Summary

שיטות לבדיקת הפרעה אנדוקרינית בדרוזופילה מלאנוסטר

Published: July 03, 2019
doi:

Summary

המערכת האנדוקרינית (EDCs) מייצגת בעיה רצינית עבור אורגניזמים ובסביבות טבעיות. דרוזופילה מלאנוסטר מייצגת מודל אידיאלי לחקר אפקטי edc בvivo. כאן אנו מציגים שיטות לחקירת שיבוש המערכת האנדוקרינית בדרוזוהילה, לטיפול באפקטי EDC על פוריות, פוריות, תזמון התפתחותי ותוחלת חיים של הזבוב.

Abstract

בשנים האחרונות הוכחה גוברת כי כל האורגניזמים והסביבה חשופים לכימיקלים כמו הורמונים, המכונה המערכת האנדוקרינית כימיקלים (EDCs). כימיקלים אלה עשויים לשנות את האיזון הרגיל של מערכות אנדוקריניות להוביל לתופעות לוואי, כמו גם מספר גדל והולך של הפרעות הורמונליות באוכלוסייה האנושית או צמיחה מופרעת ורבייה מופחתת במינים חיות הבר. עבור חלק מ-EDCs, קיימים השפעות בריאותיות מתועדות והגבלות על השימוש בהם. עם זאת, עבור רובם, עדיין אין ראיות מדעיות במובן הזה. כדי לאמת את ההשפעות האנדוקריניות הפוטנציאליות של כימיקל באורגניזם המלא, אנו צריכים לבדוק אותו במערכות מודל מתאימות, כמו גם בזבוב הפירות, דרוזופילה מלאנוגסטר. כאן אנו מדווחים מפורט בפרוטוקולים vivo כדי לחקור את ההפרעה האנדוקרינית בדרוזוהילה, מטפל בהשפעות EDC על פוריות/פוריות, התפתחות העיתוי, ותוחלת החיים של הזבוב. בשנים האחרונות, השתמשנו בתכונות אלה החיים הדרוזובית כדי לחקור את ההשפעות של חשיפה 17-α-ethinyלסטרנול (EE2), ביאגנול A (BPA), ו ביאגנול AF (BPA F). בסך הכל, אלה האומרים מכוסים כל החיים Drosophila ילה והפכה את האפשרות להעריך את ההפרעה האנדוקרינית בכל תהליכי הורמון בתיווך. פוריות/פריון והתפתחות עיתוי התפתחותי היו שימושיים למדוד את השפעת ה-EDC על ביצועי הרבייה לטוס ועל שלבים התפתחותיים, בהתאמה. בסופו של דבר, שיטת תוחלת החיים מעורבת בחשיפות EDC כרוניות למבוגרים ומדדו את ההישרדות שלהם. עם זאת, תכונות חיים אלה יכולים גם להיות מושפעים על ידי כמה גורמים ניסיוניים כי צריך להיות נשלט בקפידה. לכן, בעבודה זו, אנו מציעים סדרה של הליכים שאנו ממוטבים עבור התוצאה הנכונה של אלה מספר. שיטות אלה מאפשרות למדענים להקים שיבוש אנדוקריניות עבור כל EDC או לתערובת של מחשבי ה-Edc שונים בדרוזוהילה, למרות שכדי לזהות את המנגנון האנדוקרינית האחראי לאפקט, ניתן יהיה לדרוש חיבורים נוספים.

Introduction

פעילויות אנושיות משחררים לסביבה כמות עצומה של כימיקלים, המייצגים בעיה רצינית לאורגניזמים ולמערכת אקולוגית טבעית1. מזהמים אלה, מעריכים כי על 1,000 כימיקלים שונים עשויים לשנות את האיזון הרגיל של מערכות אנדוקריניות; לפי תכונה זו, הם מסווגים כימיקלים המערכת האנדוקרינית משבש (EDCs). באופן ספציפי, מבוסס על הגדרה לאחרונה על ידי החברה האנדוקרינית, EDCs הם “כימיקל אקסוגני, או תערובת של כימיקלים, כי יכול להפריע לכל היבט של פעולה הורמונלית”2. בשלושת העשורים האחרונים, יש כבר גידול ראיות מדעיות כי edcs יכול להשפיע על רבייה ופיתוח של בעלי חיים וצמחים3,4,5,6,7, שמונה. יתר על כן, חשיפה edc היתה קשורה השכיחות הגוברת של כמה מחלות האדם, כולל סרטן, השמנת יתר, סוכרת, מחלות בלוטת התריס, הפרעות התנהגותיות9,10,11.

מנגנונים כלליים של EDC

עקב התכונות המולקולריות שלהם, edcs להתנהג כמו הורמונים או הורמונים מקדים3,4,5,6,7,8,9, . עשר,11,12 במובן זה, הם יכולים לאגד קולטן הורמון לשבש מערכות אנדוקריניות או על ידי מחקה פעילות הורמון או על ידי חסימת הורמונים אנדוגניים מחייב. במקרה הראשון, לאחר הכריכה לקולטן, הם יכולים להפעיל אותו כמו הורמון הטבעי שלו יעשה. במקרה השני, קשירה של ה-EDC לקולטן מונע את הכריכה של הורמון הטבעי שלה, כך הקולטן חסומה ולא ניתן עוד להפעיל, אפילו בנוכחות הורמון טבעי3. כתוצאה מכך, EDCs יכול להשפיע על מספר תהליכים, כגון סינתזה, הפרשה, תחבורה, חילוף החומרים, או פעולה היקפית של הורמונים אנדוגניים האחראים לתחזוקת הומאוסטזיס, רבייה, פיתוח, ו/או התנהגות של האורגניזם כריכת הקולטן אינה הדרך היחידה לפעולה המתוארת עד כה ל-EDCs. כעת ברור כי הם יכולים גם לפעול על ידי גיוס מפעילים או corepressors ב מסלולים אנזימטיים או על ידי שינוי סמנים אפיגנטיים להסיר ביטוי גנים10,11,12,13 ,14, עם השלכות לא רק עבור הדור הנוכחי אלא גם עבור בריאות של דורות לבוא8.

הורמוני דרוזופילה

ההשפעות הפוטנציאליות של ה-EDCs שנבחרו נחקרו רבות, הן במינים של חיות הבר והן במערכות מודל מסוימות בהן מנגנונים אנדוקריניים ידועים באופן סביר. עבור חסרי חוליות, מערכות אנדוקריניות המשפיעות על הצמיחה, הפיתוח והרבייה האופיינים בהרחבה בחרקים מכמה סיבות, תוך שימוש נרחב בתחום המחקר הביולוגי, החשיבות הכלכלית שלהם ו לבסוף התפתחות של קוטלי חרקים המסוגלים להתערב במיוחד במערכת ההורמונים של חרקים מזיקים.

במיוחד, בין חרקים, זבוב הפירות D. melanogaster הוכיחה להיות מערכת מודל רבת עוצמה כדי להעריך את ההשפעות האנדוקריניות הפוטנציאליות של edcs. ב D. melanogaster, כמו גם בעלי חוליות, הורמונים לשחק תפקיד חשוב לאורך כל מחזור החיים. באורגניזם זה, יש שלוש מערכות הורמונליות הראשי, אשר כרוכות הורמון הסטרואידים 20-hydroxyecdysone (20e)15,16, הורמון הקטין לנוער sesquאיטראיד (jh)17, ואת נוירופפטידים ו פפטיד/חלבון הורמונים18. קבוצה שלישית זו מורכבת ממספר פפטידים שהתגלו לאחרונה אך בבירור מעורבים במגוון עצום של תהליכים פיזיולוגיים והתנהגותיים, כגון אריכות ימים, הומאוסטזיס, חילוף החומרים, רבייה, זיכרון, ו locomotor control. 20E הוא הומוולוגי להורמונים סטרואידים נגזרים כולסטרול כגון estradiol, בעוד JH שותפים כמה קווי דמיון עם חומצה retinoic; שניהם הורמונים ידועים יותר. בדרוזוהילה19,20 האיזון שלהם חיוני בתיאום המולטינג והגלגול, כמו גם בשליטה על מספר תהליכים פוסט-התפתחותיים, כגון רבייה, תוחלת חיים, והתנהגות21, ובכך מציעה אפשרויות שונות לבדיקה אנדוקרינית הפרעה בדרוזופילה. יתרה מזאת, הורמונים ecdysteroid ו-JHs הם המטרות העיקריות של האינסקטיצידים הדור השלישי, שפותחו כדי להפריע לתהליכים התפתחותיים והרבייה בתיווך בחרקים. הסוג האגוניסט או מצב היריב של הכימיקלים האלה ידוע היטב, ולכן הם יכולים לשמש כסטנדרטים להתייחסות להערכת ההשפעות של מחשבי ה-EDCs הפוטנציאליים על הצמיחה, הרבייה והפיתוח של חרקים22. לדוגמה, מתיונין, אשר כבר בשימוש נרחב בשליטה יתושים וחרקים מימיים אחרים23,24, עובד כמו אגוניסט jh ו לוחץ מחדש 20e המושרה שעתוק ומטמורפוזה.

בנוסף להורמונים הורמונים, הקולטן הגרעינית (NR) בדרוסופילה ידועה גם כן; הוא מורכב מ -18 מקדמי שימור ושימור שימור הקשורים במסלולים התפתחותיים תלויי הורמונים, כמו גם רבייה ופיזיולוגיה25. הורמון זה NRs שייך לכל ששת מיני-משפחה של ה-NR, כולל אלה מעורבים נוירותמסורת26, שניים עבור חומצה Retinoic nrs, אלה עבור סטרואידים nrs כי, בעלי חוליות, מייצגים אחד היעדים העיקריים של edcs27.

דרוסופילה כמערכת מודל לחקר הפקולטה למדעי המחשב

כיום, על בסיס של תכונות מולקולריות, מספר סוכנויות סביבתיות ברחבי העולם מייחס את הפוטנציאל להפריע למערכות האנדוקריניות לכימיקלים שונים מעשה ידי אדם. בהינתן כי EDCs הם בעיה גלובלית בכל מקום עבור הסביבה ועבור אורגניזמים, המטרה הכוללת של המחקר בתחום זה היא להפחית את נטל המחלה שלהם, כמו גם כדי להגן על אורגניזמים חיים מהשפעות שליליות שלהם. על מנת להעמיק את ההבנה על ההשפעות האנדוקריניות הפוטנציאליות של כימיקל, יש צורך לבחון אותו בvivo. למטרה זו, ד. מלאנוגסטר מייצג מערכת מודל תקפה. עד היום, זבוב הפירות היה בשימוש נרחב כמו במודל vivo כדי להעריך את ההשפעות של מספר EDCs סביבתיים; דווח כי חשיפה לכמה edcs, כגון דיבוטיל פתלאט (dbp)28, בינתנול A (BPA), 4-nonylphenol (4-NP), 4-tert-octylphenol (4-tert-OP)29, מתיל paraben (MP)30, ethylparen (EP)31, 32, bis-(2-ethylyl) פתלאט (dehp)33, ו-17-α-ethinyלסטרנול (EE2)34, משפיע על חילוף החומרים ופונקציות אנדוקריניות כמו במודלים בעלי חוליות. מספר סיבות הובילו לשימוש בו כמודל בתחום זה של המחקר. מעבר לידע מצוין של המערכות האנדוקריניות שלה, יתרונות נוספים כוללים את מחזור החיים הקצר שלה, עלות נמוכה, בקלות manipulable הגנום, היסטוריה ארוכה של מחקר, ומספר אפשרויות טכניות (לראות את האתר FlyBase, http://flybase.org/). ד. melanogaster מספק גם מודל רב עוצמה לחקר בקלות השפעות טרנסדוריים ותגובות האוכלוסייה לגורמים סביבתיים8 ונמנע בעיות אתיות הרלוונטיות למחקרים vivo בבעלי חיים גבוהים יותר. בנוסף, זבוב הפירות משתף מידה גבוהה של שימור גנים עם בני אדם שעשויים לאפשר לדרוזוהילה edc בחני לסייע בחיזוי או בהצעת השפעות פוטנציאליות של כימיקלים אלה לבריאות האדם. מלבד הרחבת ההבנה על השפעות בריאותיות של האדם, דרוזופילה יכול לעזור להעריך את הסיכונים של חשיפת EDC לסביבה, כגון אובדן מגוון המינים והשפלה סביבתית. לבסוף, זבוב הפירות מציע את היתרון הנוסף של השימוש במעבדות, שבו הגורמים העלולים להשפיע על התפתחותו, הרבייה ותוחלת החיים ניתן לשמור תחת שליטה על מנת לייחס כל וריאציה על החומר להיבדק.

עם זאת בראש, יש לנו אופטימיזציה כושר פשוטה ואיתנה לקביעת אפקטים של EDC על כמה מאפיינים הורמונליים של דרוזוהילה, כגון פוריות/פוריות, עיתוי התפתחותי, ותוחלת חיים של מבוגרים. מספר זה שימשו באופן נרחב לכמה מהנגמ ש23,24,25,26,27. בפרט, השתמשנו בפרוטוקולים הבאים כדי להעריך את ההשפעות של החשיפה לאסטרוגן סינתטי EE234 ו BPA ו ביפרונול AF (BPA F) (נתונים שלא פורסמו). פרוטוקולים אלה עשויים להיות שונה בקלות כדי לחקור את ההשפעות של EDC נתון בכל פעם, כמו גם את ההשפעות המשולבות של מספר Edc ב D. melanogaster.

Protocol

1. הכנת מזון לתחזוקת מניות ולגידול זחל, השתמש במדיום ארוחה בינונית המכילה 3% אבקת שמרים, 10% סוכרוז, 9% קמח תירס מבושל מראש, 0.4% אגר, לאחר מכן המכונה בינונית קמח תירס (CM). לשים 30 גרם של שמרים לתוך 100 mL של מי ברז, להביא אותו לרתיחה ולתת לו לרתוח עבור 15 דקות. בנפרד, מערבבים היט?…

Representative Results

בסעיף זה, מדווחים שלבי המפתח של הפרוטוקולים הנ ל בצורה של סכימות פשוטות יותר. בהינתן כי זבובים נוטים להימנע תרכובות טעים, הדבר הראשון לעשות הוא לקבוע את הטעם של EDC נבחר. זה יכול להיעשות על ידי ערבוב של צביעה מזון (למשל, צבע אדום מאכל no. 40)35 עם המזון שיושלם עם edc נבחר במינונים שונים …

Discussion

זבוב הפירות D. melanogaster היה מועסק בהרחבה כמו במערכת vivo model כדי לחקור את ההשפעות הפוטנציאליות של הסביבה edcs כגון dbp28, BPA, 4-NP, 4-tert-OP29, MP30, EP31, 32, dehp33, ו EE234. מספר סיבות הובילו את השימוש בו כמודל בתחום…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים מודים לאורסולינה פטורו לקבלת תמיכה טכנית. המחברים מודים לד ר מריארטריה אלטה (CNR) לתמיכה ביבליוגרפית. המחברים מודים לד ר גוסטבו דמייאנו מיטה עבור הצגת אותם בעולם EDC. המחברים מודים לייקה מיקרוסיסטמס ופסקואלה רומנו על עזרתם. מחקר זה נתמך על ידי Project PON03PE_00110_1. “המילה הטובה ביותר היא מילה של משפחה, ולהשתלות את הצ” בדונטויטיקה, לאחר שacronimo, הייתה מאוד מלאה בשיניים ובקללות. Committente: פו FESR 2014-2020 קמפאנייה; פרויקט פו פהאב קמפאנייה 2007-2013 “ננו-לוגי לפני RILASCIO בלטו בסין”.

Materials

17α-Ethinylestradiol Sigma E4876-1G
Agar for Drosophila medium BIOSIGMA 789148
Bisphenol A Sigma 239658-50G
Bisphenol AF Sigma 90477-100MG
Cornmeal CA' BIANCA
Diethyl ether Sigma
Drosophila Vials BIOSIGMA 789008 25×95 mm
Drosophila Vials BIOSIGMA 789009 29×95 mm
Drosophila Vials Kaltek 187 22X63
Embryo collection cage Crafts Plexiglass cylinder (12,5 x7 cm) with an open end and the other end closed by a rectangular base in which a slot allows the insertion of special trays for laying
Ethanol FLUKA 2860
Etherizer Crafts cylindrical glass container with a cotton plug
Glass Bottle 250mL Bottles
Glass Vials Microtech ST 10024 FLAT BOTTOM TUBE 100X24
Hand blender Pimmy Ariete food processor
Instant Success yeast ESKA Powdered yeast
Laying tray Crafts plexiglass trays (11 x 2,6 cm) in wich to pour medium for laying
Methyl4-hydroxybenzoate SIGMA H5501
Petri Dish Falcon 351016 60×5
Red dye no. 40 SIGMA 16035
Stereomicroscope with LED lights Leica S4E
Sucrose HIMEDIA MB025
Tomato sauce Cirio

References

  1. Kareiva, P. M., Marvier, M., Kareiva, P. M., Marvier, M. Managing fresh water for people and nature. Conservation Science: Balancing the Needs of People and Nature. , 460-509 (2011).
  2. Zoeller, R. T., et al. Endocrine-disrupting chemicals and public health protection: a statement of principles from The Endocrine Society. Endocrinology. 153 (9), 4097-4110 (2012).
  3. Guillette, J., Gunderson, M. P. Alterations in development of reproductive and endocrine systems of wildlife populations exposed to endocrine-disrupting contaminants. Reproduction. 122, 857-864 (2001).
  4. Guillette, L. J. Endocrine disrupting contaminants-beyond the dogma. Environmental Health Perspectives. 114, 9-12 (2006).
  5. Liao, C. S., Yen, J. H., Wang, Y. S. Growth inhibition in Chinese cabbage (Brassica rapa var. chinensis) growth exposed to di-n-butyl phthalate. Journal of Hazardous Materials. 163, 625-631 (2009).
  6. Qiu, Z., Wang, L., Zhou, Q. Effects of Bisphenol A on growth, photosynthesis and chlorophyll fluorescence in above-ground organs of soybean seedlings. Chemosphere. 90, 1274-1280 (2013).
  7. Wang, S., et al. Effects of Bisphenol A, an environmental endocrine disruptor, on the endogenous hormones of plants. Environmental Science and Pollution Research. 22, 17653-17662 (2015).
  8. Quesada-Calderón, S., et al. The multigenerational effects of water contamination and endocrine disrupting chemicals on the fitness of Drosophila melanogaster. Ecology and Evolution. 7, 6519-6526 (2017).
  9. Bergman, A., Heindel, J., Jobling, S., Kidd, K., Zoeller, R. . The State of the Science of Endocrine Disrupting Chemicals – 2012. , (2013).
  10. Bachega, T. A. S. S., Verreschi, I. T., Frade, E. M. C., D’Abronzo, F. H., Lazaretti-Castro, M. The environmental endocrine disruptors must receive the attention of Brazilian endocrinologists. Arquivos Brasileiros de Endocrinologia & Metabologia. 55, 175-176 (2011).
  11. Schug, T. T., Janesick, A., Blumberg, B., Heindel, J. J. Endocrine disrupting chemicals and disease susceptibility. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 127, 204-215 (2011).
  12. Lee, S. B., Choi, J. Effects of Bisphenol A and Ethynyl estradiol exposure on enzyme activities, growth and development in the fourth instar larvae of Chironomus riparius (Diptera, Chironomidae). Ecotoxicology and Environmental Safety. 68, 84-90 (2007).
  13. Vos, J. G., et al. Health effects of endocrine-disrupting chemicals on wildlife, with special reference to the European situation. Critical Reviews in Toxicology. 20, 71-133 (2000).
  14. Costa, E. M. F., Spritzer, P. M., Hohl, A., Bachega, T. A. S. S. Effects of endocrine disruptors in the development of the female reproductive tract. Arquivos Brasileiros de Endocrinologia & Metabologia. 58 (2), 153-161 (2014).
  15. Thummel, C. S. From embryogenesis to metamorphosis: the regulation and function of Drosophila nuclear receptor superfamily members. Cell. 83, 871-877 (1995).
  16. Schwedes, C. C., Carney, G. E. Ecdysone signaling in adult Drosophila melanogaster. Journal of Insect Physiology. 58, 293-302 (2012).
  17. Flatt, T., Kawecki, T. J. Pleiotropic effects of methoprene-tolerant (Met), a gene involved in juvenile hormone metabolism, on life history traits in Drosophila melanogaster. Genetica. 122, 141-160 (2004).
  18. Nassel, D. R., Winther, A. M. E. Drosophila neuropeptides in regulation of physiology and behavior. Progress in Neurobiology. 92, 42-104 (2010).
  19. Truman, J. W., Riddiford, L. M. Endocrine insights into the evolution of metamorphosis in insects. Annual Review of Entomology. 47, 467-500 (2002).
  20. Gáliková, M., Klepsatel, P., Senti, G., Flatt, T. Steroid hormone regulation of C. elegans and Drosophila aging and life history. Experimental Gerontology. 46, 141-147 (2011).
  21. Kozlova, T., Thummel, C. S. Steroid regulation of postembryonic development and reproduction in Drosophila. Trends in Endocrinology & Metabolism. 11, 276-280 (2000).
  22. Weltje, L., Matthiessen, P. Techniques for Measuring Endocrine Disruption in Insects. Endocrine Disrupters: Hazard Testing and Assessment Methods. , 100-115 (2013).
  23. Zou, Z., et al. Juvenile hormone and its receptor, methoprene-tolerant, control the dynamics of mosquito gene expression. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (24), E2173-E2181 (2013).
  24. Zhao, W. L., et al. Methoprene-tolerant 1 regulates gene transcription to maintain insect larval status. Journal of Molecular Endocrinology. 53 (1), 93-104 (2014).
  25. Mangelsdorf, D. J., et al. The nuclear receptor superfamily: the second decade. Cell. 83, 835-839 (1995).
  26. Riddiford, L. M., Bate, M., Martinez Arias, A. Hormones and Drosophila development. The Development of Drosophila melanogaster. , 899-939 (1993).
  27. Watts, M. M., Pascoe, D., Carroll, K. Chronic exposure to 17a-ethinylestradiol and bisphenol A-effects on development and reproduction in the freshwater invertebrate Chironomus riparius (Diptera: chironomidae). Aquatic Toxicology. 55, 113-124 (2001).
  28. Atli, E. The effects of dibutyl phthalate (DBP) on the development and fecundity of Drosophila melanogaster. Drosophila Information Service. 93, 164-171 (2010).
  29. Atli, E. The effects of three selected endocrine disrupting chemicals on the fecundity of fruit fly, Drosophila melanogaster. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 9, 433-437 (2013).
  30. Gu, W., Xie, D. J., Hou, X. W. Toxicity and estrogen effects of methylparaben on Drosophila melanogaster. Food Science. 30, 252-254 (2009).
  31. Liu, T., Li, Y., Zhao, X., Zhang, M., Gu, W. Ethylparaben affects lifespan, fecundity, and the expression levels of ERR, EcR and YPR in Drosophila melanogaster. Journal of Insect Physiology. 71, 1-7 (2014).
  32. Chen, Q., Pan, C., Li, Y., Zhang, M., Gu, W. The Combined Effect of Methyl- and Ethyl-Paraben on Lifespan and Preadult Development Period of Drosophila melanogaster (Diptera: Drosophilidae). Journal of Insect Science. 16 (1), 1-8 (2016).
  33. Cao, H., Wiemerslage, L., Marttila, P. S., Williams, M. J., Schioth, H. B. Bis-(2-ethylhexyl) Phthalate Increases Insulin Expression and Lipid Levels in Drosophila melanogaster. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology. 119, 309-316 (2016).
  34. Bovier, T. F., Rossi, S., Mita, D. G., Digilio, F. A. Effects of the synthetic estrogen 17-α-ethinylestradiol on Drosophila T melanogaster: Dose and gender dependence. Ecotoxicology and Environmental Safety. 162, 625-632 (2018).
  35. Tanimura, T., Isono, K., Takamura, T., Shimada, I. Genetic dimorphism in the taste sensitivity to trehalose in Drosophila melanogaster. Journal of Comparative Physiology. 147, 433-437 (1982).
  36. Vandenberg, L. N., et al. Hormones and endocrine-disrupting chemicals: low-dose effects and non- monotonic dose responses. Endocrine Reviews. 33, 378-455 (2012).
  37. Abolaji, A. O., Kamdem, J. P., Farombi, E. O., Rocha, J. B. T. Mini Review: Drosophila melanogaster as a Promising Model Organism in Toxicological Studies. Archives of Basic and Applied. 1, 33-38 (2013).
  38. Yesilada, E. Genotoxic Activity of Vinasse and Its Effect on Fecundity and Longevity of Drosophila melanogaster. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 63, 560-566 (1999).
  39. Atli, E., Ünlü, H. The effects of microwave frequency electromagnetic fields on the fecundity of Drosophila melanogaster. Turkish Journal of Biology. 31, 1-5 (2007).
  40. Flatt, T., Tu, M., Tatar, M. Hormonal pleiotropy and the juvenile hormone regulation of Drosophila development and life history. BioEssays. 27, 999-1010 (2005).
  41. Rand, M. D., Montgomery, S. L., Prince, L., Vorojeikina, D. Developmental Toxicity Assays Using the Drosophila Model. Current Protocols in Toxicology. 59, 1-27 (2015).
  42. Fletcher, J. C., Burtis, K. C., Hogness, D. S., Thummel, C. S. The Drosophila E74 gene is required for metamorphosis and plays a role in the polytene chromosome puffing response to ecdysone. Development. 121, 1455-1465 (1995).
  43. Giordano, E., Peluso, I., Senger, S., Furia, M. minifly, A Drosophila Gene Required for Ribosome Biogenesis. The Journal of Cell Biology. 144 (6), 1123-1133 (1999).
  44. Tower, J., Arbeitman, M. The genetics of gender and life span. The Journal of Biology. 8, 38 (2009).
  45. Digilio, F. A., et al. Quality-based model for Life Sciences research guidelines. Accreditation and Quality Assurance. 21, 221-230 (2016).
  46. Sorensen, J. G., Loeschcke, V. Larval crowding in Drosophila melanogaster induces Hsp70 expression, and leads to increased adult longevity and adult thermal stress resistance. Journal of Insect Physiology. 47, 1301-1307 (2001).
  47. Linford, N. J., Bilgir, C., Ro, J., Pletcher, S. D. Measurement of Lifespan in Drosophila melanogaster. Journal of Visualized Experiments. (71), e50068 (2013).
  48. Weltje He, Y., Jasper, H. Studying aging in Drosophila. Methods. 68, 129-133 (2014).

Play Video

Cite This Article
Bovier, T. F., Cavaliere, D., Colombo, M., Peluso, G., Giordano, E., Digilio, F. A. Methods to Test Endocrine Disruption in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (149), e59535, doi:10.3791/59535 (2019).

View Video