Summary

Estudando estresse oxidativo causado pelo estreptococos grupo Mitis em Caenorhabditis elegans

Published: March 23, 2019
doi:

Summary

O nemátodo Caenorhabditis elegans é um excelente modelo para dissecar as interações patógeno-hospedeiro. Aqui descrito é um protocolo para infectar o verme com membros dos estreptococos do grupo mitis e determinar a ativação da resposta stress oxidativo contra H2O2 , produzido por este grupo de organismos.

Abstract

Caenorhabditis elegans (c. elegans), um nematódeo de vida livre, tem emergido como um modelo atraente para estudar interações patógeno-hospedeiro. O protocolo apresentado usa esse modelo para determinar a patogenicidade causada por estreptococos de grupo o mitis através da produção de H2O2. Os estreptococos do grupo mitis são uma ameaça emergente que causam muitas doenças humanas tais como bacteremia, endocardite e celulite orbital. Aqui descrito é um protocolo para determinar a sobrevivência destes vermes em resposta a H2O2 produzido por este grupo de patógenos. Usando a codificação de skn-1 gene para um fator de transcrição de resposta de estresse oxidativo, é mostrado que este modelo é importante para a identificação de genes do hospedeiro que são essenciais contra a infecção estreptocócica. Além disso, é mostrado que a ativação da resposta ao estresse oxidativo pode ser monitorada na presença desses patógenos utilizando uma cepa de worm repórter transgénicas, no qual SKN-1 é fundido a proteína verde fluorescente (GFP). Estes ensaios fornecem a oportunidade de estudar a resposta de estresse oxidativo de H2O2 , derivada de uma fonte biológica, ao contrário de forma exógena adicionado fontes de (ROS) de espécies reactivas de oxigénio.

Introduction

Estreptococos do grupo mitis são humanos comensais da cavidade orofaríngea1. No entanto, estes organismos podem escapar deste nicho e causar uma variedade de doenças invasivas2. As infecções causadas por esses microorganismos incluem a bacteremia, endocardite e celulite orbital de2,3,4,5,6. Além disso, eles estão surgindo agentes como causadores de infecções da corrente sanguínea em imunocomprometidos, intermitente e pacientes com câncer submetidos a quimioterapia5,7,8,9 .

Os mecanismos subjacentes mitis patogênese de grupo é obscura, porque foram identificados alguns factores de virulência. O grupo mitis é conhecido por produzir H2O2, que tem se mostrado um importante papel em comunidades microbianas oral10. Mais recentemente, vários estudos têm destacado um papel para H2O2 como um cytotoxin que induz a célula epitelial morte11,12. Pneumonia de S., que pertence a este grupo, foi mostrado para produzir altos níveis de H2O2 , que induz os danos do DNA e apoptose em células alveolar13. Usando um modelo animal de pneumonia aguda, os mesmos pesquisadores demonstraram que a produção de H2O2 pela bactéria confere uma vantagem de virulência. Estudos sobre meningite pneumocócica também têm demonstrado que patógeno-derivado H2O2 atua em sinergia com pneumolysin para acionar a célula neuronal morte14. Estas observações estabelecem claramente que H2O2 produzido por este grupo de bactérias é importante para sua patogenicidade.

Curiosamente, ele também foi mostrado que os membros da mitis grupo S. mitis e s. oral provoca a morte do nemátodo c. elegans através da produção de H2O215,16. Este nematódeo de vida livre tem sido usado como um modelo simples, geneticamente tractable estudar muitos processos biológicos. Mais recentemente, o worm tem emergido como um modelo para o estudo de17,de interações patógeno-hospedeiro18. Além disso, diversos estudos evidenciaram a importância de se estudar o estresse oxidativo usando este organismo19,20,21. Seu ciclo de vida curto, a capacidade de “knockdown” genes de interesse por RNAi e uso de proteína fluorescente verde (GFP)-fundidos repórteres para monitorar a expressão do gene são alguns dos atributos que o tornam um sistema modelo atraente. Mais importante, as vias que regulam o estresse oxidativo e imunidade inata no worm são altamente conservadas com mamíferos20,22.

Neste protocolo, que é demonstrado como usar c. elegans para elucidar a patogenia causada por estreptococos-derivado H2O2. Um ensaio de sobrevivência modificada é mostrado, e membros do grupo mitis são capazes de matar os vermes rapidamente através da produção de H2O2. Usando os membros do grupo mitis, uma fonte biológica sustentado de espécies reativas de oxigênio (ROS) é fornecido, ao contrário de fontes químicas que induzem o stress oxidativo nos vermes. Além disso, as bactérias são capazes de colonizar as minhocas rapidamente, que permite a H2O2 ser direcionados diretamente para as células intestinais (em comparação com outras fontes que têm de atravessar várias barreiras). O ensaio é validado ou 1) por determinar a sobrevivência da estirpe mutante skn-1 ou 2) por derrubando skn-1 usando RNAi em worms em relação a N2 selvagem-tipo e vermes Tratado de controle de vetor. SKN-1 é um fator de transcrição importante que regula a resposta de estresse oxidativo em c. elegans23,24,25. Além de ensaios de sobrevivência, uma estirpe de worm expressando um repórter transgénico SKN-1B/C::GFP é usada para monitorar a ativação da estresse oxidativo resposta através da produção de H2O2 pelo grupo mitis.

Protocol

1. preparação do vossos placas de ágar (extrato de levedura de Todd-Hewitt) Para 1 litro de mídia, adicione 30 g de pó de Todd-Hewitt, 2 g de extrato de levedura e 20 g de ágar para um Erlenmeyer de 2 L. Adicionar 970 mL de água desionizada para o conteúdo do frasco e incluir uma barra de agitação. Autoclave a mídia a uma temperatura de 121 ° C e pressão de 15 lb/pol2 por 30 min. Depois disso, definir os meios de comunicação em uma placa de agitação e permitir para resfriamento com a…

Representative Results

Membros do mitis grupo S. mitis, S. oral e S. gordonii rapidamente mataram os vermes, ao contrário de S. mutans, S. salivarius e não-patogênicas de Escherichia coli OP50(Figura 3). A sobrevida mediana para S. mitis, S. oral e S. gordonii foi 300 min, 300 min e min 345, respectivamente. Para determinar se a matança foi mediada por H2O2, c…

Discussion

Os métodos descritos podem ser usados para outras bactérias patogénicas como Enterococcus faecium, que também produz H2O2 crescidas sob anaeróbio ou microaerofílicas condições26. Normalmente, para os organismos patogénicos mais, demora vários dias a semanas para completar os ensaios de sobrevivência. No entanto, devido à produção de robusta de H2O2 por membros do grupo mitis, estes ensaios podem ser concluídos no prazo de 5-6 h, n…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos o Dr. Wang Bing-Yan, Dr. Gena Tribble (da Universidade do Texas, faculdade de Odontologia), Dr. Richard Lamont (Universidade de Louisville, faculdade de Odontologia) e Dr. Samuel Shelburne (MD Anderson Cancer Center) para fornecer o laboratório e estirpes clínicas de Os estreptococos do grupo mitis. Agradecemos também o Dr. Keith Blackwell (departamento de genética, faculdade de medicina de Harvard) para as cepas de c. elegans . Finalmente, agradecemos a Dr. Danielle Garsin e laboratório dela (da Universidade do Texas, faculdade de medicina de McGovern) para fornecimento de reagentes e cepas de worm para conduzir o estudo. Algumas cepas de vírus foram fornecidas pelo CGC, que é financiado pelo NIH escritório de programas de infra-estrutura de pesquisa (OD010440 P40).

Materials

Media and chemicals
Agarose  Sigma Aldrich A9539-50G
Bacto peptone  Fisher Scientific DF0118-17-0
BD Bacto Todd Hewitt Broth Fisher Scientific DF0492-17-6
BD BBL Sheep Blood, Defibrinated   Fisher Scientific B11947
BD Difco Agar  Fisher Scientific DF0145-17-0
BD Difco LB Broth Fisher Scientific DF0446-17-3
Blood agar (TSA with Sheep Blood) Fisher Scientific R01200
Calcium Chloride Fisher Scientific BP510-500
Carbenicillin Fisher Scientific BP26481
Catalase  Sigma Aldrich C1345-1G
Cholesterol Fisher Scientific ICN10138201
IPTG Fisher Scientific MP21021012
Magnesium sulfate Fisher Scientific BP213-1
Nystatin Acros organics AC455500050
Potassium Phosphate Dibasic Fisher Scientific BP363-500
Potassium phosphate monobasic Fisher Scientific BP362-500
Sodium Azide Sigma Aldrich S2002-25G
Sodium chloride  Fisher Scientific BP358-1
Sodium Hydroxide Fisher Scientific SS266-1
8.25% Sodium Hypochlorite
Sodium Phosphate Dibasic  Fisher Scientific BP332-500
Streptomycin Sulfate  Fisher Scientific BP910-50
Tetracyclin Sigma Aldrich 87128-25G
(−)-Tetramisole hydrochloride Sigma Aldrich L9756
Yeast extract Fisher Scientific BP1422-500 
Consumables 
15mL Conical Sterile Polypropylene Centrifuge Tubes  Fisher Scientific 12-565-269
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 10mL Fisher Scientific 07-200-574
Disposable Polystyrene Serological Pipettes 25mL Fisher Scientific 07-200-575
Falcon Bacteriological Petri Dishes with Lid (35 x 10 mm) Fisher Scientific 08-757-100A
No. 1.5  18 mm X 18 mm Cover Slips Fisher Scientific 12-541A
Petri Dish with Clear Lid (60 x 15 mm) Fisher Scientific FB0875713A
Petri Dishes with Clear Lid (100X15mm) Fisher Scientific FB0875712
Plain Glass Microscope Slides (75 x 25 mm) Fisher Scientific 12-544-4
Software 
Prism Graphpad
Bacterial Strains
S. oralis ATCC 35037
S. mitis ATCC 49456
S. gordonii DL1 Challis  
E. coli OP50
E. coli HT115
Worm Strains
Strain Genotype Transgene Source
N2 C. elegans wild isolate CGC
EU1 skn-1(zu67) IV/nT1 [unc-?(n754) let-?] (IV;V) CGC
LD002 IdIs1 SKN-1B/C::GFP + rol-6(su1006) Keith Blackwell

References

  1. Human Microbiome Project, C. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome. Nature. 486 (7402), 207-214 (2012).
  2. Mitchell, J. Streptococcus mitis: walking the line between commensalism and pathogenesis. Molecular Oral Microbiology. 26 (2), 89-98 (2011).
  3. Dyson, C., Barnes, R. A., Harrison, G. A. Infective endocarditis: an epidemiological review of 128 episodes. Journal of Infection. 38 (2), 87-93 (1999).
  4. Sahasrabhojane, P., et al. Species-level assessment of the molecular basis of fluoroquinolone resistance among viridans group streptococci causing bacteraemia in cancer patients. International Journal of Antimicrobial Agents. 43 (6), 558-562 (2014).
  5. Shelburne, S. A., et al. Streptococcus mitis strains causing severe clinical disease in cancer patients. Emerging Infectious Diseases. 20 (5), 762-771 (2014).
  6. van der Meer, J. T., et al. Distribution, antibiotic susceptibility and tolerance of bacterial isolates in culture-positive cases of endocarditis in The Netherlands. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 10 (9), 728-734 (1991).
  7. Han, X. Y., Kamana, M., Rolston, K. V. Viridans streptococci isolated by culture from blood of cancer patients: clinical and microbiologic analysis of 50 cases. Journal of Clinical Microbiology. 44 (1), 160-165 (2006).
  8. Hoshino, T., Fujiwara, T., Kilian, M. Use of phylogenetic and phenotypic analyses to identify nonhemolytic streptococci isolated from bacteremic patients. Journal of Clinical Microbiology. 43 (12), 6073-6085 (2005).
  9. Kohno, K., et al. Infectious complications in patients receiving autologous CD34-selected hematopoietic stem cell transplantation for severe autoimmune diseases. Transplant Infectious Disease. 11 (4), 318-323 (2009).
  10. Zhu, L., Kreth, J. The role of hydrogen peroxide in environmental adaptation of oral microbial communities. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 717843 (2012).
  11. Okahashi, N., et al. Hydrogen peroxide contributes to the epithelial cell death induced by the oral mitis group of streptococci. PLoS One. 9 (1), 88136 (2014).
  12. Stinson, M. W., Alder, S., Kumar, S. Invasion and killing of human endothelial cells by viridans group streptococci. Infection and Immunity. 71 (5), 2365-2372 (2003).
  13. Rai, P., et al. Streptococcus pneumoniae secretes hydrogen peroxide leading to DNA damage and apoptosis in lung cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (26), 3421-3430 (2015).
  14. Braun, J. S., et al. Pneumococcal pneumolysin and H(2)O(2) mediate brain cell apoptosis during meningitis. Journal of Clinical Investigation. 109 (2), 19-27 (2002).
  15. Naji, A., et al. The activation of the oxidative stress response transcription factor SKN-1 in Caenorhabditis elegans by mitis group streptococci. PLoS One. 13 (8), 0202233 (2018).
  16. Bolm, M., Jansen, W. T., Schnabel, R., Chhatwal, G. S. Hydrogen peroxide-mediated killing of Caenorhabditis elegans: a common feature of different streptococcal species. Infection and Immunity. 72 (2), 1192-1194 (2004).
  17. Sifri, C. D., Begun, J., Ausubel, F. M. The worm has turned–microbial virulence modeled in Caenorhabditis elegans. Trends in Microbiology. 13 (3), 119-127 (2005).
  18. Irazoqui, J. E., Ausubel, F. M. 99th Dahlem conference on infection, inflammation and chronic inflammatory disorders: Caenorhabditis elegans as a model to study tissues involved in host immunity and microbial pathogenesis. Clinical & Experimental Immunology. 160 (1), 48-57 (2010).
  19. Van Raamsdonk, J. M., Hekimi, S. Reactive Oxygen Species and Aging in Caenorhabditis elegans: Causal or Casual Relationship. Antioxidants & Redox Signaling. 13 (12), 1911-1953 (2010).
  20. Tissenbaum, H. A. Using C. elegans for aging research. Invertebrate Reproduction & Development. 59, 59-63 (2015).
  21. Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology & Medicine. 88, 290-301 (2015).
  22. Irazoqui, J. E., Urbach, J. M., Ausubel, F. M. Evolution of host innate defence: insights from Caenorhabditis elegans and primitive invertebrates. Nature Reviews Immunology. 10 (1), 47-58 (2010).
  23. Park, S. K., Tedesco, P. M., Johnson, T. E. Oxidative stress and longevity in Caenorhabditis elegans as mediated by SKN-1. Aging Cell. 8 (3), 258-269 (2009).
  24. An, J. H., et al. Regulation of the Caenorhabditis elegans oxidative stress defense protein SKN-1 by glycogen synthase kinase-3. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (45), 16275-16280 (2005).
  25. An, J. H., Blackwell, T. K. SKN-1 links C. elegans mesendodermal specification to a conserved oxidative stress response. Genes & Development. 17 (15), 1882-1893 (2003).
  26. Moy, T. I., Mylonakis, E., Calderwood, S. B., Ausubel, F. M. Cytotoxicity of hydrogen peroxide produced by Enterococcus faecium. Infection and Immunity. 72 (8), 4512-4520 (2004).
  27. Pincus, Z., Mazer, T. C., Slack, F. J. Autofluorescence as a measure of senescence in C. elegans: look to red, not blue or green. Aging (Albany NY). 8 (5), 889-898 (2016).
  28. Teuscher, A. C., Ewald, C. Y. Overcoming Autofluorescence to Assess GFP Expression During Normal Physiology and Aging in Caenorhabditis elegans. Bio-protocol. 8 (14), (2018).

Play Video

Cite This Article
Naji, A., Al Hatem, A., van der Hoeven, R. Studying Oxidative Stress Caused by the Mitis Group Streptococci in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (145), e59301, doi:10.3791/59301 (2019).

View Video