真空の血のコレクションのシステムと眼鏡拡大鏡非麻酔下マウスの尾静脈から変更された血のコレクション
Summary
本研究は、眼鏡拡大鏡を吸引チューブ システムを用いたマウスの尾静脈からの採血を報告します。私たちのメソッドは簡単に実践、マウスで繰り返し採血をされる可能性があります。
Abstract
血液検体の採取実験動物研究の基礎であります。それは様々 な研究目的のための十分な血液サンプルを取得する重要です。マウスの尾静脈が小さい、時々 従来穿刺法の方法で必要な血液量を得ることが困難。この調査を行った真空採血コレクション システムと眼鏡の拡大鏡 (実験群) 従来の採血方法 (従来のグループ) と比較しての使用を介してマウスの尾静脈から繰り返し血液サンプル コレクションの優位性、初心者から専門家、それぞれ実行します。眼鏡拡大鏡の助けを借りて、蝶の針先は実験群の各マウスの尾静脈に挿入されます。静脈が正常に侵入される血液サンプルが収集真空コレクションの管に蝶針のゴムの端の挿入による真空の血のコレクションの管に。プランジャーは、従来のグループで眼鏡拡大鏡の助けなし血を収集するために使用されます。初心者や専門家によって血液サンプル コレクションの成功率は実験群と従来のグループで 85% (p < 0.01) 対 35% 70% 対 100% (p < 0.01) をあることを示した。初心者および専門家の両方の必要な血液サンプルの取得に必要な穿刺時間だった (2.40 対 2.90 ± 0.31 ± 0.75、p < 0.05; 1.55 ± 0.76、p < 0.05 対 1.15 ± 0.37) 従来のグループと比較して実験群で有意に低かった。結論としては、提示血液サンプリングが可能で簡単に実践でき非麻酔下マウスから十分な血液量の頻繁にサンプリング。
Introduction
動物実験に関わるから採血は、基本的な研究手法です。いくつかの利用可能な技術があるマウスから採血、尻尾切り取り領域を含む、心臓、レトロな軌道神経叢、頚静脈、尾静脈、上大静脈の穴をあけます。理想的には、血は動物の健康に影響を最小限に、低侵襲の方法で収集する必要があります。しかし、最も一般的に使用される手法はしばしば動物にストレスを与えるし、研究成果1に影響を与えることができます。レトロな軌道神経叢からの採血は、マウス2から十分な血液量を取得する使用できます。しかし、それは厳しい組織の損傷につながる、3短い時間間隔で繰り返し血を求めることはできません。
尾静脈は、マウスに最小限の危害を加え血液のコレクションの優れた場所です。ただし、マウスの尾静脈が細いとそれは従来穿刺法に十分な血液を得ることが困難あります。場合によっては、繰り返し穿刺は必要な血液量を得る必要があります。マウスの尾静脈から採血しやすく勧め麻酔もよくします。 また、メス、ストレート エッジかみそりやはさみは、必要な血液サンプル4を取得する尾の端を削除する必要ことがあります。我々 は以前血液汚染のリスクを低減し、繰り返し穿刺5の必要性を避ける真空採血サンプル コレクション システムによって非麻酔ラットの尾静脈から採血成功を報告しています。本研究は、非麻酔下のマウスのような血の収集方法を報告します。
Protocol
Representative Results
Discussion
本研究では、従来の手法よりも優れているマウスで簡単に学ぶ血液コレクション法について説明します。まず、高い成功率を持つメソッドを容易に習得することができます。第二に、それは真空負圧の原理に基づくし、, 汚染と溶血9のチャンスを減らす効果もある直接血液曝露リスクの削減と血液の連続的に描画を可能します。第三に、このメソッドは、マウスからの適切なボリュームとは、血液の様々 な研究目的のための時間の短い期間での頻繁なサンプリング可能です。さらに、プロシージャはマウスにのみ最小限危害を加え、麻酔薬; を使用せず採血を実行できます。したがって、血液サンプルのストレス応答と麻酔薬の影響を回避できます。
尾静脈承認された議定書7によると採血の真向かいにあります。しかし、それは常に低血流と薄い尾静脈から十分な血液量を得ることは容易です。この場合、皮膚は通常オープン カット、ランセットに静脈を浸透させた、またはカミソリで尾の先端がすぐに削除されます。
このプロトコルは、真空採血管サンプル、蝶針と眼鏡拡大鏡が必要です真空の血のコレクション システムを使用してマウスから採血手法の改善を目指しています。このサンプリング ・真空採血システム通常毎日の臨床実習10で患者から血液サンプルを収集するために用いられます。眼鏡拡大鏡の助けを借りて、尾静脈の完璧な穿刺点は分かりやすいです。尾静脈に針の先端を挿入すると、血負圧により真空管流れ込む自動的に。尾静脈から針を撤回した後真空による収集の真空管にカテーテルでブロックされている血液が流れます。
次のヒントは、メソッドの成功のアプリケーションにとって重要です。まず、それぞれのマウスの体重は 40 g をする必要があります以上穴をあけると、十分な血液を得ることの難しさを減らす。第二に、失敗した採血の場合実験者は血を流れ続けるまでゆっくりと針を撤回してみてください。第三に、採血中に任意の動きを避けるために尾を拡張することが重要です。そっと針を保持は、マウスの尾の動きとして静脈に針の先端を維持する助けることができます。第四に、採血中を流れる血液が停止した場合、針の角度はタイムリーに調整必要があります。血液停止 15 後を流れる場合に別の穿刺位置を選択針で血液凝固を防ぐためには、するために s。最後に、マウスから血を収集するためにこの手法を使用している間は、2 つの演算子の協力の使用をお勧めします。
一言で言えば、マウスで使用するため採用された真空採血コレクション メソッドは、実行可能な安全で簡単に実践です。このメソッドは、非麻酔下マウスから十分な血液量と血の頻繁にサンプリングできます。
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
この作品が支持された [許可番号 2018CFB761] 中国湖北省の自然科学基金の助成により。
Materials
| Double-pointed needle | Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China | 20163151718 | 22G (0.7 mm x 25 mm) |
| Eyeglass magnifier | Vergroberung | 1.5x | |
| Normal salt diet for mice | Mice received a normal salt diet (0.3% NaCl) throughout the study. | ||
| Plastic holder | Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China | 35-45 g rat hoder | |
| SPSS software for statistical analysis | SPSS Inc, Chicago; USA | Version 17.0. | |
| Syringe | Shandong wego Medical polymer products co. LTD., China | 20160911A | 1 mL (Matching needle size: 0.45×16RW LB) |
| Vacuum blood collection system | Wuhan Zhi Yuan, medical science and technology co., LTD, China | 20171222 | 1 mL (Φ12.4×L75) |
References
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