我们提出了一个协议, 以建立分子航天飞机, 其中表面粘附的运动蛋白推动染料标记微管。激素与表面的弱相互作用使它们能够可逆地附着在表面上。这就创建了一个纳米系统, 该系统可显示其组件的动态组装和拆卸, 同时保留其功能。
该协议描述了如何创建运动素动力分子航天飞机与弱和可逆的连接的运动在表面。与以前的方案不同的是, 在这个系统中, 微管从溶液中吸收运动素运动, 并将其放置在表面上。这些激素反过来又会促进微管沿表面滑行, 然后再脱皮回散装溶液中, 从而可以再次被招募。这种连续的组装和拆卸导致了系统中惊人的动态行为, 比如通过滑行微管形成临时运动轨迹。
在整个实验过程中, 将介绍几种实验方法: 紫外-可见分光光度法将用于测定试剂的库存溶液的浓度, 覆盖物将首先经过臭氧和紫外线 (uv) 处理, 然后进行硅烷化在安装到流动细胞之前, 总的内部反射荧光 (tirf) 显微镜将用于同时成像电机和微管丝中的运动。
控制活性纳米系统行为的相互作用一直以长寿命、几乎不可逆的键 1、2、3、4、5、6为特征 ,7,8。一个很好的研究例子是微管运动系统, 在这个系统中, 滑动微管是由电机1,2,3,4中不可逆转的表面结合运动学推动的. 5。在其中, 组件可可逆地相互连接的系统已在理论上研究了 9、10 , 并在 11、12 的宏观范围内实现, 但将这些系统扩展到纳米尺度一直具有挑战性。其中一个主要原因是, 打破和改革各组成部分之间的纽带往往需要环境条件发生重大变化。尽管这些变化是在过去13、14、15 中实施的, 但它们将依靠修改系统本身, 而不是使其适应其环境。设计分子规模的系统, 在不干扰实验进行的整体环境的情况下, 将部件不断组装和重组为结构, 这将为探索广泛的动态行为打开大门16,17岁
在这里, 我们描述并演示了在纳米尺度上动态组装和拆卸系统的详细协议。该系统及其一般行为已在18年初被引入: 微管丝是由可逆表面结合运动-1 电机的轨道推进的。这些运动蛋白是从溶液中招募出来的, 以帮助推动微管向前发展, 然后不久再去除氧。一旦回到解决方案, 他们可以再次被招募来推动一个新的微管。在过去的 13、14、15,打破和改革债券需要改变环境;相反, 我们的流动单元的环境保持不变, 而运动电机与表面相互作用。
该协议将帮助感兴趣的研究人员 (1) 可视化协议的所有步骤, (2) 协助对这种类型的检测进行故障排除。它来自霍华德等人 1993年19年所述的程序。
在这项工作中, 我们提出了一个主动纳米尺度系统, 它自组装弱结合的积木来构建自己的轨道。如图 1所示, 滑动微管会从溶液中积累运动, 并将其沉积在表面。在返回溶液之前, 运动电机在微管之后停留很短的时间。因此, 在这个实验中, 激素在3种状态之间交替:
(1) 微管单约束状态: 这是当一个运动第一次与微管结合。它与状态 (2) 保持平衡。
(2) 双约束状态: 在这种情况下, 微管单约束激素也通过其 hi-tag 与表面结合。这种双约束状态允许微管推进。
(3) 单一的表面约束状态: 一种双托运动, 它已经从微管的末端走了出来, 尚未从表面脱盐, 处于这种状态。这些电机可以在图 1 (组合和绿色通道) 中观察到: 它们在微管的尾部后面延伸了几微米, 并形成了其递减的轨迹。
该协议最关键的步骤是在滑块上形成疏水表面。它不仅使用危险化学品, 而且还允许与 nta 组功能化的 peg-ppg-peg 覆盖表面, 从而使激素可逆地结合到表面。另一个重要步骤是用润滑脂密封流动电池。这样可以在不使流动细胞中的液体蒸发的情况下进行长时间成像。
对这一技术的主要修改包括微管浓度的变化、激素浓度和 atp 浓度。改变微管浓度会改变微管在表面滑行的数量。改变在浓度中的运动会改变可以与微管结合的运动学分子的数量。然而, 增加运动蛋白浓度超过本实验中已经定义的量可能会增加背景荧光, 使其更难看到留下的运动轨迹滑翔微管。同时, 将 atp 浓度降低到10μm 以下将显著降低微管的滑动速度。如果需要这种效果, 有必要利用由肌酸磷酸酶和磷酸激酶组成的 atp 再生系统。
这种技术的一个可能的局限性是, 由于系统中的活性因子含量较大, atp 可以快速消耗, 并且在某些条件下实验可能持续不到一个小时。例如, 如果使用比本议定书中提出的更高的激素和五倍高的微管浓度, 就会出现这种情况。
在前面的工作18中, 我们研究了电机沿微管的空间分布, 证明了滑动微管从溶液中积累电机中的运动, 从而增加了电机沿长度的密度。微管布。我们还发现, 微管的滑动稳定性表现出非线性依赖于溶液动力学浓度和微管速度。
该协议为在纳米工程系统中更有效地利用蛋白质电机铺平了道路, 并为进一步研究处于动态平衡的活性纳米系统的设计提供了道路。此外, 该系统的动态特性使其能够成为研究分子成分自愈和动态替代的示范系统, 缩小工程结构和自然结构之间的部分差距。
The authors have nothing to disclose.
提交人感激地感谢 nsf 赠款 nsf-dmr 1807514 下的财政支持。作者感谢 g·巴昌德和 v. vandelinder 提供的 gfp-激素素蛋白。这项工作的部分工作是在综合纳米技术中心进行的, 该中心是洛斯阿拉莫斯国家实验室为美国能源部 (doe) 科学办公室运作的一个科学用户办公室 (合同号)。de-ac52-06na25396) 和桑迪亚国家实验室 (de-ac04-ac04-94al85000)。作者感谢詹妮弗·内夫博士和全维血管组织提供的与 nta 功能化的 peg-ppg-peg 天赋。
488 nm laser | Omicron Laserage | LuxX 488-150 | |
642 nm laser | Omicron Laserage | LuxX 642 | |
Casein | Sigma | C7078-500G | |
Catalase from bovine liver | Sigma | C40-500MG | |
Creatine Phosphate | Sigma | P-7936 | |
Creatine Phosphokinase | Sigma | C3755-500UN | |
D-Glucose | Sigma | G2133-50KU | |
Dichlorodimethylsilane solution | Sigma | 40140-25ML | Toxic |
Dimethyl Sulfoxide | Sigma | 34869-100ML | |
Dithiothreitol | Sigma | D0632-5G | Toxic |
Eclipse TI | Nikon Instruments | ||
eGFP rkin430 | Provided by George Bachand | ||
EGTA | Sigma | E4378-25G | |
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes | Fisher Scientific | 14-959-49A | |
Glucose Oxidase | Sigma | G0543-10KU | |
Guanosine Triphosphate | Sigma | G8877-10MG | |
Kimwipes Delicate Task Wipers | Sigma Pharmaceuticals | 8089 | |
Magnesium Chloride | Sigma | M1028-100ML | |
Methanol | Fisher Chemical | A412 | Toxic |
Milli-Q Water Purification System | Millipore Corporation | ||
Nickel Sulfate | Sigma | 656895-50G | |
Paclitaxel | Sigma | T1912-5MG | |
PIPES | Sigma | P-6757 | |
Pluronic F108-NTA | Provided by Jennifer Neff and AllVivo Vascular | PEG-PPG-PEG-NTA | |
Pluronic F-108 | Sigma | 542342-250G | PEG-PPG-PEG |
Thermo Scientific Snap Cap Low Retention Microcentrifuge Tubes | Fisher Scientific | 21-403-190 | |
Toluene | Fisher Chemical | T324 | Toxic |
Tubulin, HiLyte647-labeled | Cytoskeleton, Inc. | TL670M | |
UV Ozone Procleaner | BioForce Nanosciences | PC440 | |
Whatman Puradisc syringe filters | Sigma | WHA67840402 | |
Zyla 4.2 sCMOS Camera | Andor Technology | sCMOS 4.2 |