El microambiente tumoral es una parte esencial del crecimiento del cáncer y la invasión. Para imitar la progresión del carcinoma, se necesita una matriz humana biológicamente relevante. Este Protocolo introduce una mejora para el ensayo de invasión de esferoide tridimensional in vitro aplicando una matriz basada en Leiomioma humana. El protocolo también introduce un análisis de invasión celular basado en computadora.
Los ensayos basados en cultivos celulares bidimensionales se utilizan comúnmente en la investigación del cáncer in vitro. Sin embargo, carecen de varios elementos básicos que forman el microambiente tumoral. Para obtener resultados in vitro más fiables, se han introducido varios ensayos de cultivo celular tridimensionales (3D). Estos ensayos permiten que las células cancerosas interactúen con la matriz extracelular. Esta interacción afecta el comportamiento de las células, como la proliferación y la invasión, así como la morfología celular. Además, esta interacción podría inducir o suprimir la expresión de varias moléculas Pro y anti-tumorigénicas. El ensayo de invasión esferoide fue desarrollado para proporcionar un método 3D in vitro adecuado para estudiar la invasión de células cancerosas. Actualmente, las matrices derivadas de animales, como la matriz derivada de sarcoma de ratón (MSDM) y el colágeno tipo I de cola de rata, se utilizan principalmente en los ensayos de invasión esferoide. Teniendo en cuenta las diferencias entre el microambiente tumoral humano y las matrices derivadas de animales, se desarrolló una matriz humana derivada de mioma (HMDM) a partir del tejido del Leiomioma uterino benigno. Se ha demostrado que la HMDM induce la migración y la invasión de células de carcinoma mejor que MSDM. Este protocolo proporcionó un ensayo de invasión esferoide basado en un tumor humano en 3D simple, reproducible y confiable usando la matriz HMDM/fibrina. También incluye instrucciones detalladas sobre imágenes y análisis. Las esferoides crecen en una placa de fijación ultra baja en forma de U dentro de la matriz HMDM/fibrina e invaden a través de ella. La invasión es a diario imaged, medido, y analizado utilizando ilastik y Fiji ImageJ software. La plataforma de ensayo se demostró utilizando líneas celulares de carcinoma de células escamosas primarias y metastásicas de la laringe humana. Sin embargo, el protocolo es adecuado también para otras líneas celulares de cáncer sólido.
Los estudios de cultivos celulares bidimensionales convencionales (2D) han contribuido considerablemente a la investigación del cáncer. Actualmente, los investigadores están cambiando más hacia los ensayos de cultivo celular tridimensionales (3D) para imitar mejor las condiciones in vivo1. La cultura celular del cáncer 3D refleja con mayor precisión el complejo microambiente tumoral en términos de interacciones de células celulares y matrices celulares, perfiles de expresión génica, sensibilidad a los fármacos y actividad de vías de señalización2,3.
Varios modelos de cultivo celular en 3D se utilizan en la investigación del cáncer como el explant de tejido tumoral, el tumor en un chip y los esferoides multicelulares del tumor3,4. Los esferoides multicelulares son ahora ampliamente utilizados, ya que imitan varias características de las condiciones in vivo en los tumores humanos1,5. Cuando el diámetro esferoide es superior a 500 μm, incluso tiene regiones hipoxicas y un centro necrótico, representando así la situación tumoral in vivo2.
Se han desarrollado matrices de muchos sintéticos (p. ej., polidimetilsiloxano) y derivados de animales (p. ej., matriz derivada de colágeno de rata de cola tipo I y de sarcoma de ratón, Matrigel, denominados msdm) para ensayos de cultivos celulares 3D de3,6, 7,8. Hasta el momento, ninguna de las matrices comercialmente disponibles se originó a partir de tejido tumoral humano. Por lo tanto, carecen de las características del microambiente tumoral humano, que tiene efectos significativos en los procesos de invasión de células cancerosas8.
Myogel (matriz derivada de mioma humana, conocida como hmdm) se extrae del útero humano Leiomioma tejido tumoral9. Se ha demostrado que el contenido de proteína de HMDM difiere significativamente de la de MSDM. De hecho, el 66% de las proteínas HMDM son diferentes de las proteínas MSDM. Por otro lado, algunas proteínas, como la laminin, el colágeno tipo IV, los proteoglicanos de sulfato de heparán, el Nidogen y el factor de crecimiento epidérmico, están presentes en ambas matrices10. Además, el ratón difiere del humano en el contenido de la enzima, con los seres humanos que tienen 78 menos proteasas que los ratones11.
La fibrina se ha utilizado ampliamente solo o en combinación con otros materiales como material de andamio12. En los ensayos de cultivo celular en 3D, el fibrinógeno y la trombina humana disponibles comercialmente se combinan para formar un hidrogel de fibrina12.
Este protocolo describe una mejora del ensayo de invasión de esferoide tumoral 3D previamente introducido7. Este nuevo protocolo aplica la matriz humana derivada de tumor en lugar de la matriz tumoral derivada del ratón. También involucra técnicas de diagnóstico por imágenes y análisis utilizando el software ilastik y Fiji ImageJ. Este protocolo podría ser utilizado para el ensayo esferoide de varias líneas celulares de cáncer sólido diferentes. Ofrece una herramienta biológicamente relevante para desarrollar nuevas terapias contra el cáncer y para estudiar los efectos de moléculas específicas en la invasión de células cancerosas.
El método presentado proporciona un ensayo basado en un tumor humano en 3D para evaluar la invasividad de las células cancerosas dentro del microentorno tumoral humano imitando la matriz. La invasión de células cancerosas se puede medir fácilmente por imágenes diarias con un microscopio estándar y mediante el uso de software de análisis de imágenes. El método demuestra la invasión celular en lugar de la mera proliferación.
A diferencia de MSDM, la matriz HMDM/fibrn no requiere ningún control de temperatura. Este método es fácil de llevar a cabo, en particular, sin la necesidad de transferir los esferoides de una placa a otra. Tiene sólo un paso técnicamente sensible, la adición de fibrinógeno a la matriz. Dado que el fibrinógeno comienza a gel después de unos minutos, la adición de fibrinógeno requiere un pipeteo robusto y un tratamiento de solo unos pocos pozos a la vez. También existe el riesgo de perturbar el esferoide y de desplazarlo desde su posición central en el pozo en forma de U si el pipeteo se realiza en una forma de alta presión. La luxación del esferoide puede complicar la imagen y eventualmente el análisis.
El ensayo puede modificarse alterando la concentración de HMDM o fibrinógeno. Las células también pueden ser fijas y teñidas para estudios moleculares posteriores. A pesar de que este método se puede modificar a una forma totalmente automatizada, también se puede llevar a cabo con un microscopio normal y dos software de código abierto, sin necesidad de costosos equipos.
Comparado con los tradicionales ensayos 3D basados en MSDM, este ensayo podría mostrar mejor las propiedades de invasión celular. Los esferoides cultivados en una matriz rica en laminados que contienen membrana en el sótano, como MSDM, podrían tener más proliferación de células cancerosas que la invasión real, lo que lo hace inadecuado para los ensayos de invasión en varias líneas celulares de cáncer debido a su baja capacidad invasora. Otra matriz de uso frecuente, colágeno tipo I, tiende a encogerse desde los bordes durante el cultivo en 3D, que afecta la localización esferoide y la imagen de los pozos. Adicionalmente, las diferencias entre las propiedades invasivas intrínsecas de las líneas celulares de carcinoma de lengua agresiva (HSC-3) y menos (SCC-25) se han demostrado utilizando modelos de microentorno tumoral humano imitando (los discos de mioma y su forma soluble Matrix)10,13.
El ensayo también es más ético que el uso de MSDM ya que el HMDM se extrae del material sobrante del tumor de Leiomioma humano. Actualmente, hmdm es el único producto de ECM derivado del tumor humano disponible que parece ser adecuado para muchos ensayos in vitro relacionados con el cáncer8,10. En el futuro, las matrices derivadas de tejido animal podrían reemplazarse por matrices basadas en tumores humanos para reducir la necesidad de sacrificar animales para la producción de matrices.
Reemplazar los ensayos de cultivos celulares 2D con métodos 3D proporciona información más precisa sobre el comportamiento de las células cancerosas. Actualmente, hay varios modelos 3D y matrices comerciales, pero, desafortunadamente, ninguno es adecuado para todas las líneas celulares de cáncer. Los investigadores deben seleccionar la matriz más adecuada para su ensayo en particular. La coincidencia óptima de ensayo y matriz puede ser desafiante, pero podría aumentar significativamente la confiabilidad de los resultados.
The authors have nothing to disclose.
Los autores agradecen a los financiadores de este estudio: la Fundación Sigrid Jusélius, la sociedad del cáncer de Finlandia y los fondos de investigación del hospital central de la Universidad de Helsinki. Los autores reconocen la unidad de imagen Biomedicum en la Universidad de Helsinki para obtener ayuda técnica.
Amphotericin B solution | Merck | A2942 | |
Aprotinin from bovine lung | Merck | A6279 | Measure the protein concentration before use. |
Ascorbic acid | Applichem | A1052 | |
BioLite Cell Culture Treated Flasks | Thermo Scientific | 130190 | |
DMEM/F-12 | Gibco by Life Technologies | 31330-038 | |
DS-Fi2 Digital Camera | Nikon Instruments | ||
DS-U3 Digital Camera Controller | Nikon Instruments | ||
Eclipse TS100 Inverted Microscope | Nikon Instruments | ||
Fetal bovine serum (FBS) | Gibco by Life Technologies | 10270106 | Heat inactivate for 30 min at 56°C in waterbath before use. |
Fibrinogen, Plasminogen-Depleted, Human Plasma | Merck | 341578 | Solubility: 25 mg/ml in H₂O. Warm the H₂O and the fibrinogen to 37°C prior to dissolution. Do not disturb until the fibrinogen is completely solubilized. Stock solutions stored at -70°C should be thawed in a water bath maintained at 37°C. |
Fiji ImageJ 1.51 image processing program | Freeware, NIH | ||
Hydrocortisone | Merck | H0888 | |
Ilastik software for image classification and segmentation | Freeware | ||
IncuCyte Zoom Live-Cell Analysis System | Essen BioScience | ||
Myogel | Lab made | ||
Penicillin-Streptomycin | Gibco by Life Technologies | 15140-122 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | Lab made | ||
Scepter 2.0 Cell Counter | Merck | PHCC20040 | |
Scepter Cell Counter Sensors, 60 µm | Merck | PHCC60050 | |
Thrombin from human plasma | Merck | T6884-100UN | |
Trypsin-EDTA (0.5%) 10X, no phenol red | Gibco by Life Technologies | 15400054 | |
Ultra-Low Attachment 96-Well Plate | Corning | 7007 | |
UT-SCC-42A and UT-SCC-42-B cell lines | The cell lines were established at the Department of Otorhinolaryngology-Head and Neck Surgery, Turku University Hospital (Turku, Finland). |