I mulini a volo sono strumenti importanti per confrontare il modo in cui l’età, il sesso, lo stato di accoppiamento, la temperatura o vari altri fattori possono influenzare il comportamento di volodiun insetto. Qui descriviamo i protocolli per legare e misurare la propensione al volo e le prestazioni del verme di mais occidentale in diversi trattamenti.
Il verme di mais occidentale, Diabrotica virgifera virgifera (LeConte) (Coleoptera: Chrysomelidae), è un parassita economicamente importante del mais negli Stati Uniti settentrionali. Alcune popolazioni hanno sviluppato resistenza alle strategie di gestione tra cui il mais transgenico che produce tossine insetticide derivate dal batterio Bacillus thuringiensis (Bt). La conoscenza della dispersione del tiofilo del mais occidentale è di fondamentale importanza per i modelli di evoluzione, diffusione e mitigazione della resistenza. Il comportamento di volo di un insetto, soprattutto su una lunga distanza, è intrinsecamente difficile da osservare e caratterizzare. I mulini a volo forniscono un mezzo per testare direttamente gli impatti dello sviluppo e fisiologici e le conseguenze del volo in laboratorio che non possono essere ottenuti negli studi sul campo. In questo studio, i mulini di volo sono stati utilizzati per misurare la tempistica dell’attività di volo, il numero totale di voli e la distanza, la durata e la velocità dei voli effettuati da vermi della radice femminili durante un periodo di prova di 22 ore. Sedici mulini di volo sono stati alloggiati in una camera ambientale con illuminazione programmabile, temperatura e controllo dell’umidità. Il mulino di volo descritto è di un disegno tipico, dove un braccio di volo è libero di ruotare circa un perno centrale. La rotazione è causata dal volo di un insetto legato a un’estremità del braccio di volo e ogni rotazione viene registrata da un sensore con un timestamp. I dati grezzi vengono compilati da software, che vengono successivamente elaborati per fornire statistiche riepilogative per i parametri di volo di interesse. Il compito più difficile per qualsiasi studio del mulino di volo è l’attaccamento del collegatore all’insetto con un adesivo, e il metodo utilizzato deve essere adattato a ciascuna specie. L’attacco deve essere abbastanza forte da tenere l’insetto in un orientamento rigido e per prevenire il distacco durante il movimento, senza interferire con il movimento naturale dell’ala durante il volo. Il processo di attacco richiede destrezza, finezza e velocità, rendendo le riprese video del processo per rootworms di valore.
Il verme di mais occidentale, Diabrotica virgifera virgifera LeConte (Coleoptera: Chrysomelidae), è stato identificato come un parassita di mais coltivato nel 19091. Oggi, è il più importante parassita del mais(zea mays L.) nella cintura di mais degli Stati Uniti, con la farina che si nutre di radici di mais causando la maggior parte della perdita di resa associata a questo parassita. Si stima che i costi annuali per la gestione e le perdite di produzione di mais dovuti a rootworm di mais superino i 1 miliardo di dollarie 2. Il verme di radice del mais occidentale è altamente adattabile, e le popolazioni hanno sviluppato resistenza a molteplici strategie di gestione tra cui insetticidi, rotazione delle colture e mais Bttransgenico 3 . La determinazione delle dimensioni spaziali su quali tattiche devono essere applicate per mitigare lo sviluppo locale della resistenza, o un hotspot di resistenza, dipende da una migliore comprensione della dispersione4. Le misure di mitigazione non avranno successo se sono limitate a una scala spaziale troppo piccola intorno a un hotspot di resistenza, perché gli adulti resistenti si disperderanno oltre l’area di mitigazione5. Comprendere il comportamento di volo del tiofilo occidentale è importante per creare piani di gestione della resistenza efficaci per questo parassita.
Dispersione in volo svolge un ruolo importante nella storia della vita del verme di mais occidentale adulto e l’ecologia6, e il comportamento di volo di questo parassita può essere studiato in laboratorio. Diversi metodi possono essere utilizzati per misurare il comportamento di volo in laboratorio. Un actografo, che limita il volo in un piano verticale, può misurare la quantità di tempo in cui un insetto è impegnato in volo. Gli atografi sono stati utilizzati per confrontare la durata del volo e i modelli di periodicità dei maschi e delle femmine della radice del mais occidentale a diverse età, dimensioni del corpo, temperature, suscettibilità agli insetticidi e esposizione agli insetticidi7,8, 9. Le gallerie di volo, che consistono in una camera di monitoraggio e da un flusso d’aria diretto, sono particolarmente utili per esaminare il comportamento di volo degli insetti quando si segue un pennacchio di odore, come i componenti del feromone candidato10 o le sostanze volatili delle piante11. I mulini a volo sono forse il metodo più comune per gli studi di laboratorio sul comportamento di volo degli insetti e possono caratterizzare diversi aspetti della propensione e delle prestazioni di volo. Mulini di volo di laboratorio sono stati impiegati negli studi di radice di mais occidentale per caratterizzare la propensione a fare voli brevi e sostenuti, nonché il controllo ormonale del volo sostenuto12,13.
I mulini a volo forniscono un modo relativamente semplice per studiare il comportamento del volo degli insetti in condizioni di laboratorio, consentendo ai ricercatori di misurare vari parametri di volo, tra cui la periodicità, la velocità, la distanza e la durata. Molti dei mulini di volo utilizzati oggi sono derivati dalle rotatorie di Kennedy et al.14 e Krogh e Weis-Fogh15. I mulini di volo possono essere diversi per forma e dimensioni, ma il principio di base rimane lo stesso. Un insetto è legato e montato su un braccio orizzontale radiale che è libero di ruotare, con attrito minimo, circa un albero verticale. Mentre l’insetto vola in avanti, il suo percorso è limitato al giro in un piano orizzontale, con la distanza percorsa per rotazione dettata dalla lunghezza del braccio. Un sensore viene in genere utilizzato per rilevare ogni rotazione del braccio causata dall’attività di volo dell’insetto. I dati grezzi includono rotazioni per unità di tempo e ora del volo del giorno. I dati vengono inseriti in un computer per la registrazione. I dati provenienti da più mulini di volo sono spesso registrati in parallelo, essenzialmente simultaneamente, con banche di 16 e 32 mulini di volo comuni. I dati grezzi vengono ulteriormente elaborati da un software personalizzato per fornire valori per variabili quali la velocità di volo, il numero totale di voli separati, la distanza e la durata volati e così via.
Ogni specie di insetto è diversa quando si tratta del metodo migliore per il tethering a causa di variabili morfologiche come le dimensioni complessive, le dimensioni e la forma dell’area bersaglio per attaccare il legatore, la morbidezza e la flessibilità dell’insetto, il bisogno e il metodo per anestesizzazione, potenziale per incrostazioni delle ali e / o testa con adesivo fuori luogo o overflow, e molti, molti più dettagli. Nei casi di tethering visualizzato di un insetto plataspitico16 e di un coleottero ambrosia17, le rispettive aree bersaglio per l’attaccamento del tethering sono relativamente grandi e perdonando il posizionamento adesivo impreciso perché la testa e le ali sono un po ‘in qualche modo separati dal sito dell’allegato. Questo non è quello di minimizzare la difficoltà di antetempo questi insetti, che è impegnativo per qualsiasi specie. Ma il verme di mais occidentale è un insetto particolarmente impegnativo da legarsi: il pronotum è stretto e corto, rendendo l’attaccamento molto preciso con una minima quantità di adesivo (cera dentale in questo caso) necessario per prevenire interferenze con l’apertura dell’elytra per il volo e con la testa, dove il contatto con gli occhi o le antenne può influenzare il comportamento. Allo stesso tempo, il legame deve essere saldamente attaccato per evitare lo sloggiamento da questo forte volantino. La dimostrazione del tethering degli adulti rootworm è l’offerta più importante in questo documento. Dovrebbe essere di aiuto per gli altri che lavorano con questo o insetti simili dove il metodo visualizzato qui potrebbe essere un’opzione utile.
Questo documento descrive i metodi utilizzati per legare e caratterizzare efficacemente l’attività di volo degli adulti dello rootworm di mais occidentale che sono stati allevati a diverse densità larve. I mulini di volo e i software utilizzati in questo studio (Figura 1) sono stati ricavati da disegni pubblicati su Internet da Jones et al.18 Le tecniche di tethering sono state modificate dalla descrizione in Stebbing et al. 9 Una serie di 16 mulini a volo è stata modificata dalla descrizione in Stebbing et al.9 Una serie di 16 mulini di volo è stata in una camera ambientale, progettata per controllare l’illuminazione, l’umidità e la temperatura (Figura 2). Utilizzando questa o simile configurazione insieme con le seguenti tecniche consente di testare i fattori che possono influenzare la propensione al volo e le prestazioni del verme della radice di mais occidentale, tra cui età, sesso, temperatura, fotoperiodo, e molti altri.
Caratterizzare il comportamento di volo del rootworm di mais occidentale è importante per elaborare piani efficaci di gestione della resistenza. Il comportamento di volo di questo parassita è stato studiato in laboratorio utilizzando vari metodi tra cui actografi, gallerie di volo e mulini di volo. I mulini a volo, come descritto e illustrato in questo documento, consentono agli insetti di effettuare voli ininterrotti in modo che i ricercatori possano quantificare i parametri di volo come distanza, durata, periodicità…
The authors have nothing to disclose.
L’assistente di E.Y.Y. è stata sostenuta dalla National Science Foundation I/UCRC, il Center for Arthropod Management Technologies, sotto Grant No. IIP-1338775 e partner del settore.
Butane multi-purpose lighter | BIC | UXMPFD2DC | To soften wax when tethering |
Clear polystyrene plastic vial (45-ml) | Freund Container and Supply | AS112 | To hold beetle while anesthetizing |
Dehydrated culture media, agar powder | Fisher Scientific | S14153 | To make agar for holding moisture for adults |
Delrin rod (1" diameter, 3.75" long) | Many suppliers: can use cheapest on the internet. | For post of flight mill | |
Dental wax | DenTek | 47701000335 | Adheres wire tether to prothorax |
Ferrite ring magnets (OD: 0.69”, ID: 0.29”, Thickness: 0.118”; 7oz pull) | Magnet Shop | 63B06929118 | Opposing – to generate the float. |
Hall effect sensor | Optikinc | OHN3120U | Look under magnetic sensors on the left side of the Optekinc website then look for the part number. A link is given for current suppliers. |
Hypodermic tubing (22 gauge; 0.0358” OD x 0.01975” ID x 0.004” wall) | Small Parts, Inc. | HTX-22T-12 | Used for flight mill arms and main axis rod. |
Incubator (104.1 x 85.4 x 196.1 cm) | Percival Scientific | I-41VL | |
LabVIEW Full Development System software, system-design platform | National Instruments (See http://www.ni.com/en-us/shop/labview/select-edition.html) | LabVIEW 2018 (Full Edition) | Provides environment needed to run flight mill files (.vi extensions) available for download from Jones et al.18 at http://entomology.tfrec.wsu.edu/VPJ_Lab/Flight-Mill. LabVIEW 2018 Full is compatible with Win/Mac/Linux operating systems. |
Mesh cage (18 x 18 x 18 cm) | MegaView Science Co. Ltd. | BugDorm-4M1515 | mesh size = 44 x 32, 650 µm aperture |
Needle tool | BLICK | 34920-1063 | For scoring soil surface for egg laying in laboratory |
Nickel ring magnets (3/16” OD x 1/16” ID x: 1/16” thick) | K&J Magnetics | R311 | Used to trigger the digital hall effect sensor. |
Petri dish (100 mm x 15 mm) | Fisher Scientific | S33580A | |
Plastic container (44-ml) | Dart | 150PC | For initial rearing of young larvae |
Plastic container (473-ml) | Placon | 22885 | For rearing of older larvae |
Round brush (size 2) | Simply Simmons | 10472906 | For transferring freshly hatched neonates to surface of roots |
Sieve (250-µm) | Fisher Scientific | 08-418-05 | To separate eggs from soil |
Steel wire (28-gauge) | The Hillman Group | 38902350282 | |
Teflon rod (3/8" diameter, 3/4" length) | United States Plastic Corporation | 47503 | To accept the rotating arm. |
Vacuum | Gast Manufacturing, Inc. | 1531-107B-G288X | For aspirating adults in laboratory |
White poly chiffon fabric | Hobby Lobby | 194811 | To prevent escape of larvae from rearing container |