Qui presentiamo un metodo per preparare organotipiche fetta culture dal cervelletto di topo e guaina mielinica colorazione da immunohistochemistry adatto per studiare i meccanismi della mielinizzazione e remyelination nel sistema nervoso centrale.
Nel sistema nervoso, della mielina è una struttura complessa membrana generata da myelinating glial cells, cui assoni di ensheathes e facilita la conduzione elettrica. Alterazione della mielina è stato indicato per accadere in varie malattie neurologiche, dove è associato con i deficit funzionali. Qui, forniamo una descrizione dettagliata di un ex vivo modello composto da fette organotipiche cerebellari del topo, che possono essere mantenute in coltura per diverse settimane e più ulteriormente essere etichettati per visualizzare la mielina.
I neuroni sono cellule altamente polarizzate, che comprendono un vano somato-dendritica che riceve gli input dal suo ambiente e un assone che assicura la generazione e la propagazione di impulsi elettrici ad altre cellule. Propagazione rapida e tempestiva consegna delle informazioni è essenziale per il corretto funzionamento del sistema nervoso. Nei vertebrati, esso è facilitato dalla mielinizzazione, che permette di aumentare la velocità di conduzione assonale1. Mielina è una struttura specializzata formata da strati compattati della membrana di plasma generato dalla glia myelinating, vale a dire gli oligodendrociti nel sistema nervoso centrale (SNC) e cellule di Schwann nel sistema nervoso periferico (PNS). Sia nel SNC e SNP, interazioni axoglial guidare la formazione di domini axonal specializzati: i nodi di Ranvier e loro circostante di domini, paranodes e juxtaparanodes2. I axonal segmenti isolati di mielina o internodi, si alternano con i nodi di Ranvier, che corrispondono a piccoli domini unmyelinated arricchiti in scanalature tensione-gated del sodio (Nav). L’alta concentrazione e la rapida attivazione di canaliv Na presso i nodi di Ranvier consentono la rigenerazione dei potenziali d’azione e insieme con le proprietà isolanti delle guaine mieliniche, garantire la conduzione efficiente e veloce stile della impulso nervoso lungo l’ assone3.
Oltre al suo ruolo nell’accelerare la velocità di conduzione dell’impulso nervoso, glia myelinating fornisce supporto metabolico per l’assone, preservare la sua integrità a lungo termine e che partecipano della sua sopravvivenza4,5. Inoltre, è diventato chiaro in anni recenti che mielina è modulata in modo dinamico per tutta la vita, quindi presumibilmente partecipano il regolamento e la plasticità delle varie funzioni del sistema nervoso. Rettifiche nette per la distribuzione, numero, lunghezza e spessore delle guaine di mielina lungo gli assoni così potrebbero rappresentare un nuovo modo di regolare vari reti6,7,8. Pertanto, l’acquisizione evolutiva della mielina è un processo chiave per le funzioni sensoriali, motorie e cognitive e la perturbazione dell’interazione tra assoni e cellule gliali è sempre più considerata come un contributo per l’inerente allo sviluppo o acquisite neurologica malattie9.
Composizione della mielina è stata caratterizzata, con la caratteristica peculiare di un’alta percentuale di lipidi (70%) rispetto alle proteine (30%) a differenza di altre membrane cellulari10. Tuttavia, a differenza dei lipidi della mielina, la maggior parte delle proteine della mielina sono specifica di mielina, tra cui la proteina basica della mielina (MBP), proteolipide (PLP), 2′, glicoproteina di 3′-ciclico del nucleotide 3′-fosfodiesterasi (CNP), mielina (MAG), glicoproteina del oligodendrocyte del myelin (MOG), PMP-22 e P010. Vari metodi istologici a macchiare la mielina esistano base alla sua composizione lipidica, come Luxol fast blu11, Sudan nero B12, Baker ematina acida metodo13, così come14di macchiatura d’argento. Tuttavia, questi approcci non sempre consentono un adeguato contrasto e risoluzione per visualizzare le singole fibre. Un approccio alternativo per rilevare la mielina è tramite immunoistochimica diretto contro proteine della mielina. Vari anticorpi antigeni della mielina-specifici di destinazione con un’alta specificità e possono essere utilizzati regolarmente per rilevare strutture myelinated. L’interazione antigene-anticorpo può essere ulteriormente rivelato utilizzando un anticorpo secondario accoppiato ad un fluoroforo diretto contro l’anticorpo primario e visualizzati con microscopia di fluorescenza adeguata. Qui, descriviamo un protocollo immunochimico per macchiare la mielina su ex vivo cerebellare fette, un modello che permette per una buona conservazione dell’architettura del tessuto nervoso. Inoltre, l’organizzazione e la dimensione delle cellule del Purkinje (l’unico neurone myelinated del cervelletto) li rendono un modello classico per gli studi elettrofisiologici e sono allo stesso modo ideale per svolgere gli studi fissi o live-imaging.
Le fette cerebellare sono generate dai topi P9-P10, un tempo corrispondente alla comparsa precoce di mielinizzazione delle cellule di Purkinje, un processo che avviene per lo più di una settimana ex vivo (6-7 giorni in vitro, DIV)15. Inoltre, questo modello è adattato per indagare demielinizzanti come la sclerosi multipla (SM), come un vasto demyelination può essere indotta a cerebellare fette utilizzando myelinotoxic composto lisofosfatidilcolina (o lisolecitina, LPC), cui è seguita da una spontanea remyelination16,17. Remyelination endogeno avviene da due giorni dopo la rimozione di LPC dal terreno di coltura ed è quasi completa un post trattamento di settimana.
Il completamento del presente protocollo prende circa 3 settimane, tra cui una mezza giornata per la preparazione di colture cerebellare fetta una settimana per ottenere fette completamente myelinated, seguite da 2 giorni per raggiungere la vetta del demyelination e un’altra settimana per loro pieno remyelination. Inoltre, immunohistochemistry può essere completato in 2 giorni. Il protocollo descritto qui è adattato a una cucciolata standard di 6 topi cuccioli e deve essere adattato per quanto riguarda il numero di animali utilizzati per l’esperimento pianificato.
Qui, abbiamo dettaglio un protocollo per generare un ex vivo modello corrispondente alle culture del mouse organotipiche cerebellari fetta, adattato da precedentemente metodi pubblicati15,16,19 e la mielina successiva immunostaining di questi preparati. Questa strategia offre la possibilità di visualizzare componenti della mielina con una risoluzione elevata negli stati sani e patologici.
Tratto da 1…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo il dottor Sean Freeman, Dr. Nathalie Sol-Foulon e Dr. Thomas Roux per i preziosi commenti sul manoscritto. Questo lavoro è stato finanziato dalla INSERM, ICM, ARSEP sovvenzioni R13123DD, ANR R17127DD (al D.C.) e FRM fellowship, SPF20110421435 (al D.C.), FDT20170437332 (di M.T.). Ringraziamo la struttura di cultura cellulare CELIS e l’icm. Piattaforma di imaging quant.
BME medium | ThermoFisher Scientific | 41010026 | |
Hank’s Balanced Salt Solution (10X HBSS) | ThermoFisher Scientific | 14180046 | |
GlutaMAX (100X) | ThermoFisher Scientific | 35050038 | |
Heat-inactivated Horse Serum | ThermoFisher Scientific | 26050088 | |
Penicillin–Streptomycin (10.000 IU/mL) | ThermoFisher Scientific | 15140122 | |
Gey’s Balanced Salt Solution | Sigma Aldrich | G9779-500ML | |
D-Glucose Solution (45%) | Sigma Aldrich | G8769-100ML | |
Lysophosphatidylcholine (LPC) | Sigma Aldrich | L4129-100MG | |
Paraformaldehyde (PFA) | Electron Microscopy Sciences | 15714 | |
Absolute ethanol (100% ethanol) | VWR Chemicals | 20821.330 | Cooled at -20°C |
Triton® X-100 | Sigma Aldrich | X100-500ML | |
10% Normal Goat Serum (NGS) | ThermoFisher Scientific | 500622 | |
Phosphate Buffer Solution | EuroMEDEX | ET330-A | pH 7.4 |
Anti-GFP Antibody (Polyclonal, Chicken) | Merck Millipore | 06-896 | Dilution 1/300 |
Anti-Myelin Basic Protein (MBP) Antibody (Polyclonal, Chicken) | Merck Millipore | AB9348 | Dilution 1/150 |
Anti-Myelin Basic Protein (MBP) Antibody (Monoclonal, Mouse IgG2b) | Merck Millipore | NE1019 | Dilution 1/200 |
Anti-PLP Antibody (Rat, Hybridoma) | Gift from Dr. K. Ikenaka; Okasaki, Japan | Dilution 1/5 to 1/10 | |
Anti-Sodium Channel, Pan Antibody (Monoclonal, Mouse IgG1, clone K58/35) | Sigma Aldrich | S8809 | Dilution 1/150 |
Anti-Caspr Antibody (Polyclonal, Rabbit) | Abcam | ab34151 | Dilution 1/500 |
Goat Secondary Antibodies conjugated to Alexa Fluor 488, 594, 647 or 405 | ThermoFisher Scientific | Dilution 1/500 | |
Fluoromount | SouthernBiotech | 0100-20 | |
Tissue chopper | McIlwain | ||
Razor blades | |||
Large scissors | F.S.T | 14101-14 | |
Small scissors | F.S.T | 91500-09 | |
Fine-straight forceps | F.S.T | 91150-20 | |
Curved-fine forceps | F.S.T | 11297-00 | |
Cell culture dishes (60-mm and 100-mm) | TPP | ||
4-, 6-well culture plates | TPP | ||
Millicell culture inserts (0,4 µm, 30-mm diameter) | Merck Millipore | PICM0RG50 | |
Cell culture incubator | 37°C, 5% CO2 | ||
Fine-end pipette tips | Dutscher | 134000CL | |
Wide-bore pipette tips | ThermoFisher Scientific | 2079G | |
Sterile syringe | Terumo Europe | 20 or 50 mL | |
Sterile syringe filters | Terumo Europe | 0.22 µm | |
Scalpel | Swann-Morton | 0510 | |
Brush | |||
Microscope slides | RS France | 76 x 26 x 1.1 mm | |
Glass coverslips | RS France | 22 x 22 mm | |
Kimtech Sciences Tissue Wipers | Kimberly-Clark Professional | 5511 | |
Binocular microscope |