ここでは、3Dマトリックスで軸を成長させる行動を分析し、その自然な発達を模倣する方法を提供する。
このプロトコルは、自然なタイプIコラーゲンを使用して、軸生成長を監視および分析するための3次元(3D)ヒドロゲルを生成します。このプロトコルは、ラット尾腱由来I型コラーゲンによって形成された3Dヒドロゲル内の胚または早期産後げっ歯類の脳の小片を特定の多孔性を持つ培養に集中する。組織片はヒドロゲル内で培養され、特定の脳断片または遺伝子組み換え細胞凝集体に直面して、多孔質マトリックス内の勾配を作成するのに適した分子を生成し、分泌する。このプロトコルの手順はシンプルで再現可能ですが、開発中に慎重に検討する重要な手順が含まれています。さらに、成長軸子の挙動は、免疫細胞化学的方法による固定後の位相コントラスト顕微鏡またはモノ/マルチフォトン蛍光顕微鏡を使用して直接監視および分析することができる。
軸次成長コーンで終わる神経軸子は、適切な標的に到達するために、特定の経路上の胚の細胞外マトリックス(ECM)を通して長い距離を移動する。成長コーンは軸の遠位部分であり、細胞1、2の物理的および分子環境を感知することに特化している。分子の観点から、成長コーンは少なくとも4つの異なる分子メカニズムによって導かれる:接触引力、化学的魅力、接触反発、および異なる軸方向ガイダンスキュー3、4によって引き起こされる化学脈動,5,6.接触媒介プロセスは、マイクロパターン基板上の2次元(2D)培養物(例えば、分子を含むストライプ7、8またはスポット9)で部分的に監視することができる。しかし、軸ゴンは、環境4、5、10のガイドポスト細胞からいくつかの魅力的で反発性の分子を感知することによって、非拡散的な方法で標的にナビゲートすることができます。ここでは、分泌分子が軸子の発達に化学的または化学的な効果を誘導するかどうかを確認するための3-D培養の簡単な方法について説明する。
軸次誘導キューの効果を決定することを目的とした最も初期の研究は、生体内条件11,12でシミュレートする勾配を生成するために3次元(3-D)行列に植生培養物を使用した。このアプローチは、生体内実験と共に、ネトリン、スリット、セマフォリン、およびエフリン4、5、6の4つの主要な家族の同定を可能にした。これらの分子キューおよび他の因子13は、成長する軸ソンによって統合され、接着複合体のダイナミクスを引き起こし、細胞骨格14、15、16を介して機械的力を伝達する。軸次ナビゲーションのための3D培養物中の分子勾配を生成するために、先駆的な研究者は、プラズマ血栓基板17を使用し、これはまた、組織性スライス製剤18に使用された。しかし、1958年に、3-Dコラーゲンヒドロゲルを生成する新しいプロトコルは、マキシモ・イズ・デバイス19、培養プラットフォーム、顕微鏡観察20に適したいくつかの研究で使用される研究のために報告された。別の先駆的研究は、創傷治癒プロセス21における筋線維芽細胞の分化を研究するためのヒト線維芽細胞を埋め込むためのツールとしてコラーゲンゲルを報告した。並行して、ラムズデンとデイヴィスはウシ真皮からコラーゲンを適用し、感覚神経線維22の誘導に対する神経成長因子(NGF)のプテプティブ効果を解析した。異なる企業や研究室による新しい培養プラットフォーム(例えば、マルチウェルプレート)の開発に伴い、コラーゲン培養はこれらの新しいデバイス6、23、24、25に適応しました。 、26.並行して、エンゲルブレス-ホルム-スウォーム腫瘍細胞株に由来するECM材料の抽出物は、これらの研究27を拡大するために市販された。
最近では、3Dヒドロゲル(例えば、コラーゲン、フィブリンなど)を用いた軸次ガイダンスにおいて、置き方の役割を有する分子勾配を生成するいくつかのプロトコルが開発されている。28.あるいは、候補分子は、多孔質マトリックス中の異なる濃度(例えば、NGF29)で固定化するか、分子を分泌する3-Dヒドロゲル細胞凝集体の小さな領域で培養することによって生成され、放射状を生成することができる。グラデーション4,23,24,25,26.最後の可能性は、このプロトコルで説明されます。
ここで提示される手順は、胚マウス脳の3-ヒドロゲル培養における軸生成長の分析に基づく、簡単で迅速かつ高い再現性の方法である。他の方法と比較して、プロトコルは、非訓練を受けた研究者に適しており、短いトレーニング(1-2週間)後に完全に開発することができます。このプロトコルでは、まず成ラットの尾からコラーゲンを分離し、遺伝子改変された細胞凝集体が胚性神経組織の前で培養される3Dマトリックスをさらに生成する。これらの細胞凝集体は、成長する軸子に対する応答を引き出す候補分子の放射状化学勾配を形成する。最後に、成長軸石に対する分子の効果の評価は、相コントラスト顕微鏡または、あるいは、あるいは、免疫細胞化学的方法を用いて容易に行うことができる。
アクソンの開発の成長は主に侵襲的であり、ECMの劣化および改造を含む。ここで提示される手順を使用して、研究者は、軸質(または細胞)が生体内で行うように遺伝子組み換え細胞によって分泌される化学勾配に応答することができる天然タイプIコラーゲンによって形成された均質な3Dマトリックスを得ることができます。魅力的または阻害性の手がかり(タンパク質、脂質など)の勾配に対す…
The authors have nothing to disclose.
著者は、編集上のアドバイスのためのトム・ヨハンナンと技術的な援助のためのM.セグラ・フェリウに感謝します。この研究は、CERCAプログラムとイノベーション学科、大学、およびカタルーニャ総局の企業の大学と研究委員会(SGR2017-648)によって資金提供されました。この研究は、BFU2015-67777-RとRTI2018-099773-B-100、スペインプリオンネットワーク(プリオネットスペインAGL2017-90665-REDT)、および研究所カルロIII(CIBERN)を通じてスペインの研究イノベーション大学(MEICO)によって資金提供されました。PRY-2018-2)。
Material | |||
3,3′-Diaminobenzidine tetrahydrochloride 10 mg tablets (DAB) | Sigma | D5905 | |
Adult Sprague-Dawley rats (8 to 9 weeks old) | Criffa-Credo, Lyon, France | ||
Avidin-biotin-peroxidase complex (ABC) | Vector Labs | PK-4000 | |
B27 serum-free supplement 50x | Invitrogen | 17504-044 | |
Bicinchoninic acid (BCA) protein assay kit | Pierce | 23225 | |
cDNA plasmid vectors | |||
COS1 cell lines | ATTC | CRL-1570 | |
D-(+)-Glucose | Sigma | 16325 | |
D-(+)-glucose (45% solution in water) for complete Neurobasal medium | Sigma | G8769 | |
D-MEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium 1x ) for COS1 culture medium | Invitrogen | 41966-029 | |
Dulbecco’s phosphate buffered saline 10x (without Ca2+ and Mg2+) (D-PBS) for cultures | Invitrogen | 14200 | |
Ethanol | merck | 108543 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid dihydrate disodium salt (EDTA) | Sigma | E5134 | |
Fluorescence mounting media (e.g., Fluoromount-G or similar) | Electron Microscopy Sciences (EMS) | 17984-25 | |
Gelatin powder | Sigma | G1890 | |
Glacial acetic acid (Panreac, cat. no. 211008) | Panreac | 211008 | |
Hank’s balanced salt solution | Invitrogen | 24020083 | |
Heat-inactivated foetal bovine serum | Invitrogen | 10108-165 | |
Heat-inactivated horse serum | Invitrogen | 26050-088 | |
Hydrogen peroxide (H2O2, 32 to 33% in water) | Sigma | 316989 | |
L-glutamine 200 mM solution (100x) for complete Neurobasal and COS1 medium | Invitrogen | 25030-024 | |
Lipofectamine 2000 Reagent | Invitrogen | 11668-019 | |
Mice pregnant female (embryonic day 12.5 to 16.5; E12.5-16.5) | Criffa-Credo, Lyon, France | ||
Modified Minimum Essential Medium Eagle (MEM) | Invitrogen | 11012-044 | |
Monoclonal antibody against class III β-tubulin (clone TUJ-1) | Biolegend | 801201 | |
N-2 supplement 100x | Invitrogen | 17502-048 | |
Neurobasal medium | Invitrogen | 21103049 | |
Paraformaldehyde | Merck | 1,040,051,000 | |
Penicillin/streptomycin solution 100x | Invitrogen | 15140-22 | |
Phosphate buffered saline 10x (PBS) for immunocytochemistry | Invitrogen | AM9624 | |
Secondary antibody: biotinylated horse anti-mouse | Vector Labs | BA-2000 | |
Serum-free medium (Opti-MEM) | Invitrogen | 11058-021 | |
Sodium azide | Panreac | 162712 | |
Sodium bicarbonate solution 7.5% | Invitrogen | 25080-094 | |
Sterile culture grade H2O | Sigma | W3500 | |
TritonTM X-100 | Sigma | X100 | |
Trizma base | Sigma | T1503 | |
Trypsin-EDTA (Trypsin (0.05% (wt/vol) with EDTA (1x) | Invitrogen | 25300-054 | |
Equipment | |||
1 large and 1 small curved scissors for dissection | Fine tools Instruments or similar | ||
1.5-ml conical centrifuge tubes | Eppendorf or similar | ||
15-ml conical centrifuge tubes | Corning or similar | ||
2 haemostats | Fine tools Instruments or similar | ||
2 small straight dissecting scissors | Fine tools Instruments or similar | ||
200-ml centrifuge tubes for centrifugation | Nalgene or similar | ||
200-ml sterile glass conical flasks | |||
2-litre glass beaker | |||
4- and 6-well culture plates | Nunc | 176740 and 140675 | |
Automatic pipette pumps and disposable 10 ml and 25 ml filter-containing sterile plastic pipettes. | Gilson, Brand, Eppendorf or similar | ||
Automatic pipettes, sterile filter tips and current sterile tips | Gilson, Eppendorf or similar | ||
Bench top microcentrifuge with angle fixed rotor | Eppendorf, Beckman Coulter or similar | ||
Bench top refrigerated centrifuge with swing-bucket rotor (with 1.5, 15 and 50 ml tube adaptors) | Eppendorf, Beckman Coulter or similar | ||
Cell culture incubator at 37 ºC, 5% CO2 and 95% air | |||
Dialysis tubing cellulose membrane | Sigma | D9402 | |
Dialysis tubing closures | Sigma | Z37101-7 | |
Disposable glass pipettes | |||
Dissecting microscope with dark field optics | Olympus SZ51 or similar | ||
High-speed refrigerated Beckman Coulter centrifuge or similar with angle fixed rotor | |||
Laminar flow hood | |||
Large 100-mm, 60-mm and small 35-mm Ø cell culture dishes | Nunc | 150679 , 150288 and 150318, respectively | |
Magnetic stirrer and magnetic spin bars | IKA or similar | ||
McIlwain tissue chopper | Mickle Laboratory Engineering | ||
One pair of fine straight forceps and one pair of curved forceps | Fine tools Instruments or similar | ||
Razor blades for the tissue chopper | |||
Scalpels (number 15 and 11) | |||
Two pairs of fine spatulas for transferring collagen and tissue pieces | Fine tools Instruments or similar |