Summary

Síntese e caracterização de nanopartículas de silício poroso de Fusogenic para a entrega do Oligonucleotide Functionalization

Published: April 16, 2019
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Summary

Demonstramos a síntese de nanopartículas de silício poroso fusogenic para entrega efectiva do oligonucleotide in vitro e in vivo. Nanopartículas de silício poroso são carregadas com siRNA para formar o núcleo, que é revestido por fusogenic lipídios através da extrusão para formar o reservatório. Direcionamento functionalization moiety e caracterização de partículas estão incluídos.

Abstract

Com o advento da terapia gênica, tornou-se o desenvolvimento de um sistema de entrega eficaz em vivo do nucleotide-carga de importação paralela. Nanopartículas de silício poroso de Fusogenic (F-pSiNPs) recentemente demonstraram alto vivo em eficácia devido a sua alta do oligonucleotide carregar a capacidade e a via de absorção celular exclusivo que evita a endocitose de silenciamento do gene. A síntese de F-pSiNPs é um processo de várias etapa que inclui: (1) carregamento e selagem de payloads do oligonucleotide nos poros do silicone; (2) revestimento simultâneo e dimensionamento de lipídios fusogenic em torno dos núcleos de silício poroso; e (3) conjugação de direcionamento de peptídeos e de lavagem para remover o excesso do oligonucleotide, detritos de silício e peptídeo. Uniformidade de tamanho da partícula é caracterizada pela difusão dinâmica da luz, e sua estrutura casca-núcleo pode ser verificada por microscopia eletrônica de transmissão. A absorção de fusogenic é validada por carregar um lipofílico tingir, 1, 1′-dioctadecyl-3,3, 3′, 3′-tetramethylindocarbocyanine perclorato (DiI), para a fusogenic lipídica e tratá-la às pilhas in vitro para observar para coloração contra a membrana plasmática endocítica localizações. As direcionamento e in vivo eficácias silenciar do gene anteriormente foram quantificadas em um modelo do rato de pneumonia de Staphylococcus aureus , em que o peptídeo alvo é esperado para ajudar o F-pSiNPs a casa para o local da infecção. Além da sua aplicação na infecção por S. aureus , o sistema F-pSiNP pode ser usado para entregar qualquer do oligonucleotide para a terapia de gene de uma vasta gama de doenças, incluindo doenças auto-imunes, câncer e infecções virais.

Introduction

Terapia genética modula a expressão de genes específicos para obter um resultado terapêutico. Inúmeras ferramentas para modulação de genes foram descobertas e estudadas, incluindo ácido ribonucleico interferência (RNAi) usando oligonucleotídeos (por exemplo, curto interferência do RNA (siRNA)1,2, microRNA (miRNA)3,4 ), DNA plasmídeo5,6, nucleases (por exemplo, dedo de zinco, TALENS)7,8e CRISPR/Cas9 sistemas9,10. Enquanto mecanismo de cada ferramenta de ação é diferente, todas as ferramentas devem alcançar o citoplasma da célula ou o núcleo para ser ativo. Como tal, embora estas ferramentas têm comprovado para induzir um efeito significativo na modulação de expressão gênica in vitro, a eficácia in vivo sofre entraves extracelulares e intracelulares. Devido ao fato de que as ferramentas são de origem biológica, muitas enzimas e sistemas de limpeza existem em nosso corpo que têm a capacidade de degradar ou remover as moléculas estrangeiras11. Mesmo no caso que as ferramentas atingem a célula-alvo, eles sofrem de endocitose; um modo de captação celular que encapsula e prende as ferramentas em vesículas ácidas do estômago-como que degradam ou expulsar as ferramentas fora da célula. De fato, estudos têm mostrado que nanopartículas de lipídios são endocytosed através de macropinocitose, da qual cerca de 70% do siRNA são exocytosed das células dentro de 24h de captação12,13. A maior parte do restante siRNA é degradada através da via lisossomal, e em última análise, apenas 1-2% de siRNA que inicialmente entra na célula com as nanopartículas alcançar CDDP fuga potencialmente submeter-se a RNAi13,14 .

Recentemente desenvolvemos a nanopartículas de silício poroso de fusogenic (F-pSiNPs) que têm um núcleo de siRNA-carregado composto de nanopartículas de silício poroso e um fusogenic lipídica shell15. Os F-pSiNPs apresenta três grandes vantagens sobre outros sistemas de entrega convencional do oligonucleotide: (1) um lipídio fusogenic revestimento que permite que as partículas de ignorar a endocitose e entregar a carga inteira diretamente no citoplasma celular (contra o 1-2% alcançado por partículas de endocytosed13,14) (Figura 1); (2) alto carregamento em massa de siRNA no pSiNPs (> 20% em peso em comparação com 1-15% em peso por sistemas convencionais)15, que rapidamente degradar no citoplasma (uma vez que as partículas do núcleo derramou o revestimento lipídico através de captação de fusogenic) para liberar o siRNA; e (3) visando a conjugação de peptídeo para orientação seletiva para desejado tipos de células in vivo.

O sistema F-pSiNP demonstrou silenciamento eficácia significativa do gene (> 95% in-vitro; > 80% in vivo) e o subsequente efeito terapêutico em um modelo de mouse fatal de S. aureus pneumonia; os resultados dos quais foram anteriormente publicados15. No entanto, a estrutura complexa do sistema F-pSiNP requer manipulação delicada e otimização de aperfeiçoá-lo para gerar nanopartículas uniformes e estáveis. Assim, o objetivo deste trabalho é apresentar um protocolo completo, bem como estratégias de otimização para a síntese, functionalization e caracterização de F-pSiNPs para ser usado no alvo entrega de siRNAs para efeito silencioso potente gene.

Protocol

1. síntese de nanopartículas de silício poroso (pSINPs) Cuidado: Sempre tenha cuidado ao trabalhar com ácido fluorídrico (HF). Siga todas as guias de segurança, de acordo com sua ficha de dados de segurança (SDS), lidar com quaisquer produtos químicos que contenham HF em uma coifa e usar equipamento de protecção adequado (EPI; luvas duplas com luvas de butilo do lado de fora, butil avental com jaleco e por baixo, rosto proteger com óculos de segurança por baixo). Todas as universidad…

Representative Results

Uma síntese bem sucedida de fusogenic pSiNPs deve produzir uma solução homogênea, ligeiramente opaca (Figura 3a). Falha para otimizar a relação e a concentração de pSiNPs: siRNA: CaCl2 pode levar a agregação durante o carregamento (Figura 3b). Como as partículas são extrudadas através de membranas de 200 nm, o diâmetro médio hidrodinâmico da pSiNPs de fusogenic medidos por DLS deve ser aproximadamente 2…

Discussion

Síntese de nanopartículas de silício poroso é mostrado na Figura 5. O passo fundamental na síntese de fusogenic pSiNPs está na etapa de carregamento (etapa 3). Se as nanopartículas fusogenic são agregar pós-síntese (Figura 3), o motivo pode ser devido ao seguinte: (1) estoque de cloreto de cálcio não foi homogênea preparado, assim passo 3.1.2 deve ser cuidadosamente seguido ou refinado; ou (2) a relação de pSiNP: siRNA: CaCl2 ou a conce…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho é apoiado pelo National Institutes of Health, através de contrato # R01 AI132413-01.

Materials

1,2-dimyristoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DMPC) Avanti Polar Lipids 850345P Powder
1,2-dioleoyl-3-trimethylammonium-propane (chloride salt) (DOTAP) Avanti Polar Lipids 890890P Powder
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[maleimide(polyethylene glycol)-2000] (ammonium salt) (DSPE-PEG(2000) Maleimide) Avanti Polar Lipids 880126P Powder
Aluminum foil VWR International, LLC 12175-001
Calcium chloride (CaCl2) Spectrum C1977 Anhydrous, Pellets
Chloroform Fisher Scientific C6061
Computer Dell Dimension 9200 Any computer with PCI card slot is acceptable
Dil Stain (1,1'-Dioctadecyl-3,3,3',3'-Tetramethylindocarbocyanine Perchlorate ('DiI'; DiIC18(3))) Life Technologies D3911
Ethanol (EtOH) UCSD Store 111 200 Proof
Hydrofluric acid (HF) VWR International, LLC MK264008  Purity: 48%
Keithley 2651a Sourcemeter Keithley 2651A
LabVIEW National Instruments Sample program available at: http://sailorgroup.ucsd.edu/sofware/
LysoTracker Green DND-26 Thermo Fisher Scientific L7526
Liposome extrusion set with heating block Avanti Polar Lipids 610000
Microcon-30kDa Centrifugal Filter Unit EMD Millipore MRCF0R030
O-ring ChemGlass CG-305-220
Phosphate-buffered saline (PBS) Thermo Fisher Scientific 10010-049
Platinum coil VWR International, LLC AA10285-BU
Potassium hydroxide (KOH) Fisher Scientific P250-3
Silicon wafer Siltronix Custom order
siRNA Dharmacon Custom order IRF5, sense 5’-dTdT-CUG CAG AGA AUA ACC CUG A-dTdT-3’ and antisense 5’-dTdT UCA GGG UUA UUC UCU GCA G dTdT-3’
Sonicator VWR International, LLC 97043-960
Targeting peptide (CRV) CPC Scientific Custom order sequence CRVLRSGSC; made cyclic by a disulfide bond between the side chains of the two cysteine residues
Teflon etch cell Interface Performance Materials, Inc. Custom order
UltraPure DNase/RNase-Free Distilled Water  Thermo Fisher Scientific 10977015

References

  1. Ryther, R. C. C., Flynt, A. S., Phillips Iii, J. A., Patton, J. G. siRNA therapeutics: big potential from small RNAs. Gene Therapy. 12, 5 (2004).
  2. Scherman, D., Rousseau, A., Bigey, P., Escriou, V. Genetic pharmacology: progresses in siRNA delivery and therapeutic applications. Gene Therapy. 24, 151 (2017).
  3. Broderick, J. A., Zamore, P. D. MicroRNA therapeutics. Gene Therapy. 18, 1104 (2011).
  4. Geisler, A., Fechner, H. MicroRNA-regulated viral vectors for gene therapy. World Journal of Experimental Medicine. 6 (2), 37-54 (2016).
  5. Williams, P. D., Kingston, P. A. Plasmid-mediated gene therapy for cardiovascular disease. Cardiovascular Research. 91 (4), 565-576 (2011).
  6. Ferreira, G. N. M., Monteiro, G. A., Prazeres, D. M. F., Cabral, J. M. S. Downstream processing of plasmid DNA for gene therapy and DNA vaccine applications. Trends in Biotechnology. 18 (9), 380-388 (2000).
  7. Shim, G., et al. Therapeutic gene editing: delivery and regulatory perspectives. Acta Pharmacologica Sinica. 38, 738 (2017).
  8. Carlson, D. F., Fahrenkrug, S. C., Hackett, P. B. Targeting DNA With Fingers and TALENs. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 1, (2012).
  9. Dai, W. -. J., et al. CRISPR-Cas9 for in vivo Gene Therapy: Promise and Hurdles. Molecular Therapy – Nucleic Acids. 5, e349 (2016).
  10. Adli, M. The CRISPR tool kit for genome editing and beyond. Nature Communications. 9 (1), 1911 (2018).
  11. Houseley, J., Tollervey, D. The Many Pathways of RNA Degradation. Cell. 136 (4), 763-776 (2009).
  12. Sahay, G., et al. Efficiency of siRNA delivery by lipid nanoparticles is limited by endocytic recycling. Nature Biotechnology. 31 (7), 653-658 (2013).
  13. Wang, Y., Huang, L. A window onto siRNA delivery. Nature Biotechnology. 31 (7), 611-612 (2013).
  14. Gilleron, J., et al. Image-based analysis of lipid nanoparticle-mediated siRNA delivery, intracellular trafficking and endosomal escape. Nature Biotechnology. 31 (7), 638-646 (2013).
  15. Kim, B., et al. Immunogene therapy with fusogenic nanoparticles modulates macrophage response to Staphylococcus aureus. Nature Communications. 9 (1), 1969 (2018).
  16. Zhang, X., et al. Targeted Disruption of G<sub>0</sub>/G<sub>1</sub> Switch Gene 2 Enhances Adipose Lipolysis, Alters Hepatic Energy Balance, and Alleviates High-Fat Diet–Induced Liver Steatosis. Diabetes. 63 (3), 934-946 (2014).
  17. Schlosser, K., Taha, M., Deng, Y., Stewart, D. J. Systemic delivery of MicroRNA mimics with polyethylenimine elevates pulmonary microRNA levels, but lacks pulmonary selectivity. Pulmonary Circulation. 8 (1), 2045893217750613 (2018).
  18. Komarov, A. P., et al. Functional genetics-directed identification of novel pharmacological inhibitors of FAS- and TNF-dependent apoptosis that protect mice from acute liver failure. Cell Death & Disease. 7, e2145 (2016).

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Cite This Article
Kim, B., Sailor, M. J. Synthesis, Functionalization, and Characterization of Fusogenic Porous Silicon Nanoparticles for Oligonucleotide Delivery. J. Vis. Exp. (146), e59440, doi:10.3791/59440 (2019).

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