Культивированный первичных или установленных клеточных линий обычно используются для решения фундаментальных биологических и механистических вопросов, как первоначальный подход, прежде чем использовать модели животных. Этот протокол описывает, как подготовить целые Клеточные экстракты и субклеточные фракции к изучению цинка (Zn) и других микроэлементов с атомной спектроскопии поглощения.
Переходные металлы являются необходимыми микроэлементами для организмов, но могут быть токсичными для клеток в высоких концентрациях, конкурируя с физиологическими металлами в белках и генерируя восстановительный стресс. Патологические состояния, которые приводят к истощению или накоплению металла, являются причинные агенты различных заболеваний человека. Некоторые примеры включают анемию, акродерматит энтеропатии, и болезни Уилсона и Менкса. Поэтому важно иметь возможность измерять уровни и транспортировать переходные металлы в биологических образцах с высокой чувствительностью и точностью, чтобы облегчить исследования, исследуя, как эти элементы способствуют нормальным физиологическим функциям и Токсичность. Цинк (Zn), например, является кофактором во многих белков млекопитающих, участвует в сигнальных событиях, и является вторичным посыльным в клетках. В избытке, Zn является токсичным и может препятствовать поглощению других металлов, в то время как в дефиците, это может привести к целому ряду потенциально смертоносных условиях.
Графит печи атомной абсорбции спектроскопии (GF-ААС) обеспечивает высокочувствительный и эффективный метод для определения Zn и других концентраций переходных металлов в различных биологических образцов. Электротермическая атомизации через GF-ААС квантифицирует металлы путем распыления небольших объемов образцов для последующего выборочного анализа поглощения с использованием длины волны возбуждения элемента интересов. В рамках линейности закона Бир-Ламберта абсорбционные света металлом прямо пропорциональны концентрации анализатора. По сравнению с другими методами определения Zn содержание, GF-ААС обнаруживает как свободные и комплексность Zn в белки и, возможно, в небольших внутриклеточных молекул с высокой чувствительностью в небольших объемах выборки. Кроме того, GF-ААС также более доступными, чем индуктивно сочетании плазменной массы спектрометрии (ПМС-MS) или синхротрон основе рентгеновской флуоресценции. В этом методе описывается систематический образец подготовки различных культивируемых клеточных линий для анализа в GF-ААС. Вариации в этом трассированном элементе сравнивались как в целых клеточных лиях, так и в субклеточных фракциях пролиферирующих и дифференцированных клеток как доказательство принципа.
Переходные и тяжелые металлы, такие как Zn, Cu, MN и Fe, встречаются естественным образом в окружающей среде как в питательных веществах, так и в продуктах питания и загрязнителях. Все живые организмы требуют различного количества этих питательных микроэлементов; Однако воздействие высоких уровней является пагубным для организмов. Приобретение металла в основном через диету, но металлы также может быть вдыхании или всасывается через кожу1,2,3,4,5. Важно отметить, что присутствие металлов в атмосферных частицах возрастает и в значительной степени связано с риском для здоровья. В связи с антропогенной деятельностью в атмосферных твердых частиц, дождевой воде и почве6,7были обнаружены повышенный уровень тяжелых металлов, таких как АГ, как, CD, CR, гектограмм, Ni, Fe и ПБ. Эти металлы обладают потенциалом конкурировать с необходимыми физиологическими микроэлементами, в частности Zn и Fe, и они индуцируют токсические эффекты, инактивируя фундаментальные ферменты для биологических процессов.
Микроэлемент Zn является редокс нейтральным и ведет себя как кислота Льюиса в биологических реакциях, что делает его фундаментальным кофактором, необходимым для складывания белка и каталитической активностью в более чем 10% белков млекопитающих8,9, в 10 лет; Следовательно, она имеет важное значение для различных физиологических функций8,11. Однако, как и многие микроэлементы, существует хрупкое равновесие между этими металлами, облегчающ нормальную физиологическую функцию и вызывая токсичность. У млекопитающих, Zn недостатки приводят к анемии, замедление роста, гипогонадизм, кожные аномалии, диарея, алопеция, вкусовые расстройства, хроническое воспаление, и нарушениями иммунной и неврологических функций11,12, 13,14,15,16,17,18. В избытке, Zn является цитотоксическим и ухудшает поглощение других основных металлов, таких как медь19,20,21.
Кроме того, некоторые металлы, как Cu и Fe имеют потенциал для участия в вредных реакций. Производство реактивных видов кислорода (рос) через химию Фентона может помешать сборке белков железорудного кластера и изменению липидного метаболизма22,23,24. Чтобы предотвратить этот ущерб, клетки используют металлические связывания сопровождающих и транспортеров для предотвращения токсического воздействия. Несомненно, металлический гомеостаз должен быть жестко контролируется, чтобы гарантировать, что конкретные типы клеток поддерживать надлежащий уровень металлов. По этой причине существует существенная потребность в продвижении методов точного измерения микрометаллов в биологических образцах. В развивающихся и зрелых организмах существует дифференциальная биологическая потребность в микроэлементах на клеточном уровне, на различных стадиях развития, в нормальных и патологических условиях. Таким образом, точное определение тканей и системных уровней металла необходимо понять, организмы металлический гомеостаз.
Графитовой печи атомной поглощения спектрометрии (GF-ААС) является весьма чувствительным методом, используемым для малых объемов выборки, что делает его идеальным для измерения переходных и тяжелых металлов, присутствующих в биологических и экологических образцов25,26 , 27 , 28. Кроме того, из-за высокой чувствительности техники, было показано, что целесообразно для изучения тонких транспортных свойств Na+/K+-Atpase и желудочный H+/K+-atpase использованием ксенопус ооцитов в качестве типовой системы29. В GF-ААС, распыленных элементов в образце поглощают длину волны излучения, излучаемого источником света, содержащего металл интересов, с поглощенной излучения пропорционально концентрации элемента. Элементарное электронное возбуждение происходит при поглощении ультрафиолетового или видимого излучения в квантизованному процессе, уникальном для каждого химического элемента. В процессе одного электрона поглощение фотона включает электрон, двигающий от более низкого уровня энергии до более высокого уровня в пределах атома, и GF-ААС определяет количество фотонов, поглощающих образец, который пропорционален количеству излучения, поглощающего элементы, распыленных в графитовой трубе.
Избирательность этого метода опирается на электронную структуру атомов, в которой каждый элемент имеет специфическую спектральную линию поглощения/излучения. В случае Zn, длина волны поглощения составляет 213,9 Нм и может быть точно отличается от других металлов. В целом, GF-ААС может использоваться для количественной оценки Zn с адекватными ограничениями обнаружения (ОД) и высокой чувствительностью и избирательностью25. Изменения в поглощенной длине волны интегрированы и представлены как пики поглощения энергии на специфических и изолированных длинами волн. Концентрация Zn в данной выборке, как правило, рассчитывается от стандартной кривой известных концентраций в соответствии с законом Бир-Ламберта, в котором абсорбционные непосредственно пропорциональны концентрации Zn в образце. Однако применение уравнения Бир-Ламберта к анализу GF-ААС также представляет некоторые осложнения. Например, различия в концентрациях в атомизации и/или неоднородности образцов могут влиять на измерение металла.
Металлические атомизации, необходимые для GF ААС трассировки элементарного анализа состоит из трех фундаментальных шагов. Первый шаг – это опустошающей, где испаряется жидкий растворитель; оставляя сухие соединения после печи достигает температуры около 100 ° c. После этого, соединения испаряются путем нагревать их от 800 до 1 400 °C (в зависимости от элемента, котор нужно проанализировать) и становят газ. Наконец, соединения в газообразном состоянии распыляется с температурами, которые варьируются от 1 500 к 2 500 ° c. Как говорилось выше, повышение концентраций металлического интереса окажет пропорциональное увеличение поглощения, обнаруженного GF-ААС, но печь уменьшает динамический диапазон анализа, который является рабочим диапазоном концентраций, которые могут быть определяется инструментом. Таким образом, методика требует низких концентраций и тщательного определения динамического диапазона метода путем определения Лода и предела линейности (LOL) Закона Бир-Ламберта. ОД является минимальным количеством, необходимым для обнаружения вещества, определяемых как три раза стандартное отклонение Zn в матрице. LOL является максимальная концентрация, которая может быть обнаружена с помощью пива-Ламберт закона.
В этой работе мы описываем стандартный метод анализа уровней Zn в цельных клеточных экстрактах, цитоплазматических и ядерных фракциях, а так же в размножающихся и дифференцирующих культивируемых клетках (рис. 1). Мы адаптировали быструю изоляцию протокола ядер к разным сотовым системам, чтобы предотвратить потерю металла во время подготовки образца. Сотовые модели, используемые были первичные миобластов, полученных из клеток мыши спутник, Мурин нейрообластомы клетки (N2A или Neuro2A), Мурина 3T3 лаунематоцитов, человека, не-опухолевых клеток груди эпителиальной линии (MCF10A), и эпителиальных Мадин-Дарби почки собак ( Клеток). Эти клетки были созданы из разных линий и являются хорошими моделями для исследования линии конкретных вариаций уровней металлов в пробирке.
Первичные миобласты, полученные из клеток-спутников мыши, представляют собой хорошо подходящую в пробирке модель для исследования дифференциации скелетных мышц. Распространение этих клеток быстро, когда культивируемых в условиях высокой сыворотки. Дифференциация в мышечной линии затем индуцированных низкой сыворотки условиях30. «Мурина нейрообластома» (N2A), созданная клеточная линия, была получена из мыши нейронной гребень. Эти клетки представляют нейронов и аамбоид стволовых клеток морфологии. После стимулирования дифференциации, клетки N2A представляют несколько свойств нейронов, таких как нейронити. N2A клетки используются для исследования болезни Альцгеймера, неврит, и нейротоксичность31,32,33. 3T3-й Мурина предадипоциты, установленные клеточной линии обычно используется для исследования метаболических и физиологических изменений, связанных с адипогенез. Эти клетки настоящее фиброскомного типа морфологии, но как только стимулируется для дифференциации, они представляют ферментативной активации, связанной с синтеза липидов и накопления триглицеридов. Это можно наблюдать как морфологические изменения для производства цитоплазматических капель липидов34,35. MCF10A это не опухоль молочной эпителиальной клеточной линии, полученной от пременопаузы женщина с молочной фиброзно-кистозной болезни36. Он широко использовался для биохимических, молекулярных и клеточных исследований, связанных с карциногенеза молочной железы, таких как распространение, клеточная миграция и вторжение. Манин-Дарби собачьей почки (МДК) эпителиальной клеточной линии широко используется для исследования свойств и молекулярных событий, связанных с созданием эпителиального фенотипа. После достижения слияния, эти клетки становятся поляризованным и установить клетки ячейки спайки, характеристики млекопитающих эпителиальных тканей37.
Чтобы проверить способность ААС измерять уровни Zn в клетках млекопитающих, мы проанализировали целые и субклеточные фракции (цитозоль и ядро) этих пяти клеточных линий. Измерения ААС показали различные концентрации Zn в этих типах клеток. Концентрация была ниже в распространении и дифференцирующих первичных миобластов (от 4 до 7 нмоль/мг белка) и выше в четырех установленных клеточных линиях (от 20 до 40 нмоль/мг белка). Небольшое несущественное увеличение уровней Zn было обнаружено при дифференциации первичных мизобластов и нейростозмы клеток по сравнению с пролиферирующих клеток. Противоположный эффект был обнаружен в дифференцированных адипоцитов. Однако, пролиферирующих клетки 3T3-1, выставлены более высокие концентрации металла по сравнению с дифференцированными клетками. Важно отметить, что в этих трех клеточных линиях субклеточная фракционирование показала, что ЗН по-разному распределяется в цитозолу и ядре в соответствии с метаболическим состоянием этих клеток. Например, в пролиферирующих миобластов, N2A клеток, и 3T3-У1 до адипоцитов, большинство из металла локализован в ядро. После индукции дифференцировки используя специфические обработки клетки, Zn локализуется к цитозолу в этих 3 типах клетки. Интересно, что оба эпителиальных линий клеток показали более высокие уровни Zn во время распространения по сравнению с при достижении слияния, в котором характерный плотный монослой был сформирован. В пролиферирующих клетках эпителия, линия молочной клетки MCF10A имела равное распределение Zn между цитозолом и ядром, в то время как в клеточной линии почки, большая часть металла находилась в ядре. В этих двух типах клеток, когда клетки достигали слияния, Zn был преимущественно расположен к цитозолу. Эти результаты показывают, что GF-ААС является высокочувствительным и точным методом для выполнения элементарного анализа в малоурожайной образцах. GF-ААС в сочетании с подклеточной фракционирования и может быть адаптирована для изучения уровней следов металлических элементов в различных клеточных линий и тканей.
Атомная спектроскопия поглощения является высокочувствительным методом для количественной оценки Zn в малом объеме/массе биологических образцов. Описанная оптимизация измерения Zn делает применение этого метода простым и гарантирует идеальные аналитические условия. Здесь, используя…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана факультета разнообразии ученых награду от университета Массачусетса медицинская школа Т.П.-B. Н.Н.-T. поддерживается Сен-КОНАСИТ, Грант 279879. J. G. N поддерживается Национальным фондом науки Грант DBI 0959476. Авторы благодарны доктору Дэрилу а. Боско за предоставление линии N2A и Даниэлла Кангуссу за техническую поддержку.
3-isobutyl-1-methylxanthine | Sigma Aldrich | I5879 | |
Acetic Acid | Sigma Aldrich | 1005706 | |
Anti Brg1-antibody (G7) | Santa Cruz biotechnologies | sc-17796 | |
Anti b-tubulin-antibody (BT7R) | Thermo Scientific | MA5-16308 | |
Bradford | Biorad | 5000205 | |
Dexamethasone | Sigma Aldrich | D4902 | |
Dulbecco's Modified Eagle's Media (DMEM) | ThermoFischer-Gibco | 11965092 | |
Dulbecco's Modified Eagle's Media/Nutrient Mix (DMEM/F12) | ThermoFischer-Gibco | 11320033 | |
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS) | ThermoFischer-Gibco | 14190144 | |
Epidemal Growth Factor (EGF) | Sigma Aldrich | E9644 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | ThermoFischer-Gibco | 16000044 | |
Fibroblastic Growth Factor-Basic (FGF) (AA 10-155) | ThermoFischer-Gibco | PHG0024 | |
Horse serum | ThermoFischer-Gibco | 16050122 | |
Hydrocortisone | Sigma Aldrich | H0888 | |
Hydrogen Peroxide (H2O2) | Sigma Aldrich | 95321 | |
Insulin | Sigma Aldrich | 91077C | |
Insulin-Transferrin-Selenium-A | ThermoFischer | 51300044 | |
Nitric Acid (HNO3) | Sigma Aldrich | 438073 | |
Nonidet P-40 (NP-40) | Thermo Scientific | 85125 | |
OptiMEM (Reduced Serum Media) | ThermoFischer-Gibco | 31985070 | |
Penicillin-Streptomycin | ThermoFischer-Gibco | 15140148 | |
PureCol (Collagen) | Advanced BioMatrix | 5005 | |
Retionic Acid | Sigma Aldrich | PHR1187 | |
Troglitazone | Sigma Aldrich | 648469-M | |
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | ThermoFischer-Gibco | 25200056 | |
Zinc (Zn) Pure Single-Element Standard, 1,000 µg/mL, 2% HNO3 | Perkin Elmer | N9300168 | |
Established Cell Lines | |||
3T3-L1 | American Type Culture Collection | CL-173 | |
MCDK | American Type Culture Collection | CCL-34 | |
MCF10A | American Type Culture Collection | CRL-10317 | |
N2A | American Type Culture Collection | CCL-131 | |
Equipment | |||
Atomic Absortion spectrophotometer | PerkinElmer | Aanalyst 800 | |
Bioruptor | Diagnode | UCD-200 |