כאן, פרוטוקולים לביצוע מיקרופוקוס רנטגן טומוגרפיה ממוחשבת (Microfocus) הדמיה של שלושה חיות חסרי חוליות ימיים מוסברים בפרוטרוט. מחקר זה מתאר שלבים כגון קיבעון לדוגמה, כתמים, הרכבה, סריקה, שחזור תמונה, וניתוח נתונים. הצעות לגבי אופן ההתאמה של הפרוטוקול עבור דגימות שונות מסופקות גם כן.
באופן מסורתי, ביולוגים נאלצו להסתמך על שיטות הרסניות כגון הסתמכות על מנת לחקור את המבנים הפנימיים של אורגניזמים אטומים. שאינם הרסניים מיקרופוקוס רנטגן טומוגרפיה ממוחשבת (Microfocus) הדמיה הפכה לפרוטוקול עוצמה והמתעוררים בביולוגיה, בשל פיתוחים טכנולוגיים בשיטות מכתים לדוגמה וחידושים בחומרה Microfocus, עיבוד מחשבים, ונתונים תוכנות ניתוח. עם זאת, פרוטוקול זה אינו משמש בדרך כלל, כפי שהוא בשדות הרפואיים והתעשייתיים. אחת הסיבות לשימוש מוגבל זה היא העדר מדריך פשוט ומובן המכסה את כל השלבים הדרושים: אוסף לדוגמה, קיבעון, כתמים, הרכבה, סריקה, ניתוח נתונים. סיבה נוספת היא מגוון עצום של מטזואים, במיוחד חסרי חוליות ימיים. בגלל המידות המגוונות, המורפולוגיות והפיזיולוגיות, חיוני להתאים את התנאים הניסיוניים ותצורות החומרה בכל שלב, בהתאם למדגם. כאן, שיטות הדמיה microCT מוסברים בפירוט באמצעות שלושה שונים בעלי חוליות ים ימיים מגוונים: הפיניה שווה (האנטיתים, Cnidaria), Harmothoe Sp. (Polychaeta, אנאלאידה), ו xenoturbella יפני ( . קסנוטורסלדה, קסנאקומורפין הצעות על ביצוע הדמיה microCT על בעלי חיים שונים מסופקים גם.
בדרך כלל, חוקרים ביולוגיים היו צריכים לעשות קטעים דקים ולבצע תצפיות על ידי מיקרוסקופ אור או אלקטרון כדי לחקור את המבנים הפנימיים של אורגניזמים אטומים. עם זאת, שיטות אלה הן הרסניות ובעייתיות כאשר הם מוחלים על יצורים נדירים או יקרי ערך. יתר על כן, מספר שלבים בשיטה, כגון הטבעה והפחתה, הם זמן רב, והוא יכול להימשך מספר ימים כדי להתבונן במדגם, בהתאם לפרוטוקול. יתר על כן, בעת טיפול בסעיפים רבים, תמיד יש אפשרות להזיק או לאבד חלקים מסוימים. טכניקות ניקוי רקמות זמינים עבור כמה דגימות1,2,3,4,5 אך אינם ישימים עדיין עבור מינים רבים של בעלי חיים.
כדי להתגבר על בעיות אלה, כמה ביולוגים החלו להשתמש microfocus רנטגן טומוגרפיה ממוחשבת (microfocus) הדמיה6,7,8,9,10,11, . 12,13,14,15 ב-X-ray CT, המדגם הוא הוקרן עם קרני רנטגן מזוויות שונות הנוצרות ממקור X-ray נע סביב המדגם, ואת הרנטגן המשודר מנוטרים על ידי גלאי כי גם נע סביב המדגם. נתוני שידור הרנטגן שהושגו מנתחים כדי לשחזר תמונות בחתך הרוחב של הדגימה. שיטה זו מאפשרת התבוננות של מבנים פנימיים ללא הרס של המדגם. בשל בטחונו וקלות, הוא משמש בדרך כלל ביישומים רפואיים ושיניים, וניתן למצוא מערכות CT בבתי חולים ובמרכזי שיניים ברחבי העולם. יתר על כן, רנטגן תעשייתי CT משמש לעתים קרובות להתבוננות בדגימות לא רפואי עבור בדיקה מטרולוגיה בתחום התעשייה. בניגוד CT רפואי, שבו המקור רנטגן וגלאי הם ניידים, שני החלקים הם קבועים CT תעשייתי, עם המדגם מסתובבת במהלך הסריקה. CT תעשייתי בדרך כלל מייצרת תמונות ברזולוציה גבוהה יותר מאשר CT רפואי והוא המכונה microCT (ברמת מיקרומטר ברמה) או nanoCT (רזולוציה ברמת נאנמטר). לאחרונה, מחקר באמצעות microct גדל במהירות בתחומים שונים של ביולוגיה14,15,16,17,18,19, מיכל בן 20 , מיכל בן 21 , מיכל בן 22 , מיכל בן 23 , בת 24 , מיכל בן 25 , מיכל בן 26 , בן 27 , מיכל בן 28 , בן 29 , בן 30 , מיכל בן 31 , 32 , 33 , 34.
מחקרים ביולוגיים באמצעות CT ממוקדות בתחילה מבנים פנימיים המורכבים בעיקר של רקמה קשה, כגון עצם. ההתקדמות טכניקות צביעת שימוש בחומרים כימיים שונים אפשרה ויזואליזציה של רקמות רכות באורגניזמים שונים6,7,8,9,14,15 , מיכל בן 16 , מיכל בן 17 , מיכל בן 18 , מיכל בן 19 , מיכל בן 20 , מיכל בן 21 , מיכל בן 22 , מיכל בן 23 , בת 24 , מיכל בן 25 , מיכל בן 26 , בן 27 , מיכל בן 28 , בן 29 , בן 30 , מיכל בן 31 , 32 , 33 , 34. של אלה ריאגנטים, מבוססי יוד סוכנים בניגוד הם בטוחים יחסית, זול, והוא יכול לשמש להדמיה של רקמות רכות באורגניזמים שונים7,14. בנוגע לחסרי חוליות ימיים, microct נעשה שימוש נרחב על בעלי חיים כגון רכיכות6,25,32,33, annelids18,19, מיכל בן 20 , 28, וארתוראופהלחמה21,23,29,31. עם זאת, היו דיווחים מעטים על החיה האחרת phyla, כמו bryozoans6, xenacoelomorphs26, ו קטריגרים24,30. באופן כללי, היו פחות מחקרים באמצעות microCT על חסרי חוליות ימיים מאשר אלה על בעלי חוליות. אחת הסיבות העיקריות לשימוש מוגבל זה על חסרי חוליות ימיים הוא מגוון עצום שנצפו בבעלי חיים אלה. בגלל הגדלים המגוונים, הורפולוגיות והפיזיולוגיות שלהם, כל מין מגיב בצורה שונה להליכים ניסיוניים שונים. לכן, זה הכרחי במהלך הכנת המדגם לבחור את הקיבעון המתאים ביותר והכתים מגיב, ולקבוע תנאים בכל שלב, מותאם לכל מין. באופן דומה, יש צורך גם להגדיר את תצורות הסריקה, כגון שיטת ההרכבה, מתח, זרם, שיעור מגדילה מכני, ואת עוצמת רזולוציית החלל, בהתאם לכל מדגם. כדי להתגבר על בעיה זו, מדריך פשוט ומובן המכסה את כל הצעדים הנחוצים, מסביר כיצד ניתן לכוונן כל שלב בהתאם לדגימה, ומציג דוגמאות מפורטות מדגימות מרובות.
במחקר הנוכחי, אנו מתארים את פרוטוקול הדמיה microCT צעד אחר צעד, מתוך קיבעון דגימה לניתוח נתונים, באמצעות שלושה מינים חסרי חוליות ימיים. בסמוך לתחנה הביולוגית של מיססאקי, האוניברסיטה של טוקיו, נאספו דגימות של שושנת הים באקניה (אנתותים). היה להם גוף רך וכדורי שהיה בקוטר של 2 ס מ (איור 1A-C). Harmothoe sp. (Polychaeta, Annelida) דגימות נאספו גם ליד תחנת מיססאקי ימית ביולוגית. הם היו תולעים דק שהיו כ 1.5 ס מ אורך, עם chaetae קשה הנוכחי לאורך כל הגוף (איור 1D). הדגימה של Xenoturbella35 (Xenoturbella, Xenacoeloma) מדגם נאסף ליד שימודה ימית מרכז המחקר, אוניברסיטת טסוקובה, במהלך ה -13 החוף jambio האורגניזם משותף סקר. הייתה זו תולעת עדינה שהייתה כ-0.8 ס מ אורך (איור 1E). התאמות שבוצעו עבור התנאים והתצורות של כל מדגם מוסברות בפרוטרוט. המחקר שלנו מספק מספר הצעות על איך לבצע הדמיה microCT על חסרי חוליות ימיים, ואנו מקווים כי זה יהיה השראה ביולוגים להשתמש בפרוטוקול זה עבור המחקר שלהם.
תיקונים באמצעות פורמלין, כגון 10% (v/v) הפתרון של מי ים בשימוש במחקר זה, ידועים כדי לשמר את המבנה של חסרי חוליות מגוונות ימיים ומשמשים לעתים קרובות הדמיה microct18,24,25 ,26,28,30,…
The authors have nothing to disclose.
אנו רוצים להודות לתוספקו שירושי לעזרתו ולמתן את סביבת המחקר במהלך מחקר זה. אנו אסירי תודה לקנסוקה יאנאגי ולטקאל איזמי לקבלת ייעוץ בנוגע ל -A. זנב, ומסיוסו טנקה לקבלת ייעוץ בנוגע לדגימה . אנו מודים לצוות במרכז המחקר הימי של שימודה, באוניברסיטת טסוקובה ובתחנה הביולוגית של מיססאקי, אוניברסיטת טוקיו לעזרתם באוספי מדגם. אנחנו רוצים להודות לנומרולאין (www.editage.jp) לעריכת שפה באנגלית. עבודה זו נתמכת על ידי ה-JSPS גרנט בסיוע עבור מדענים צעירים (א) (JP26711022) ל-HN, ו-JAMBIO, האגודה היפנית לביולוגיה ימית.
250-ml Erlenmeyer flask | Corning | CLS430183 | |
5-ml Sampling tube ST-500 | BIO-BIK | 103010 | |
50-ml Polypropylene tube | Greiner Bio One International | 227261 | |
60-mm Non-treated Dish | IWAKI | 1010-060 | |
Agarose | Promega | V3125 | |
Ecological grade tip (blue) 1000 µl | BMBio | BIO1000RF | |
Ethanol | Wako Pure Chemical Industries | 057-00451 | |
Formalin | Wako Pure Chemical Industries | 061-00416 | |
Iodine | Wako Pure Chemical Industries | 094-05421 | |
Magnesium chloride hexahydrate | Wako Pure Chemical Industries | 135-00165 | |
OsiriX DICOM Viewer | Pixmeo SARL | OsiriX MD v10.0 | https://www.osirix-viewer.com |
Paraformaldehyde | Wako Pure Chemical Industries | 163-25983 | |
Petiolate needle | AS ONE | 2-013-01 | |
Pipetman P200 Micropipette | GILSON | F123601 | |
Pipetman P1000 Micropipette | GILSON | F123602 | |
Potassium iodide | Wako Pure Chemical Industries | 166-03971 | |
Precision tweezers 5 | DUMONT | 0302-5-PS | |
QuickRack MultI fit tip (yellow) 200 ul | Sorenson | 10660 | |
Razor blades | Feather | FA-10 | |
Ring tweezers | NAPOX | A-26 | |
Stereoscopic microscope | Leica | MZ95 | |
X-ray Micro-CT imaging system | Comscantechno | ScanXmate-E090S105 |