Summary

Метод подготовки образцов сканирующего и трансмиссионного электронного микроскопа для придатков woodboring Beetle

Published: February 03, 2020
doi:

Summary

Для наблюдения за ультраструктурой сенсильи насекомых в исследовании были представлены протокол подготовки образцов сканирующего и трансмиссионной электронной микроскопии (SEM и TEM, соответственно). Tween 20 был добавлен в фиксатор, чтобы избежать деформации образца в SEM. Флуоресценция микроскопия была полезна для повышения точности нарезки в TEM.

Abstract

В этом докладе описаны методы подготовки образцов, которые сканируют и передают электронный микроскоп наблюдений, продемонстрировали путем подготовки придатков древесного жука, Chlorophorus caragana Xie и Wang (2012), для обоих типов электронной микроскопии. Протокол подготовки сканирующего электронной микроскопии (SEM) был основан на химической фиксации образцов, обезвоживании в серии этаноловых ванн, сушке и распылении покрытия. Добавляя Tween 20 (Polyoxyethylene sorbitan laurate) в фиксатор и раствор для мытья, поверхность тела насекомого древесного жука промывают более чисто в SEM. Препарат образца электронной микроскопии передачи этого исследования (TEM) включал в себя ряд шагов, включая фиксацию, обезвоживание этанола, встраивание в мелину, позиционирование с помощью флуоресцентной микроскопии, секционирование и окрашивание. Фиксациациация с Tween 20 включена проникнуть в стену тела насекомых древесного жука легче, чем это было бы без Tween 20, и впоследствии лучше фиксированной ткани и органы в организме, таким образом, дали четкую передачу электронного микроскопа наблюдения насекомых sensilla ультраструктур. Следующим шагом этого препарата было определение положения сенсиллы насекомых в образце, встроенном в блок есинов с помощью флуоресценционной микроскопии для повышения точности позиционирования сенсилки цели. Это улучшило точность нарезки.

Introduction

Сканирование электронной микроскопии является важным инструментом во многих исследованиях морфологии, что SEM показывает поверхностные структуры1,2. Привлекательность электронной микроскопии передачи является то, что она может быть использована для изучения широкого спектра биологических структур в нанометровом масштабе, от архитектуры клеток и ультраструктуры органелл до структуры макромолекулярных комплексов и белков. TEM показывает внутренние структуры3,4,5.

Колеоптера является самой большой группой насекомых, в том числе около 182 семейств и 350 000 видов. Большинство кооптеранских насекомых, в частности жуков- древесных пород, питаются растениями, многие из которых являются важными вредителями лесов и фруктовых деревьев, нанося разрушительный ущерб деревьям6. В настоящее время все большее внимание уделяется профилактикеи борьбе с популяцией вредителей на основе теории химической экологии. Эффективные, низкотоксичные, без загрязнения методы борьбы с феромонами стали эффективным способом8. Изучение сенсиллы морфологии и ультраструктуры насекомых является важной частью исследований в области химической экологии насекомых. Сканирующая и трансмиссионная электронная микроскопия (SEM и TEM, соответственно) используется для изучения их морфологии и внутренней анатомии. Однако при подготовке образцов насекомых к электронной микроскопии (ЭМ) на объективность и подлинность места наблюдения может повлиять9. В целом, SEM подготовки образцов насекомых требует очистки, фиксации тканей, обезвоживание, метатез, сушка, и распыление покрытие10. Из-за сложной среды, в которой живут древесные жуки, поверхность тела часто имеет различные загрязняющие вещества и их придатки часто имеют много штрафа долго сенсиллы или щетины. В частности, некоторые древесные бороды не доступны из лабораторных повышения, которые собираются непосредственно в поле, а затем положить в фиксирующую жидкость для обеспечения свежести и впоследствии мыть в лаборатории. Если образец сначала фиксируется, а затем промывается, очевидно, что гораздо труднее удалить мусор, потому что глютаральдегид сильно фиксирует его в образец. Tween 20 является сурфактант11,12,13,14, который играет важную роль в процессе стирки, в том числе снижение поверхностного натяжения воды и улучшения влажности воды на поверхности прачечной. В этом исследовании, Tween 20 был добавлен в решение фиксации и PBS очистки решение для уменьшения поверхностного натяжения жидкости, и предотвратить грязь от отложений на поверхности тела древесного жука, который сделал поверхность тела чище в SEM.

Используя TEM, сенсилла на различных органах насекомых может быть нарезана, чтобы выявить четкие структуры внутри них, тем самым обеспечивая основу для анализа функций сенсиллы. Когда субъект насекомого, таких как древесный жук, большой, и его стенка тела имеет значительную степень склеротизации, так что фиксатор не может полностью насытить ткани органа внутри тела насекомого. Tween 20 может повысить дисперсию и способность подвески грязи. В этом исследовании, Tween 20 был добавлен в фиксатор для повышения фиксации проникновения жидкости в стену тела насекомых древесного жука, избегая деформации и коллапса эпидермии11,12,13. Кроме того, используя технологию общей нарезки, трудно точно найти различные типы сенсиллы, в частности для некоторых небольших sensilla15. На основе традиционной подготовки образца TEM, это исследование объединило флуоресценцию микроскопии и SEM, чтобы определить положение насекомых сенсиллы во встроенном блоке, тем самым повышая точность нарезки.

Protocol

ВНИМАНИЕ: Проконсультируйтесь с листами данных о безопасности материалов реагентов перед их использованием. Некоторые из химических веществ, используемых при подготовке образцов, являются токсичными, мутагенными, канцерогенными и/или репротоксическими. Используйте индивидуальное з…

Representative Results

Использование очистки и фиксаторного решения с Tween 20, чище SEM изображение наблюдалось, чем без Tween 20(Рисунок 3). Прим. 20 крепячий раствор проник в глютаральдегид, фиксируя раствор в ткани. Микротрубная структура была хорошо видна. TEM изображение внутренней…

Discussion

В этой статье мы представили схему подготовки образцов для сканирования и передачи электронной микроскопии для древесного жука. Используя придаток насекомых в качестве репрезентативного предмета исследования, мы продемонстрировали несколько улучшений по сравнению с традиционными ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы высоко ценим щедрую помощь Пекинского профессионального колледжа сельского хозяйства, Института применения атомной энергии (Китайская академия сельскохозяйственных наук), Биоисследовательского центра Пекинского лесного университета и профессора Шань-гана Чжан из Института зоологии Китайской академии наук. Это исследование было поддержано Национальной программой исследований и разработок Китая (2017YFD0600103), Национальным фондом естественных наук Китая (Грант No 315706443, 81774015), Лесными научными исследованиями в области общественного благосостояния Китая (201504304), Внутренней Монголии Сельскохозяйственный университет высокого уровня таланта научно-исследовательский план стартапа (203206038), и Внутренняя Монголия автономного региона высшего образования научно-исследовательский проект (NJ ‘18047), Внутренняя Монголия автономного района Linxue “Двойной первого класса” Строительный проект (170001).

Materials

Anatomical lens Chongqing Auto Optical
limited liability company
1425277
Carbon adhesive tape SPI Supplies, Division of Structure Probes, Inc. 7311
Carbon tetrachloride Sigma 56-23-5
Copper grids GilderGrids G300
Disodium hydrogen phosphate Sinopharm group chemical reagent co., LTD 10039-32-4
Ethanol J.T. Baker 64-17-5
Flat embedding molds Hyde Venture (Beijing) Biotechnology Co., Ltd. 70900
Fluorescence microscope LEICA DM2500
Glutaraldehyde Sigma-Aldrich 111-30-8 Anhydrous EM Grade
Isophorone Sigma 78-59-1
Lead citrate Sigma 512-26-5
Methanol Sigma 67-56-1
Monobasic sodium phosphate Its group chemical reagent co., LTD 7558-80-7
Objective micrometer Olympus 0-001-034
Osmium tetroxide Sigma 541-09-3
Petri dish Aldrich 1998
Razor blade Gillette
Resin Spurr ERL4221
Scalpel Lianhui GB/T19001-2008
SEM Hitachi S-3400
Silica gel desiccant Suzhou Longhui Desiccant Co., Ltd. 112926-00-8
Small brush Martol G1220
Sodium hydroxide Sigma 1310-73-2
Sputter ion instrument Hitachi Koki Co. Ltd., Tokyo, Japan E-1010
Stereo microscope Leica EZ4 HD
TEM Hitachi H-7500
Tween 20 Tianjin Damao Chemical Reagent 9005-64-5
Ultramicrotome Leica UC6
Ultrasonic cleaner GT Sonic GT-X1
Uranyl acetate Sigma 6159-44-0

References

  1. Song, Y. Q., Dong, J. F., Sun, H. Z. Scanning Electron Microscope Technology of Insect Material. Hubei Agricultural Sciences. 52, 1064-1065 (2013).
  2. Liu, C. The development of the scanning electron microscopy (sem) and its application in polymer materials research. Journal of the Graduates Sun Yat-Sen University (Natural Sciences Medicine). 34, 7-12 (2008).
  3. Gan, L., Jensen, G. J. Electron tomography of cells. Quarterly Reviews of Biophysics. 45, 27-56 (2011).
  4. Lucic, V., Rigort, A., Baumeister, W. Cryo-electron tomography: the challenge of doing structural biology in situ. The Journal of Cell Biology. 202, 407-419 (2013).
  5. Trepout, S., Bastin, P., Marco, S. Preparation and Observation of Thick Biological Samples by Scanning Transmission Electron Tomography. Journal of Visualized Experiments. (121), e55215 (2017).
  6. Zhang, X. J., Sun, W., Zhang, J., Zuo, T. T., Wang, Z. Q., Zhao, H. W. Research progress of coleopteran insect species antennal sensilla. Journal of Anhui Agricultural Sciences. 41, 2932-2935 (2013).
  7. Aldrich, J. R., Bartelt, R. J., Dickens, J. C., Knight, A. L., Light, D. M., Tumlinson, J. H. Insect chemical ecology research in the United States Department of Agriculture-Agricultural Research Service. Pest Management Science. 59, 777-787 (2003).
  8. Thomas, C. B., Marlin, E. R. Pheromone mating disruption: Novel, non-toxic control of the European corn borer. Leopold Center. 8, 57-60 (1999).
  9. Chen, X. F., Hu, M. Y. Studies on the specimen preparation techniques of scanning electron microscope of Ficus simplicissima Lour. Journal of Zhongkai Agrotechnical College. 14, 68-70 (2001).
  10. Zhou, W., Apkarian, R., Wang, Z. L., Joy, D. Fundamentals of Scanning Electron Microscopy (SEM). Scanning Microscopy for Nanotechnology. , 1-40 (2006).
  11. Kothekar, S. C., Ware, A. M., Waghmare, J. T., Momin, S. A. Comparative Analysis of the Properties of Tween-20, Tween-60, Tween-80, Arlacel-60, and Arlacel-80. Journal of Dispersion Science and Technology. 28, 477-484 (2007).
  12. Chai, J. L., Liu, N., Bai, T. T., Zhang, H. M., Liu, N. N., Wang, D. D. Compositions and Physicochemical Properties of Tween Type Surfactants-Based Microemulsions. Journal of Dispersion Science and Technology. 35, 441-447 (2014).
  13. Zhang, L. D., Zhao, L., Han, F., Xu, B. C. Performance and applications of surfactants (XV) Detergency of surfactants and its applications. China Surfactant Detergent and Cosmetics. 45, 132-137 (2015).
  14. Waghmare, P. R., Das, S., Mitra, S. K. Under-water superoleophobic glass: unexplored role of the surfactant-rich solvent. Scientific Reports. 3, 1-25 (2013).
  15. Zhang, Y. R., Ren, L. L., Luo, Y. Q. Microtomy of insect sensilla embedded in resin blocks for transmission electronic microscopy. Chinese Journal of Applied Entomology. 50, 1479-1483 (2013).
  16. Zong, S. X., Liu, X. H., Cao, C. J., Luo, Y. Q., Ren, L. L., Zhang, H. Development of semiochemical attractants for monitoring and controlling Chlorophorus caragana. Zeitschrift für Naturforschung. 68, 243-252 (2013).
  17. Sumner, M. J. Epoxy resins for light and transmission electron microscopy. Plant Microtechniques and Protocols. , 83-101 (2015).
  18. Schneider, D. Insect antennae. Annual Review of Entomology. 9, 103-122 (1964).
  19. Zacharuk, R. Antennae and sensilla. Comprehensive Insect Physiology, Biochemistry and Pharmacology. 6, 1-69 (1985).
  20. Zacharuk, R., Albert, P., Bellamy, F. Ultrastructure and function of digitiform sensilla on the labial palp of a larval elaterid (Coleoptera). Canadian Journal of Zoology. 55, 569-578 (1977).
  21. Shanbhag, S., Müller, B., Steinbrecht, R. Atlas of olfactory organs of Drosophila melanogaster: 1, Types, external organization, innervation and distribution of olfactory sensilla. International Journal of Insect Morphology and Embryology. 28, 377-397 (1999).
  22. Tarumingkeng, R. C., Coppel, H. C., Matsumura, F. Morphology and ultrastructure of the antennal chemoreceptors and mechanoreceptors of worker Coptotermes formosanus Shiraki. Cell Tissue Res. 173, 173-178 (1976).
  23. Zacharuk, R. Y. Ultrastructure and function of insect chemosensilla. Annual Review of Entomology. 25, 27-47 (1980).
  24. Li, Y. Z., Zhong, G. Q. Screening of detergents and floating carriers for treating potato golden nematode cysts to improve the original appearance of electron microscopy. Plant quarantine. 8, 72-75 (1994).
  25. Marzio, L. D., Marianecci, C., Petrone, M., Rinaldi, F., Carafa, M. Novel pH-sensitive non-ionic surfactant vesicles: comparison between tween 21 and tween 20. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 82, 18-24 (2011).
  26. Ren, L. L., Wu, Y., Shi, J., Zhang, L., Luo, Y. Q. Antenna morphology and sensilla ultrastructure of Tetrigus lewisi Candèze (Coleoptera: Elateridae). Micron. 60, 29-38 (2014).
  27. Ren, L., Shi, J., Zhang, Y., Luo, Y. Antennal morphology and sensillar ultrastructure of Dastarcus helophoroides (Fairmaire) (Coleoptera: Bothrideridae). Micron. 43, 921-928 (2012).
  28. Teng, X. H., Liu, X. L., Xie, G. Y., Tang, Q. B., Li, W. Z., Zhao, X. C. Morphology and distribution of ovipositor sensilla of female Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae). The 11th Henan Plant Protection Society, the 10th Henan Insect Society, and the 5th Member Congress and Academic Symposium of Henan Plant Pathology Society. , 138-142 (2017).
  29. Yang, R., Zhang, L. N., Fan, J. W., Wang, J. L., Fang, K. F., Yu, T. Q., Wang, S. H., Du, Y. L. Insect specimens for scanning electron microscopy. Journal of Beijing University of Agriculture. 29, 33-36 (2014).
  30. Zhang, Y. R., Ren, L. L., Zhang, L., Wang, R., Yu, Y., Lu, P. F., Luo, Y. Q. Ultrastructure and distribution of sensilla on the maxillary and labial palps of Chlorophorus caragana (Coleoptera: Cerambycidae). Journal of Morphology. 279, 574-588 (2018).
  31. Harrison, J. D. G. Cleaning and preparing adult beetles (Coleoptera) for light and scanning electron microscopy. African Entomology. 20, 395-401 (2012).
  32. Xiao, Y., Liu, W., Wang, Y., Zuo, Y. X., Hu, R., Li, T. T., Cui, Z. B. Drying methods of biological sample preparation for scanning electron microscope. Research and Exploration Laboratory. 32, 46-53 (2013).
  33. Graef, M. D. . Introduction to Conventional Transmission Electron Microscopy. , 1 (2003).

Play Video

Cite This Article
Zhang, Y., Qiao, H., Ren, L., Wang, R., Lu, P. Sample Preparation Method of Scanning and Transmission Electron Microscope for the Appendages of Woodboring Beetle. J. Vis. Exp. (156), e59251, doi:10.3791/59251 (2020).

View Video