהום באמצעות זנים חיידקיים שונים והתבוננות בתוצאה של החיה הנגועה (למשל מינון זיהומיות50, מינון קטלני50, זמן למוות, חומרת הסימפטום, חוסר סימפטומים וכו ‘). הליך זה מספק תיאורים יקרי ערך של התקפה אלימה, אבל זה דורש זנים כדי לגרום הבדלים ניכרים בתוצאות כדי לזהות וריאציות מסוג פראי. יתר על כן, התוצאות הן חצי כמותית, כי בעוד התקדמות המחלה ואת חומרת הסימפטום יכול להיות סובייקטיבי לאורך זמן, פרשנות של התקפה אלימה בהשוואה לסוג פראי הוא האיכותי יותר (כלומר, יותר, פחות, או המוני באותה מידה). חלופה מקובלת לביצוע בעלי חיים הנגועים הוא ליצור מדדים תחרותיים (CIs), ערכים השווים ישירות כושר או התקפה אלימה של זן לעמיתו מסוג פראי בזיהום מעורב1. לטכניקה זו יש יתרונות רבים לעומת מודל בעלי חיים מסורתי של זיהום באמצעות סטנדרטיזציה של התקפה אלימה למתח מסוג פראי וקביעת ערך כולל כדי לשקף את מידת ההנחתה. טכניקה זו יכולה גם להיות מותאמת לניתוח אינטראקציות גנים בחיידקים על ידי קביעת אינדקס תחרותי בוטלה (COI)2. חישוב COI עבור קבוצה של אורגניזמים מוטציה מאפשר לחוקרים לקבוע אם שני גנים באופן עצמאי לתרום פתוגנזה או אם הם מעורבים מסלול התקפה אלימה ותלויים זה בזה. בנוסף, חישוב CI דורש ספירה של חיידקים אשר יכולים לספק תובנות יקרות לתוך הפתוגנזה של אורגניזמים. CIs ו COIs גם לאפשר לחוקרים הישבנים avirulent זנים שאינם גורמים למחלות קליניות אבל עדיין יש הבדלים בכושר. טכניקה זו מוגבלת על ידי שימוש של סמנים מסורתיים עמידות לאנטיביוטיקה כדי לזהות זנים, ובכך להגביל את מספר זני קלט רק אחד או שניים בכל פעם. בשל מגבלה זו, נדרשים מספר רב של קבוצות ומשכפל ניסויים, שבנוסף להוספת העבודה ועלויות החומר, מגביר גם הזדמנויות לשונות בתנאים ניסיוניים ותוצאות לא מדויקות. (לסקירה יסודית של היתרונות והיישומים של שימוש בזיהומים מעורבים לחקר התקפה אלימה, כושר ואינטראקציות גנים, ראה C.R. Beuzón ו D.W. הולדן 1)

ניסיונות נעשו כדי להתגבר על מגבלה זו, כגון שימוש בתאים fluorescently המסומנים באופן כימות דרך זרם cy,3,4,5. טכניקה זו מכמת את התאים באחד משני הצדדים המסומנים בנוגדנים לסמנים או 2) המיוצרים באופן שורש חלבונים פלורסצאריים. לשימוש בנוגדנים עם תוויות יש מגבלה של גילוי של 1,000 תאים/mL, ולכן דורש מספר גבוה של תאים כדי לנתח3. תאים המבטאים חלבונים פלורסנט יש פיזיולוגיה שונה והם רגישים לשינויי כושר וכתוצאה מביטוי חלבון גבוה6. שתי השיטות מוגבלות על ידי מספר סמני פלורסנט הנמצא באמצעות הזרימה cy, try. התקדמות בקוונפיקציה מולקולרית הושגה באמצעות פיתוח של טכניקה microarray שזיהה החליש ב 120 זנים מזיהום ראשוני מעורב של מעל 1,000 זנים במודל murine7. טכניקה זו מנוצל ניתוח microarray של RNA מ זנים מוטציה, אשר להוביל לשונות ניכרת בתוצאה.  אף על פי כן, היא הקימה כי בריכות גדולות של זיהומים מעורבים יכול להיות כלי שימושי, כי על ידי ניצול טכניקות זיהוי רגיש, הבדלים התקפה אלימה חיידקים ניתן לזהות. עם פיתוח של רצף הדור הבא, Tn-seq הרחיב את כלי השירות של טרנספסון מוטציות, המאפשר שיטה רבת עוצמה עבור חיידקים שהיו מוטציה באקראי8,9,10, . בסדר, 11 פרוטוקול חלופי פותחה לאחרונה כי מבטלת את הצורך בטרנספסונים ובמקום זאת משתמשת ברקודים DNA כדי לזהות בקלות רבה יותר ולעקוב אחר שינויים גנומית ואת השפעתם על כושר12. טכנולוגיה זו היא התקדמות גדולה, אבל החדרת ברקודים גנומית הוא עדיין תהליך אקראי. כדי להתגבר על אקראיות של ניסויים קודמים, יון ואח ‘ פיתחה שיטה כדי לחשב את החבר של העמים סלמונלה זנים באמצעות ברקודים DNA ייחודי מוכנס במיקומים מדויקים על הכרומוזומים של חיידקים13. זנים ברקודים ייחודיים זוהו באמצעות שיטה מבוססת qPCR עם SYBR ירוק ומיוחד התחל כל ברקוד ייחודי. הטכניקה הוגבלה על-ידי אילוצים שהוטלו על-ידי qPCR, כולל הבדלים ביעילות תחל ורגישות נמוכה, המעידים על הצורך בקינון-PCR לפני qPCR. אף על פי כן, גישה זו הוכיחה כי שינויים ממוקדות גנומית יכול להיות מנוצלת לאיתור ופוטנציאל לכמת בריכות של זנים חיידקיים מרובים.

בפרוטוקול הבא, אנו מתארים מתודולוגיה הרומן לבצע ניסויים בתחרות חיידקים עם בריכות גדולות של מעורבות מעורב ואחריו כימות מדויקת באמצעות טכניקה דיגיטלית רגישה מאוד. הפרוטוקול כרוך גנטית-תיוג זנים חיידקיים עם ברקוד DNA ייחודי מוכנס על אזור לא מזיק של הכרומוזום. שינוי זה מאפשר לזנים להיות במהירות ובאופן מדויק בקוונט באמצעות טכנולוגיה מולקולרית מודרנית במקום מדלל סדרתי מסורתי, ציפוי משוכפל, ו ספירה המושבה היוצרים יחידות המסתמכים על סמנים פנוטימית (כלומר עמידות לאנטיביוטיקה ). השינויים מאפשרים הערכה בו של זנים רבים במאגר יחיד, הפחתת באופן משמעותי את האפשרות של השתנות ניסיוני כי כל הזנים חשופים לאותם תנאים בדיוק. יתר על כן, בעוד טכניקה זו פותחה ב סלמונלה enterica Serovmuריום, זה מאוד להתאמה לכל אורגניזם מחושל גנטית כמעט כל עיצוב ניסיוני שבו ספירות חיידקים מדויקים נדרשים, מתן חדש כדי להגדיל את הדיוק והתפוקה במעבדות המיקרוביולוגיה ללא האילוצים המוטלים על-ידי שיטות קודמות.

Protocol

1. לשלב ברקודים DNA ייחודי על פלאמיד המכיל את הרכיבים הנחוצים עבור Allelic Exchange הערה: חדש פלמיד, בשם pSKAP, עם מספר עותק גבוה ויעילות שינוי מוגבר לעומת הקיים pKD13 allelic exchange באמצע נוצר. הדבר מתואר בשלבים 1.1-1.12 (איור 1). הפלמידים הסופיים המכילים ברקודים ורכיבי DNA ייח…

Representative Results

השימוש במתודולוגיה זו דורש שתגובות הבקרה המתאימות מבוצעות כדי לאמת את הרגישות והספציפיות של כל בדיקה המשמשת לזיהוי הדנ א של היעד. בניסוי מייצג זה, הצלחנו לוודא שמונה ברקודים ייחודיים DNA עם שמונת הבדיקות המתאימות לזיהוי. כל שמונת הבדיקות היו שיעור נמוך של תוצאות חיוביות ש…

Discussion

היכולת לכמת מיקרואורגניזמים במדויק היא בעלת חשיבות עליונה למחקר מיקרוביולוגיה, והיכולת לספור זנים ייחודיים מאוכלוסיה מעורבת ראשונית הוכיחה להיות כלי רב-ערך להערכת תכונות כושר והתקפה אלימה ב חיידקים. עם זאת, הטכניקות לביצוע זה לא התקדמו בקצב עם פיתוחים מודרניים בביולוגיה מולקולרית. הטכנ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחקר שדווח בפרסום זה נתמך על ידי קרן הפקולטה למשפטים של הנשיא ג’ורג ‘ האדדיקס והמכון הלאומי למדעי הרפואה הכללית של המכונים הלאומיים לבריאות (NIH) תחת מספר הפרסים GM103427. התוכן הינו באחריות המחברים בלבד ואינו מייצג בהכרח את ההשקפות הרשמיות של המכון הלאומי לבריאות.

Materials

1.5 mL microcentrifuge tubes Eppendorf 22600028 Procure from any manufacturer
16 mL culture tubes MidSci 8599 Procure from any manufacturer
5-200 μL pipette tips RAININ 30389241 Procure alternative tip brands with caution based on manufacturing quality
5-50 μL multichannel pipette RAININ 17013804 Use alternative multichannel pipettes with caution
Agarose ThermoFisher Scientific BP160-500 Procure from any manufacturer
BLAST Analysis NCBI N/A https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi
C1000 Touch Thermocycler with 96-Deep Well Reaction Module Bio Rad 1851197 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
Chemically competent DH5α Invitrogen 18258012 Procure from any manufacturer or prepare yourself
Chloramphenicol ThermoFisher Scientific BP904-100 Procure from any manufacturer
Cytation5 Microplate reader BioTek CYT5MF Procure from any manufacturer, use any system capable of accurately quantifying DNA
Data Analysis Software (QuantaSoft and QuantaSoft Data Analysis Pro) Bio Rad N/A Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
ddPCR 96-Well Plates Bio Rad 12001925 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
ddPCR Droplet Reader Oil Bio Rad 1863004 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
ddPCR Supermix for Probes (No dUTP) Bio Rad 1863024 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
DG8 Cartridges for QX200/QX100 Droplet Generator Bio Rad 1864008 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
DG8 Gaskets for QX200/QX100 Droplet Generator Bio Rad 1863009 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
Droplet Generation Oil for Probes Bio Rad 1863005 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
Kanamycin ThermoFisher Scientific BP906-5 Procure from any manufacturer
Luria-Bertani agar ThermoFisher Scientific BP1425-2 Procure from any manufacturer or make it yourself from agar, tryptone, yeast digest, and NaCl
Luria-Bertani broth ThermoFisher Scientific BP1426-2 Procure from any manufacturer or make it yourself from tryptone, yeast digest, and NaCl
PCR Plate Heat Seal, foil, pierceable Bio Rad 1814040 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
PCR Tubes Eppendorf 951010022 Procure from any manufacturer
Petri dishes ThermoFisher Scientific FB0875712 Procure from any manufacturer
pPCR Script Cam SK+ Stratagene/Agilent 211192 No longer available commercially
Primer/Probe Design IDT N/A https://www.idtdna.com/Primerquest/Home/Index
pSKAP and pSKAP_Barcodes Addgene Plasmid numbers 122702-122726 www.addgene.org
PX1 PCR Plate Sealer Bio Rad 1814000 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
QX200 Droplet Generator Bio Rad 1864002 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
QX200 Droplet Reader Bio Rad 1864003 Must procure ddPCR supplies from Bio Rad. Alternatives are not yet available.
S. Typhimurium strain ATCC 14028s ATCC ATCC 14028s www.atcc.org
Take3 Micro-Volume Plate BioTek TAKE3 Procure from any manufacturer, use any system capable of accurately quantifying DNA
Thermo Scientific FastDigest BamHI ThermoFisher Scientific FERFD0054 Procure from any manufacturer
Thermo Scientific FastDigest DpnI ThermoFisher Scientific FERFD1704 Procure from any manufacturer
Thermo Scientific FastDigest HindIII ThermoFisher Scientific FERFD0504 Procure from any manufacturer
Thermo Scientific GeneJet Gel Extraction and DNA Cleanup Micro Kit ThermoFisher Scientific FERK0832 Procure from any manufacturer
Thermo Scientific GeneJet Miniprep Kit ThermoFisher Scientific FERK0503 Procure from any manufacturer
Thermo Scientific Phusion High-Fidelity DNA Polymerase ThermoFisher Scientific F534L Procure from any manufacturer
Thermo Scientific T4 DNA Ligase ThermoFisher Scientific FEREL0011 Procure from any manufacturer
Thermocycler Bio Rad 1861096 Procure from any manufacturer
UVP Visi-Blue Transilluminator ThermoFisher Scientific UV95043301 Or other transiluminator that allows visualization of DNA
Water, Molecular Biology Grade ThermoFisher Scientific BP28191 Procure from any manufacturer

References

  1. Beuzón, C. R., Holden, D. W. Use of mixed infections with Salmonella strains to study virulence genes and their interactions in vivo. Microbes and Infection. 3 (14-15), 1345-1352 (2001).
  2. Bäumler, A. J., Tsolis, R. M., Valentine, P. J., Ficht, T. A., Heffron, F. Synergistic effect of mutations in invA and lpfC on the ability of Salmonella typhimurium to cause murine typhoid. Infection and Immunity. 65 (6), 2254-2259 (1997).
  3. Vital, M., Hammes, F., Egli, T. Competition of Escherichia coli O157 with a drinking water bacterial community at low nutrient concentrations. Water Research. 46 (19), 6279-6290 (2012).
  4. Schellenberg, J., Smoragiewicz, W., Karska-Wysocki, B. A rapid method combining immunofluorescence and flow cytometry for improved understanding of competitive interactions between lactic acid bacteria (LAB) and methicillin-resistant S. aureus (MRSA) in mixed culture. Journal of Microbiological Methods. 65 (1), 1-9 (2006).
  5. Becker, D., et al. Robust Salmonella metabolism limits possibilities for new antimicrobials. Nature. 440 (7082), 303 (2006).
  6. Rang, C., Galen, J. E., Kaper, J. B., Chao, L. Fitness cost of the green fluorescent protein in gastrointestinal bacteria. Canadian Journal of Microbiology. 49 (9), 531-537 (2003).
  7. Santiviago, C. A., et al. Analysis of pools of targeted Salmonella deletion mutants identifies novel genes affecting fitness during competitive infection in mice. PLoS Pathogens. 5 (7), e1000477 (2009).
  8. Ahmer, B. M., Gunn, J. S. Interaction of Salmonella spp. with the intestinal microbiota. Frontiers in Microbiology. 2, 101 (2011).
  9. Gallagher, L. A., Shendure, J., Manoil, C. Genome-scale identification of resistance functions in Pseudomonas aeruginosa using Tn-seq. MBio. 2 (1), (2011).
  10. Van Opijnen, T., Bodi, K. L., Camilli, A. Tn-seq: high-throughput parallel sequencing for fitness and genetic interaction studies in microorganisms. Nature Methods. 6 (10), 767 (2009).
  11. van Opijnen, T., Lazinski, D. W., Camilli, A. Genome‐wide fitness and genetic interactions determined by Tn‐seq, a high‐throughput massively parallel sequencing method for microorganisms. Current Protocols in Microbiology. 36 (1), (2017).
  12. Mutalik, V. K., et al. Dual-barcoded shotgun expression library sequencing for high-throughput characterization of functional traits in bacteria. Nature Communications. 10 (1), 308 (2019).
  13. Yoon, H., Gros, P., Heffron, F. Quantitative PCR-based competitive index for high-throughput screening of Salmonella virulence factors. Infection and Immunity. 79 (1), 360-368 (2011).
  14. Datsenko, K. A., Wanner, B. L. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proceedings of the National Academy of Sciences. 97 (12), 6640-6645 (2000).
  15. Henard, C. A., Bourret, T. J., Song, M., Vázquez-Torres, A. Control of redox balance by the stringent response regulatory protein promotes antioxidant defenses of Salmonella. Journal of Biological Chemistry. 285 (47), 36785-36793 (2010).
  16. Poteete, A. R., Fenton, A. C. λ red-dependent growth and recombination of phage P22. Virology. 134 (1), 161-167 (1984).
  17. McCollister, B. D., Bourret, T. J., Gill, R., Jones-Carson, J., Vázquez-Torres, A. Repression of SPI2 transcription by nitric oxide-producing, IFNγ-activated macrophages promotes maturation of Salmonella phagosomes. Journal of Experimental Medicine. 202 (5), 625-635 (2005).
  18. Shaw, J. A., et al. Salmonella enterica serovar Typhimurium has three transketolase enzymes contributing to the pentose phosphate pathway. Journal of Biological Chemistry. 293 (29), 11271-11282 (2018).
  19. Freter, R., O’Brien, P., Macsai, M. S. Role of chemotaxis in the association of motile bacteria with intestinal mucosa: in vivo studies. Infection and immunity. 34 (1), 234-240 (1981).
  20. Taylor, R. K., Miller, V. L., Furlong, D. B., Mekalanos, J. J. Use of phoA gene fusions to identify a pilus colonization factor coordinately regulated with cholera toxin. Proceedings of the National Academy of Sciences. 84 (9), 2833-2837 (1987).
  21. Nogva, H. K., Dromtorp, S., Nissen, H., Rudi, K. Ethidium monoazide for DNA-based differentiation of viable and dead bacteria by 5′-nuclease PCR. Biotechniques. 34 (4), 804-813 (2003).
  22. Nocker, A., Camper, A. K. Novel approaches toward preferential detection of viable cells using nucleic acid amplification techniques. FEMS Microbiology Letters. 291 (2), 137-142 (2009).
  23. Nocker, A., Cheung, C. -. Y., Camper, A. K. Comparison of propidium monoazide with ethidium monoazide for differentiation of live vs. dead bacteria by selective removal of DNA from dead cells. Journal of Microbiological Methods. 67 (2), 310-320 (2006).
  24. Nocker, A., Mazza, A., Masson, L., Camper, A. K., Brousseau, R. Selective detection of live bacteria combining propidium monoazide sample treatment with microarray technology. Journal of Microbiological Methods. 76 (3), 253-261 (2009).
  25. Nocker, A., Sossa, K. E., Camper, A. K. Molecular monitoring of disinfection efficacy using propidium monoazide in combination with quantitative PCR. Journal of Microbiological Methods. 70 (2), 252-260 (2007).
  26. Nocker, A., Sossa-Fernandez, P., Burr, M. D., Camper, A. K. Use of propidium monoazide for live/dead distinction in microbial ecology. Applied and Environmental Microbiology. 73 (16), 5111-5117 (2007).
  27. Price-Carter, M., Tingey, J., Bobik, T. A., Roth, J. R. The Alternative Electron Acceptor Tetrathionate Supports B12-Dependent Anaerobic Growth ofSalmonella enterica Serovar Typhimurium on Ethanolamine or 1, 2-Propanediol. Journal of Bacteriology. 183 (8), 2463-2475 (2001).
  28. Taylor, R. G., Walker, D. C., McInnes, R. E. coli host strains significantly affect the quality of small scale plasmid DNA preparations used for sequencing. Nucleic Acids Research. 21 (7), 1677 (1993).
  29. Cherepanov, P. P., Wackernagel, W. Gene disruption in Escherichia coli: Tc R and Km R cassettes with the option of Flp-catalyzed excision of the antibiotic-resistance determinant. Gene. 158 (1), 9-14 (1995).

Play Video

Cite This Article
Shaw, J. A., Bourret, T. J. Digital PCR-based Competitive Index for High-throughput Analysis of Fitness in Salmonella. J. Vis. Exp. (147), e59630, doi:10.3791/59630 (2019).

View Video