Dimostriamo la coltura unicellulare di batteri all’interno di vescicoli giganti (GV). I GV contenenti cellule batteriche sono stati preparati con il metodo di trasferimento delle goccioline e sono stati immobilizzati su una membrana sostenuta su un substrato di vetro per l’osservazione diretta della crescita batterica. Questo approccio può anche essere adattabile ad altre cellule.
Abbiamo sviluppato un metodo per coltivare cellule batteriche a livello di singola cellula all’interno di vescicole giganti (GV). La coltura delle cellule batteriche è importante per comprendere la funzione delle cellule batteriche nell’ambiente naturale. A causa dei progressi tecnologici, varie funzioni delle cellule batteriche possono essere rivelate a livello di singola cellula all’interno di uno spazio confinato. I GV sono compartimenti sferici di micro-dimensioni composti da molecole lipidiche anfifili e possono contenere vari materiali, comprese le cellule. In questo studio, una singola cellula batterica è stata incapsulata in 10-30 GV con il metodo di trasferimento delle goccioline e i Env contenenti cellule batteriche sono stati immobilizzati su una membrana supportata su un substrato di vetro. Il nostro metodo è utile per osservare la crescita in tempo reale di singoli batteri all’interno dei GV. Abbiamo coltivato cellule di Escherichia coli (E. coli) come modello all’interno di GV, ma questo metodo può essere adattato ad altri tipi di cellule. Il nostro metodo può essere utilizzato nei campi scientifici e industriali della microbiologia, della biologia, della biotecnologia e della biologia sintetica.
La coltura delle cellule batteriche a livello di singola cellula ha ricevuto una crescente attenzione. Coltivare cellule batteriche a livello di singola cellula all’interno di uno spazio ristretto può chiarire le funzioni batteriche come la variabilità fenotipica1,2,3,4, il comportamento cellulare5, 6 È possibile: , 7 (in questo stato , 8 (IN vio , 9, e resistenza agli antibiotici10,11. A causa dei recenti progressi nelle tecniche di coltura, la coltura di singoli batteri può essere raggiunta all’interno di uno spazio confinato, come in un pozzo4,7,8, goccia di gel12,13 e gocciolatore acqua in olio (W/O)5,11. Per promuovere la comprensione o l’utilizzo di singole cellule batteriche, sono necessari ulteriori sviluppi tecnici delle tecniche di coltivazione.
Le vescicole che imitano la membrana cellulare biologica sono compartimenti sferici costituiti da molecole anfifile e possono contenere vari materiali. Le vesciche sono classificate in base alle dimensioni e includono piccole vesciche (SV, diametro < 100 nm), grandi vescicle (LV, 1 m). SV o LV sono comunemente utilizzati come portatori di droga a causa della loro affinità con la membrana cellulare biologica14. I GV sono stati utilizzati anche come sistema di reattori per la costruzione di protocelle15 o cellule artificiali16. L’incapsulamento di cellule biologiche in GV è stato segnalato17,18, e quindi i GV mostrano il potenziale come sistema di coltura cellulare quando combinati con il sistema del reattore.
Qui, insieme a un video di procedure sperimentali, descriviamo come i GV possono essere utilizzati come nuovi vasi di coltura cellulare19. I GV contenenti batteri sono stati realizzati con il metodo di trasferimento delle goccioline20 e sono stati poi immobilizzati su una membrana supportata su un vetro di copertura. Abbiamo usato questo sistema per osservare la crescita batterica a livello di singola cellula all’interno dei GV in tempo reale.
Qui, descriviamo un metodo per coltivare le cellule batteriche a livello di singola cellula all’interno dei GV. Questo semplice metodo prevede la formazione di GV contenenti cellule batteriche a livello di singola cellula utilizzando il metodo di trasferimento delle gocciole. Rispetto ad altri approcci per ottenere GV contenenti cellule batteriche, questo metodo presenta due vantaggi: (i) è facile da sviluppare e (ii) è necessario un piccolo volume (2 -L) della soluzione campione per preparare i GV. Il metodo di trasfe…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto da un’iniziativa leader per eccellenti giovani ricercatori (LEADER, n. 16812285) del Ministero dell’Istruzione, della Cultura, dello Sport, della Scienza e della Tecnologia (MEXT) del Giappone, un Grant-in-Aid per la ricerca sui giovani scienziati (n. 18K18157, 16K21034) dalla Japan Society for the Promotion of Science (JSPS) a M.M., e Grant-in-Aid da MEXT a K.K. (n. 17H06417, 17H06413).
Bactotryptone | BD Biosciences | 211705 | |
Chloroform | Wako Pure Chemicals | 032-21921 | |
Cover glass (18 × 18 mm) | Matsunami Glass Ind. | C018181 | thickness 0.13–0.17 mm |
Cover glass (30 × 40 mm) | Matsunami Glass Ind. | custom-order | thickness 0.25–0.35 mm |
Desktop centrifuge | Hi-Tech Co. | ATT101 | swing rotor type |
Double-faced seal (10 × 10 × 1 mm) | Nitoms | T4613 | |
Glass vial | AS ONE | 6-306-01 | Durham fermentation tube |
Glucose | Wako Pure Chemicals | 049-31165 | |
Inverted microscope | Olympus | IX-73 | |
Methanol | Wako Pure Chemicals | 133-16771 | |
Microscopic heating stage system | TOKAI HIT | TP-110R-100 | |
Mineral oil | Nacalai Tesque | 23334-85 | |
Mini-extruder | Avanti Polar Lipids | 610000 | |
Neutravidin | Thermo Fisher Scientific | 31000 | |
Objective lens | Olympus | LUCPLFLN 40×/0.6 NA | |
Polycarbonate membranes | Avanti Polar Lipids | 610005 | pore size 100 nm |
sCMOS camera | Andor | Zyla 4.2 plus | |
Sodium chloride | Wako Pure Chemicals | 191-01665 | |
Sucrose | Wako Pure Chemicals | 196-00015 | |
Ultrasonic bath | AS ONE | ASU-3D | |
Yeast extract | BD Biosciences | 212750 | |
0.6 mL lidded plastic tube | Watson | 130-806C | |
1.5 mL lidded plastic tube | Sumitomo Bakelite Co. | MS4265-M | |
1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphocoline | Avanti Polar Lipids | 850457P | POPC |
1,2-distearoyl-snglycero-3-phosphoethanolamine-N-[biotinyl(polyethyleneglycol)-2000] | Avanti Polar Lipids | 880129P | Biotin-PEG-DSPE |