Summary

Preparazione e Immunostaining di su colture organotipiche Myelinating fetta cerebellare

Published: March 20, 2019
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Summary

Qui presentiamo un metodo per preparare organotipiche fetta culture dal cervelletto di topo e guaina mielinica colorazione da immunohistochemistry adatto per studiare i meccanismi della mielinizzazione e remyelination nel sistema nervoso centrale.

Abstract

Nel sistema nervoso, della mielina è una struttura complessa membrana generata da myelinating glial cells, cui assoni di ensheathes e facilita la conduzione elettrica. Alterazione della mielina è stato indicato per accadere in varie malattie neurologiche, dove è associato con i deficit funzionali. Qui, forniamo una descrizione dettagliata di un ex vivo modello composto da fette organotipiche cerebellari del topo, che possono essere mantenute in coltura per diverse settimane e più ulteriormente essere etichettati per visualizzare la mielina.

Introduction

I neuroni sono cellule altamente polarizzate, che comprendono un vano somato-dendritica che riceve gli input dal suo ambiente e un assone che assicura la generazione e la propagazione di impulsi elettrici ad altre cellule. Propagazione rapida e tempestiva consegna delle informazioni è essenziale per il corretto funzionamento del sistema nervoso. Nei vertebrati, esso è facilitato dalla mielinizzazione, che permette di aumentare la velocità di conduzione assonale1. Mielina è una struttura specializzata formata da strati compattati della membrana di plasma generato dalla glia myelinating, vale a dire gli oligodendrociti nel sistema nervoso centrale (SNC) e cellule di Schwann nel sistema nervoso periferico (PNS). Sia nel SNC e SNP, interazioni axoglial guidare la formazione di domini axonal specializzati: i nodi di Ranvier e loro circostante di domini, paranodes e juxtaparanodes2. I axonal segmenti isolati di mielina o internodi, si alternano con i nodi di Ranvier, che corrispondono a piccoli domini unmyelinated arricchiti in scanalature tensione-gated del sodio (Nav). L’alta concentrazione e la rapida attivazione di canaliv Na presso i nodi di Ranvier consentono la rigenerazione dei potenziali d’azione e insieme con le proprietà isolanti delle guaine mieliniche, garantire la conduzione efficiente e veloce stile della impulso nervoso lungo l’ assone3.

Oltre al suo ruolo nell’accelerare la velocità di conduzione dell’impulso nervoso, glia myelinating fornisce supporto metabolico per l’assone, preservare la sua integrità a lungo termine e che partecipano della sua sopravvivenza4,5. Inoltre, è diventato chiaro in anni recenti che mielina è modulata in modo dinamico per tutta la vita, quindi presumibilmente partecipano il regolamento e la plasticità delle varie funzioni del sistema nervoso. Rettifiche nette per la distribuzione, numero, lunghezza e spessore delle guaine di mielina lungo gli assoni così potrebbero rappresentare un nuovo modo di regolare vari reti6,7,8. Pertanto, l’acquisizione evolutiva della mielina è un processo chiave per le funzioni sensoriali, motorie e cognitive e la perturbazione dell’interazione tra assoni e cellule gliali è sempre più considerata come un contributo per l’inerente allo sviluppo o acquisite neurologica malattie9.

Composizione della mielina è stata caratterizzata, con la caratteristica peculiare di un’alta percentuale di lipidi (70%) rispetto alle proteine (30%) a differenza di altre membrane cellulari10. Tuttavia, a differenza dei lipidi della mielina, la maggior parte delle proteine della mielina sono specifica di mielina, tra cui la proteina basica della mielina (MBP), proteolipide (PLP), 2′, glicoproteina di 3′-ciclico del nucleotide 3′-fosfodiesterasi (CNP), mielina (MAG), glicoproteina del oligodendrocyte del myelin (MOG), PMP-22 e P010. Vari metodi istologici a macchiare la mielina esistano base alla sua composizione lipidica, come Luxol fast blu11, Sudan nero B12, Baker ematina acida metodo13, così come14di macchiatura d’argento. Tuttavia, questi approcci non sempre consentono un adeguato contrasto e risoluzione per visualizzare le singole fibre. Un approccio alternativo per rilevare la mielina è tramite immunoistochimica diretto contro proteine della mielina. Vari anticorpi antigeni della mielina-specifici di destinazione con un’alta specificità e possono essere utilizzati regolarmente per rilevare strutture myelinated. L’interazione antigene-anticorpo può essere ulteriormente rivelato utilizzando un anticorpo secondario accoppiato ad un fluoroforo diretto contro l’anticorpo primario e visualizzati con microscopia di fluorescenza adeguata. Qui, descriviamo un protocollo immunochimico per macchiare la mielina su ex vivo cerebellare fette, un modello che permette per una buona conservazione dell’architettura del tessuto nervoso. Inoltre, l’organizzazione e la dimensione delle cellule del Purkinje (l’unico neurone myelinated del cervelletto) li rendono un modello classico per gli studi elettrofisiologici e sono allo stesso modo ideale per svolgere gli studi fissi o live-imaging.

Le fette cerebellare sono generate dai topi P9-P10, un tempo corrispondente alla comparsa precoce di mielinizzazione delle cellule di Purkinje, un processo che avviene per lo più di una settimana ex vivo (6-7 giorni in vitro, DIV)15. Inoltre, questo modello è adattato per indagare demielinizzanti come la sclerosi multipla (SM), come un vasto demyelination può essere indotta a cerebellare fette utilizzando myelinotoxic composto lisofosfatidilcolina (o lisolecitina, LPC), cui è seguita da una spontanea remyelination16,17. Remyelination endogeno avviene da due giorni dopo la rimozione di LPC dal terreno di coltura ed è quasi completa un post trattamento di settimana.

Il completamento del presente protocollo prende circa 3 settimane, tra cui una mezza giornata per la preparazione di colture cerebellare fetta una settimana per ottenere fette completamente myelinated, seguite da 2 giorni per raggiungere la vetta del demyelination e un’altra settimana per loro pieno remyelination. Inoltre, immunohistochemistry può essere completato in 2 giorni. Il protocollo descritto qui è adattato a una cucciolata standard di 6 topi cuccioli e deve essere adattato per quanto riguarda il numero di animali utilizzati per l’esperimento pianificato.

Protocol

Tutti i lavori che coinvolgono gli animali è conformato da politiche istituzionali e linee guida stabilite dall’UPMC, INSERM e il francese e la direttiva comunitaria del Consiglio 86/609/CEE. 1. preparazione del terreno di coltura e cultura inserti (hands-on tempo ≈ 10 – 15 min) Nota: Eseguire questo passaggio in una cappa a flusso cultura in condizioni sterili Preparare 40 mL di terreno di coltura, che è costituito da 50% BME, soluz…

Representative Results

Esempi di immunostainings rappresentante della mielina in organotipiche cerebellari fette ottenute da P9-P10 C57black6 wild-type (WT) (Figura 2A), così come topi transgenici PLP-GFP (Figura 2B), insieme alle cellule di Purkinje macchiatura. Mielinare da materia bianca cerebellare fette canzoni regione delle fette verso la periferia della folia e mielinizzazione delle cellule del Purkinje è per lo più raggiunto dopo 6 o 7 DIV. …

Discussion

Qui, abbiamo dettaglio un protocollo per generare un ex vivo modello corrispondente alle culture del mouse organotipiche cerebellari fetta, adattato da precedentemente metodi pubblicati15,16,19 e la mielina successiva immunostaining di questi preparati. Questa strategia offre la possibilità di visualizzare componenti della mielina con una risoluzione elevata negli stati sani e patologici.

Tratto da 1…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo il dottor Sean Freeman, Dr. Nathalie Sol-Foulon e Dr. Thomas Roux per i preziosi commenti sul manoscritto. Questo lavoro è stato finanziato dalla INSERM, ICM, ARSEP sovvenzioni R13123DD, ANR R17127DD (al D.C.) e FRM fellowship, SPF20110421435 (al D.C.), FDT20170437332 (di M.T.). Ringraziamo la struttura di cultura cellulare CELIS e l’icm. Piattaforma di imaging quant.

Materials

BME medium ThermoFisher Scientific 41010026
Hank’s Balanced Salt Solution (10X HBSS) ThermoFisher Scientific 14180046
GlutaMAX (100X) ThermoFisher Scientific 35050038
Heat-inactivated Horse Serum ThermoFisher Scientific 26050088
Penicillin–Streptomycin (10.000 IU/mL) ThermoFisher Scientific 15140122
Gey’s Balanced Salt Solution Sigma Aldrich G9779-500ML
D-Glucose Solution (45%) Sigma Aldrich G8769-100ML
Lysophosphatidylcholine (LPC) Sigma Aldrich L4129-100MG
Paraformaldehyde (PFA) Electron Microscopy Sciences 15714
Absolute ethanol (100% ethanol) VWR Chemicals 20821.330 Cooled at -20°C
Triton® X-100 Sigma Aldrich X100-500ML
10% Normal Goat Serum (NGS) ThermoFisher Scientific 500622
Phosphate Buffer Solution EuroMEDEX ET330-A pH 7.4
Anti-GFP Antibody (Polyclonal, Chicken) Merck Millipore 06-896 Dilution 1/300
Anti-Myelin Basic Protein (MBP) Antibody (Polyclonal, Chicken) Merck Millipore AB9348 Dilution 1/150
Anti-Myelin Basic Protein (MBP) Antibody (Monoclonal, Mouse IgG2b) Merck Millipore NE1019 Dilution 1/200
Anti-PLP Antibody (Rat, Hybridoma) Gift from Dr. K. Ikenaka; Okasaki, Japan Dilution 1/5 to 1/10
Anti-Sodium Channel, Pan Antibody (Monoclonal, Mouse IgG1, clone K58/35) Sigma Aldrich S8809 Dilution 1/150
Anti-Caspr Antibody (Polyclonal, Rabbit) Abcam ab34151 Dilution 1/500
Goat Secondary Antibodies conjugated to Alexa Fluor 488, 594, 647 or 405 ThermoFisher Scientific Dilution 1/500
Fluoromount SouthernBiotech 0100-20
Tissue chopper McIlwain
Razor blades
Large scissors F.S.T 14101-14
Small scissors F.S.T 91500-09
Fine-straight forceps F.S.T 91150-20
Curved-fine forceps F.S.T 11297-00
Cell culture dishes (60-mm and 100-mm) TPP
4-, 6-well culture plates TPP
Millicell culture inserts (0,4 µm, 30-mm diameter) Merck Millipore PICM0RG50
Cell culture incubator 37°C, 5% CO2
Fine-end pipette tips Dutscher 134000CL
Wide-bore pipette tips ThermoFisher Scientific 2079G
Sterile syringe Terumo Europe 20 or 50 mL
Sterile syringe filters Terumo Europe 0.22 µm
Scalpel Swann-Morton 0510
Brush
Microscope slides RS France 76 x 26 x 1.1 mm
Glass coverslips RS France 22 x 22 mm
Kimtech Sciences Tissue Wipers Kimberly-Clark Professional 5511
Binocular microscope

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Thetiot, M., Ronzano, R., Aigrot, M., Lubetzki, C., Desmazières, A. Preparation and Immunostaining of Myelinating Organotypic Cerebellar Slice Cultures. J. Vis. Exp. (145), e59163, doi:10.3791/59163 (2019).

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