I legami disolfuro sono stati a lungo conosciuti per stabilizzare la struttura di molte proteine. Un metodo semplice per analizzare complessi multimerici stabilizzati da questi legami è attraverso l’analisi di SDS-PAGE non-riduzione. Qui, questo metodo è illustrato analizzando l’isoforma nucleare di dUTPase dalla linea cellulare osteosarcoma dell’osso umano U-2 OS.
Le strutture di molte proteine sono stabilizzate attraverso legami di disolfuro covalenti. Nel recente lavoro, questo legame è stato anche classificato come una modifica post-traduzionale. Così, è importante essere in grado di studiare questa modifica nelle cellule viventi. Un metodo semplice per analizzare questi complessi multimerici stabilizzati con cisteina è attraverso un metodo a due fasi di analisi SDS-PAGE non-riduzione e cross-linking di formaldeide. Questo metodo a due fasi è vantaggioso come il primo passo per scoprire complessi multimerici stabilizzati da legami disolfuro a causa della sua facilità tecnica e basso costo di funzionamento. Qui, la linea cellulare di osteosarcoma osseo umano U-2 OS viene utilizzata per illustrare questo metodo analizzando specificamente l’isoforma nucleare di dUTPase.
I legami disolfuro sono stati a lungo conosciuti per stabilizzare la struttura di molte proteine. Nel recente lavoro, questo legame è stato anche classificato come una modifica post-traslazionale reversibile, agendo come un “interruttore redox” a base di cisteina che consente la modulazione della funzione proteica, la posizione e l’interazione1,2, 3,4. Pertanto, è importante essere in grado di studiare questa modifica. Un metodo semplice per analizzare questi complessi multimerici stabilizzati con cisteina è attraverso l’analisi non-riduzione SDS-PAGE5. L’analisi SDS-PAGE è una tecnica utilizzata in molti laboratori, dove i risultati possono essere ottenuti e interpretati in modo rapido, semplice e con costi minimi, ed è vantaggioso rispetto ad altre tecniche utilizzate per identificare i legami disolfuro come la spettrometria di massa6 ,7 e dicroismo circolare8.
Un passo importante nel determinare se questo metodo è una tecnica appropriata per aiutare in uno studio è quello di esaminare accuratamente la sequenza primaria della proteina di interesse per assicurare che ci sono residui di cisteina (s) presenti. Un altro passo utile è quello di ricercare le precedenti strutture cristalline pubblicate o utilizzare un’applicazione bioinformatica per esplorare la struttura tridimensionale della proteina di interesse per visualizzare dove possono essere localizzati i residui di cisteina. Se il residuo (s) è presente sulla superficie esterna può essere un candidato migliore per formare un legame disolfuro piuttosto che un residuo di cisteina sepolto all’interno della struttura. Tuttavia, è importante notare che le proteine possono subire cambiamenti strutturali sulle interazioni del substrato o sulle interazioni proteina-proteina permettendo che questi residui diventino poi esposti anche all’ambiente.
I complessi multimerici identificati possono quindi essere verificati con il cross-linking chimico usando la formaldeide. La formaldeide è un cross-linker ideale per questa tecnica di verifica a causa dell’elevata permeabilità alle cellule e della breve estensione di ~ 2-3 Å, assicurando il rilevamento di interazioni proteina-proteina specifiche9,10. Qui, questo metodo è illustrato analizzando l’isoforma nucleare di dUTPase dalla linea cellulare osteosarcoma ossea umana U-2 OS11. Tuttavia, questo protocollo può essere adattato per altre linee cellulari, tessuti e organismi.
Il metodo qui delineato fornisce un protocollo diretto per l’analisi di complessi multimerici stabilizzati attraverso legami disolfuro. Questo protocollo può essere facilmente adattato ad altre linee di coltura cellulare, tessuti e organismi che consentono una vasta gamma di applicazioni.
Un passo importante in questa procedura è quello di garantire che i legami disolfuro non sono una conseguenza della procedura di estrazione. Eventuali residui di cisteina liberi possono essere bloccati util…
The authors have nothing to disclose.
Apprezziamo con gratitudine gli sforzi compiuti dalla Dott. ssa Jennifer Fischer per la purificazione dell’anticorpo policlonale dUTPase e Kerri Ciccaglione per tutti i suoi sforzi per aiutare a modificare questo manoscritto. Questa ricerca è stata parzialmente sostenuta da una sovvenzione della New Jersey Health Foundation (Grant #PC 11-18).
16% precast TGX gels | ThermoFisher | Xp00160 | |
175 cm2 Flask | Cell star | 658175 | |
18CO | ATCC | CRL-1459 | |
6 cm2 dish | VWR | 10861-588 | |
A549 | ATCC | CCL-185 | |
Amersham ECL detection kit | GE | 16817200 | |
Blot transfer apparatus | Biorad | 153BR76789 | |
BME | Sigma Aldrich | M3148 | |
Bradford protein reagent | Biorad | 5000006 | |
Bromophenol Blue | |||
BSA | Cell signaling | 99985 | |
Cell lysis buffer | Cell signaling | 9803 | |
Centrifuge | Eppendor | 5415D | |
DMEM | Gibco | 11330-032 | |
Drill | |||
EDTA | Sigma Aldrich | M101 | |
Electrophoresis apparatus | Invitrogen | A25977 | |
Extra thick western blotting paper | ThermoFisher | 88610 | |
Fetal bovine serum | Gibco | 1932693 | |
Formaldehyde | ThermoFisher | 28908 | |
Glass-teflon homogenizer | |||
Glycerol | Sigma Aldrich | 65516 | |
Glycine | RPI | 636050 | |
Heat block | Denville | 10285-D | |
Hepes | Sigma Aldrich | H0527 | |
Hydrochloric acid | VWR | 2018010431 | |
Iodoacetamide | ThermoFisher | 90034 | |
Kimwipe | Kimtech | 34155 | |
Methanol | Pharmco | 339000000 | |
Non-fat dry milk | Cell signaling | 99995 | |
PBS | Sigma Aldrich | P3813 | |
PMSF | Sigma Aldrich | 329-98-6 | |
Posi-click tube | Denville | C2170 | |
Power supply | Biorad | 200120 | |
Prestained marker | ThermoFisher | 26619 | |
PVDF membrane | Biorad | 162-0177 | |
Rocker | Reliable Scientific | 55 | |
Saos2 | ATCC | HTB-85 | |
SDS | Biorad | 161-0302 | |
Secondary antibody | Cell signaling | 70748 | |
Small cell scraper | Tygon | S-50HL class VI | |
Sodium chloride | RPI | S23020 | |
Sodium pyruvate | Gibco | ||
Sonicator | Branson | 450 | |
Sponge pad for blotting | Invitrogen | E19051 | |
Stir plate | Corning | PC353 | |
Sucrose | Sigma Aldrich | S-1888 | |
Tris Base | RPI | T60040 | |
Tris Buffered Saline, with Tween 20, pH 7.5 | Sigma Aldrich | SRE0031 | |
Tris-Glycine running buffer | VWR | J61006 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | T8787 | |
Tween 20 | Sigma Aldrich | P9416 | |
U-2 OS | ATCC | HTB-96 | |
X-ray film | ThermoFisher | 34090 |